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      轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研究概述

      2014-03-15 22:49:34陳銳等
      天津農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年3期
      關(guān)鍵詞:檢測技術(shù)轉(zhuǎn)基因

      陳銳等

      摘 要:轉(zhuǎn)基因技術(shù)在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域的應(yīng)用與發(fā)展十分迅猛,相應(yīng)的檢測技術(shù)體系也在不斷更新與進(jìn)步。本文從檢測技術(shù)與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)兩個(gè)方面對當(dāng)前轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)體系的研究現(xiàn)狀和發(fā)展趨勢進(jìn)行了概述。

      關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)基因;檢測技術(shù);標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)

      中圖分類號:S188 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A DOI編碼:10.3969/j.issn.1006-6500.2014.03.003

      轉(zhuǎn)基因技術(shù)在提高作物抗性、增加糧食產(chǎn)量、改善農(nóng)產(chǎn)品品質(zhì)以及減少農(nóng)藥使用與污染等方面正深刻改變著現(xiàn)代農(nóng)業(yè)。據(jù)統(tǒng)計(jì),2012年全球轉(zhuǎn)基因作物種植面積已達(dá)1.7億hm2,超過全球耕地面積的10%,共計(jì)60個(gè)國家和地區(qū)累計(jì)審批1 045項(xiàng)轉(zhuǎn)基因作物用于食品、飼料和環(huán)境釋放,涉及25個(gè)物種、196個(gè)轉(zhuǎn)化事件[1]。伴隨轉(zhuǎn)基因作物種植面積的激增,關(guān)于轉(zhuǎn)基因生物及其產(chǎn)品成分對人類健康和生態(tài)環(huán)境影響的關(guān)注度也與日俱增。

      目前國際上在轉(zhuǎn)基因檢測與標(biāo)識管理方面已形成部分共識性文件、評價(jià)原則及檢測標(biāo)準(zhǔn),但因不同國家和地區(qū)的國情與政策導(dǎo)向不同,轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品在標(biāo)簽的閾值范圍、標(biāo)識方式等管理制度上還存在較大差異[2-4]。不同的標(biāo)識制度直接關(guān)系到轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品的進(jìn)出口檢驗(yàn)、國際貿(mào)易互認(rèn)等諸多問題,加之公眾對轉(zhuǎn)基因食品越來越關(guān)注,轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)近年來得到了快速發(fā)展和廣泛應(yīng)用。筆者就轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)及相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研究現(xiàn)狀進(jìn)行概述。

      1 轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)概況

      轉(zhuǎn)基因檢測的對象主要是外源插入基因的核酸序列或其蛋白表達(dá)產(chǎn)物。針對蛋白的檢測,因其抗體制備成本較高,并且由于外源基因的低水平和時(shí)空特異性表達(dá)、蛋白的不穩(wěn)定性,以及多種干擾免疫應(yīng)答物質(zhì)的存在,使蛋白檢測的應(yīng)用范圍受到一定程度的限制。針對核酸的檢測方法靈敏度高、適用范圍廣,是當(dāng)前轉(zhuǎn)基因檢測的主流方法。按目的轉(zhuǎn)基因檢測可分成3個(gè)層次:一是通過檢測通用的遺傳元件來初步篩查樣品中是否含有轉(zhuǎn)基因成分;二是針對轉(zhuǎn)化事件的指定特征進(jìn)行品系特異性鑒定;三是定量分析轉(zhuǎn)基因成分所占比重。

      1.1 針對核酸的檢測技術(shù)

      聚合酶鏈?zhǔn)綌U(kuò)增技術(shù)(Polymerase chain reaction, PCR)是目前應(yīng)用最廣泛的轉(zhuǎn)基因檢測方法,具有高度特異性和靈敏度,可用于定性或定量分析[5]。PCR法按檢測對象可分為元件特異性(如p35S、tNOS)[6]、基因特異性(如cry1Ab,cp4-epsps)[7]、構(gòu)建特異性[8]和品系特異性4種[9-11]。在標(biāo)準(zhǔn)PCR方法基礎(chǔ)上還存在多種改良方法,多重PCR、巢式PCR、半巢式PCR在降低成本、提高通量和靈敏度方面具備優(yōu)勢[12]。反向PCR(Inverse PCR)[13],熱不對稱PCR(Thermal asymmetric interlaced PCR, TAIL-PCR)[14]和連接介導(dǎo)PCR(Ligation mediated PCR, LM-PCR)[15-16]在側(cè)翼序列擴(kuò)增和鑒定方面應(yīng)用廣泛。

      定量PCR(Quantitative PCR, qPCR)是目前最有效的轉(zhuǎn)基因定量檢測方法,包括競爭定量PCR[17]和實(shí)時(shí)熒光定量PCR法[18-19],其中后者利用熒光標(biāo)記可實(shí)時(shí)監(jiān)控?cái)U(kuò)增過程,根據(jù)待測物初始濃度與Ct(Threshold Cycle)值成正比原理,可精確定量靶標(biāo)DNA。實(shí)時(shí)熒光定量PCR具有自動化和高精度等優(yōu)點(diǎn),但實(shí)驗(yàn)成本較高,對操作人員有技術(shù)要求,一般需要種間特異、低拷貝的內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因或標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)作為參照。

      環(huán)介導(dǎo)恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(Loop mediated isothermal amplification, LAMP)是由Notomi等人于2000年建立的一種全新的鏈置換擴(kuò)增法(Strand displacement amplification, SDA)[20]。該方法針對靶基因的6個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)4條特異引物,利用鏈置換DNA聚合酶在恒溫條件下完成復(fù)雜的擴(kuò)增過程,產(chǎn)生階梯狀電泳條帶,反應(yīng)結(jié)果還可以通過擴(kuò)增副產(chǎn)物焦磷酸鎂沉淀或特定熒光染料來判斷。LAMP法對儀器依賴度低,具有高效、靈敏、直觀的特點(diǎn),但易出現(xiàn)假陽性,在轉(zhuǎn)基因檢測中有一定應(yīng)用[21-24]。

      基于核酸的檢測方法還包括核酸印記法(Southern blot)、基因芯片法(Microarray)和生物傳感器法(Biosensor)。核酸印記雜交能夠精確區(qū)分高度同源序列,但對樣品純度要求較高,操作流程繁雜。基因芯片法能夠一次性對多種DNA序列進(jìn)行定性、定量分析,具有高通量和自動化的特點(diǎn)[25]。生物傳感器法依賴靈敏的電化學(xué)技術(shù),通過固定在傳感器表面的特異探針與靶標(biāo)DNA結(jié)合后產(chǎn)生的電信號來檢測,是一種高靈敏度的檢測方法[26]。

      此外,越來越多的新技術(shù)正不斷的應(yīng)用于轉(zhuǎn)基因檢測領(lǐng)域,包括NASBA擴(kuò)增技術(shù)(Nucleic acid sequence based amplification)[27]、超分支滾環(huán)擴(kuò)增技術(shù)(Hyper-branched rolling cycle amplification, HRCA)[28]、焦磷酸測序技術(shù)(Pyro-sequencing)[29]、高通量測序技術(shù)(High-throughput sequencing)[30]、毛細(xì)管電泳技術(shù)(Capillary electrophoresis, CE)[31]、高效液相色譜(High performance liquid chromatography, HPLC)[32]、近紅外光譜技術(shù)(Near infrared spectroscopy, NIS)[33]和生物條形碼技術(shù)[34]等。

      1.2 針對蛋白質(zhì)的檢測技術(shù)

      基于蛋白的檢測方法主要是以抗原抗體互作的免疫學(xué)理論為基礎(chǔ),通過檢測外源基因表達(dá)的蛋白產(chǎn)物進(jìn)行測定,主要包括蛋白質(zhì)印跡法(Western blot)、酶聯(lián)免疫吸附法(Enzyme linked immuno-sorbent assay, ELISA)和側(cè)向流動免疫測定法(Lateral flow devices, LFD)[35]。

      蛋白質(zhì)印跡法是檢測復(fù)雜混合物中特異蛋白的有力工具,它將電泳的高分離能力、抗體特異性和酶的高效催化結(jié)合起來,靈敏度可達(dá)1~5 ng[36]。ELISA法通過可溶性的抗原或抗體在固相載體上發(fā)生免疫反應(yīng)后,借助比色或熒光反應(yīng)鑒定目標(biāo)蛋白,檢測靈敏度通??蛇_(dá)0.1%[37-38]。LFD法是廣泛使用的試紙條檢測法,該方法將特異抗體交聯(lián)到顯色劑和硝化纖維素試紙上,通過觀察控制線和檢測線的顏色變化來判斷檢測結(jié)果[39]。該方法樣品前處理簡便快捷,無需特殊儀器,但靈敏度較低,主要應(yīng)用于田間快檢和現(xiàn)場初篩抽查。

      1.3 轉(zhuǎn)基因檢測數(shù)據(jù)庫

      轉(zhuǎn)基因檢測相關(guān)數(shù)據(jù)庫主要有GMDD(GMO Detection method database)[40]、GMO Compass、CERA、BCH以及ABF等。其中GMDD數(shù)據(jù)庫整合了外源插入基因及其旁側(cè)序列、檢測方法、引物序列、協(xié)同驗(yàn)證信息、內(nèi)參基因及有證參照物質(zhì)等信息,共涉及155種商業(yè)化轉(zhuǎn)基因作物品系,是比較全面的轉(zhuǎn)基因檢測方法數(shù)據(jù)庫。其他數(shù)據(jù)庫主要收錄了轉(zhuǎn)基因相關(guān)的技術(shù)信息、品系特征、風(fēng)險(xiǎn)評估、產(chǎn)品標(biāo)識管理和商業(yè)化現(xiàn)狀等信息。

      2 轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)現(xiàn)狀

      2.1 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的定義

      國際標(biāo)準(zhǔn)化組織(ISO)對標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Reference material, RM)的定義是:具有一種或多種足夠均勻和很好確定了的特性值,用以校準(zhǔn)儀器設(shè)備,評價(jià)測量方法或給材料賦值的材料或物質(zhì)[41]。標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)作為實(shí)物形式的計(jì)量標(biāo)準(zhǔn),可以是純的或混合的氣體、液體或固體,穩(wěn)定性、均勻性、準(zhǔn)確性和量值溯源性是其基本屬性。標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)按級別一般可分為基準(zhǔn)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Primary reference material, PRM)、有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Certified reference material, CRM)和工作級標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Secondary reference material, CRM)。我國將標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)分為一級標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(國家級)和二級標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(部門級)[42]。

      2.2 我國標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的管理

      我國最早的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)可追溯到1952年的第一批冶金國家標(biāo)準(zhǔn)樣品,之后1988年國家標(biāo)準(zhǔn)總局批準(zhǔn)成立了全國實(shí)物標(biāo)準(zhǔn)委員會,負(fù)責(zé)標(biāo)準(zhǔn)樣品的規(guī)范化管理;1996年,國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫局批準(zhǔn)成立了國際標(biāo)準(zhǔn)樣品委員會(ISO/REMCO)中國委員會,負(fù)責(zé)與國際接軌并根據(jù)工作需要成立了冶金、有色金屬、環(huán)保、農(nóng)藥、氣體化學(xué)品、無損探傷、酒類等7個(gè)分會及多個(gè)專業(yè)技術(shù)工作組[43]。目前,我國的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)管理由國家質(zhì)檢總局計(jì)量司負(fù)責(zé),國家質(zhì)檢總局委托中國計(jì)量測試學(xué)會組織各行業(yè)專家成立全國標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)管理委員會,制定工作導(dǎo)則與技術(shù)規(guī)范,并負(fù)責(zé)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的行政審批和評審考核等工作。

      2.3 轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)分類

      轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Reference material for GMO detection)屬于生物標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),是具有一種或多種足夠均勻并很好確定了相關(guān)的特性值,在轉(zhuǎn)基因檢測中用以校準(zhǔn)測量裝置、評價(jià)測量方法或給材料賦值的一種材料或物質(zhì)[44]。目前轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)主要有基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)和DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)兩類,其中后者又可分為質(zhì)粒DNA、基因組DNA和擴(kuò)增子DNA3種。由于不同的穩(wěn)定性、準(zhǔn)確度和制備工藝,不同的轉(zhuǎn)基因標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)在實(shí)際應(yīng)用中各有利弊,其中基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)和質(zhì)粒DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)應(yīng)用范圍最廣。

      基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)是由植物種子或器官研磨加工后混合而成,主要通過重量法進(jìn)行制備。制備過程一般利用精磨手段來減小顆粒體積差異從而提高均勻性,但此過程又不可避免的會造成DNA降解,目前歐盟開發(fā)的冷凍研磨和干樣混合技術(shù)能有效地解決此問題。此外,植物特異性、組織倍性和親本特性也是影響基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)均勻性和準(zhǔn)確性的重要因素[45-46]。例如,種子的胚、胚乳和果皮的倍性不同,即各組織的DNA含量不同,若制備過程中使用的組織所占比例不同,必然會影響最終結(jié)果。質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)是包含待測目的基因和內(nèi)標(biāo)基因的重組質(zhì)粒分子,可作為標(biāo)準(zhǔn)陽性物質(zhì)替代物,也可根據(jù)分子量換算計(jì)算拷貝數(shù),在定量PCR檢測中應(yīng)用廣泛[47]。質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的量值用DNA質(zhì)量和轉(zhuǎn)化因子(Conversion factor, CF)表示,并需要通過多家實(shí)驗(yàn)室的聯(lián)合實(shí)驗(yàn)來定值。

      比較而言,基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)制備成本高,工藝復(fù)雜,而質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)具有廉價(jià)、易富集、使用方便和均勻性好等特點(diǎn),尤其是在陽性物質(zhì)難以獲得的情況下,質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)具有絕對優(yōu)勢[48]。

      2.4 轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研發(fā)現(xiàn)狀

      目前生產(chǎn)轉(zhuǎn)基因檢測標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的機(jī)構(gòu)主要有歐盟聯(lián)合研究中心下屬的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)與測量研究所(Institute for Reference Materials and Measurements, IRMM),美國的油脂化學(xué)家學(xué)會(American Oil Chemists Society, AOCS)和日本農(nóng)林水產(chǎn)省下屬的食品綜合研究所。

      IRMM自1997年以來,根據(jù)歐盟標(biāo)簽制度規(guī)定的閾值,陸續(xù)研發(fā)了質(zhì)量比從0到100%不等的轉(zhuǎn)基因陽性標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),其中包括玉米、大豆、馬鈴薯、甜菜和棉花在內(nèi)的有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)20余種。AOCS主要生產(chǎn)純品形式的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),包括油菜、棉花、水稻、大豆和玉米等農(nóng)作物。日本食品綜合研究所與NIPPON公司合作研發(fā)轉(zhuǎn)基因標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),但產(chǎn)品只在國內(nèi)使用,不對外銷售,目前已制備3種基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(GTS40-3-2、MON810和GA21)和2類質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(大豆和玉米)。目前市場上可售的有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)主要由IRMM和AOCS生產(chǎn),基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)居多,質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)較少。

      我國轉(zhuǎn)基因標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研究相對滯后,農(nóng)業(yè)部已于2011年開展重大專項(xiàng)攻關(guān),建立了包括玉米、水稻、小麥、棉花和大豆在內(nèi)的基體、質(zhì)粒和基因組DNA標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研制體系,并取得了階段性成果。此外,上海交通大學(xué)[49]、中國計(jì)量科學(xué)研究院[50-51]、中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院[52]等多家單位也陸續(xù)開展了轉(zhuǎn)基因標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的研制工作。

      3 展 望

      隨著世界人口增長與糧食短缺的矛盾日益加劇,轉(zhuǎn)基因技術(shù)在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域的研發(fā)和應(yīng)用前景一片光明。新一代商業(yè)化轉(zhuǎn)基因作物性狀正趨向多樣化、復(fù)雜化,轉(zhuǎn)基因食用安全問題也正逐步成為公眾熱議的焦點(diǎn),這使得建立快速、精準(zhǔn)、高通量的轉(zhuǎn)基因檢測體系成為必然趨勢。其中,標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)作為分析測量的物質(zhì)基礎(chǔ)和質(zhì)量管理工具,其制備技術(shù)和應(yīng)用程度能夠直接反應(yīng)檢測技術(shù)體系的水平。因此,大力發(fā)展符合國情的、科學(xué)可靠的轉(zhuǎn)基因檢測技術(shù)與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),掌握核心技術(shù),搶占領(lǐng)域高地,不僅關(guān)乎國家利益,而且對維護(hù)轉(zhuǎn)基因產(chǎn)業(yè)的良性發(fā)展以及保障人類健康都具有十分重要的意義。

      參考文獻(xiàn):

      [1] Clive J. 2012年全球生物技術(shù)/轉(zhuǎn)基因作物商業(yè)化發(fā)展態(tài)勢 [J]. 中國生物工程雜志, 2013, 33(2): 1-8.

      [2] Alimentarius C. Guideline for the conduct of food safety assessment of foods derived from recombinant-DNA plants [EB/OL].[2013-11-01].http://WWW.fao.org/fileadmin/user_upload/gmfp/docs/CAC.GL_45_2003.pdf.

      [3] Alimentarius C. Guideline for the conduct of food safety assessment of foods produced using recombinant-DNA microorganisms [EB/OL].[2013-11-01].http://WWW.fao.org/fileadmin/user_upload/gmfp/resources/CXG_046e.pdf.

      [4] Commission C A. Principles for the risk analysis of foods derived from modern biotechnology [EB/OL].[2013-11-01].http://WWW.fao.org/fileadmin/user_upload/gmfp/resources/CXG_046e.pdf.

      [5] Querci m, Van Den Bulcke M, Zel J, et al. New approaches in GMO detection [J]. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2010, 396(6): 1991-2002.

      [6] D Rries H-H, Remus I, GR Newald A, et al. Development of a qualitative, multiplex real-time PCR kit for screening of genetically modified organisms (GMOs) [J]. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2010, 396(6): 2 043-2 054.

      [7] Grohmann L, Brunen-nieweler C, Nemeth A, et al. Collaborative trial validation studies of real-time PCR-based GMO screening methods for detection of the bar gene and the ctp2-cp4epsps construct [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2009, 57(19): 8 913-8 920.

      [8] Shrestha H K, Hwu K K, Wang S J, et al. Simultaneous detection of eight genetically modified maize lines using a combination of event-and construct-specific multiplex-PCR technique [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2008, 56(19): 8962-8968.

      [9] Guo J, Yang L, Liu X, et al. Characterization of the exogenous insert and development of event-specific PCR detection methods for genetically modified Huanong No. 1 papaya [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2009, 57(16): 7 205-7 212.

      [10] Oguchi T, Onishi M, Mano J, et al. Development of multiplex PCR method for simultaneous detection of four events of genetically modified maize: DAS-59122-7, MIR604, MON863 and MON88017 [J]. Shokuhin Eiseigaku Zasshi Journal of the Food Hygienic Society of Japan, 2010, 51(3): 92.

      [11] Yang L, Guo J, Zhang H, et al. Qualitative and quantitative event-specific PCR detection methods for oxy-235 canola based on the 3′ integration flanking sequence [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2008, 56(6): 1 804-1 809.

      [12] 敖金霞, 高學(xué)軍, 于艷波, 等. 轉(zhuǎn)基因大豆, 玉米, 水稻深加工產(chǎn)品的五重巢式PCR技術(shù)檢測[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2010, 15(2): 93-99.

      [13] 許文濤, 楊蓉, 陸姣, 等. 轉(zhuǎn)基因玉米59122品系的特異性檢測[J]. 食品科學(xué), 2011, 32(4):139-142.

      [14] Yang L, Xu S, Pan A, et al. Event specific qualitative and quantitative polymerase chain reaction detection of genetically modified MON863 maize based on the 5'-transgene integration sequence [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(24): 9 312-9 318.

      [15] Holck A, Vaitilingom M, Didierjean L, et al. 5'-Nuclease PCR for quantitative event-specific detection of the genetically modified Mon810 MaisGard maize [J]. European Food Research and Technology, 2002, 214(5): 449-454.

      [16] Mueller P R, Wold B. In vivo footprinting of a muscle specific enhancer by ligation mediated PCR [J]. Science, 1989, 246(4931): 780-786.

      [17] H Bner P, Studer E, L Thy J. Quantitative competitive PCR for the detection of genetically modified organisms in food [J]. Food Control, 1999, 10(6): 353-358.

      [18] Chaouachi M, El Malki R, Berard A, et al. Development of a real-time PCR method for the differential detection and quantification of four solanaceae in GMO analysis: potato (Solanum tuberosum), tomato (Solanum lycopersicum), eggplant (Solanum melongena), and pepper (Capsicum annuum) [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2008, 56(6): 1 818-1 828.

      [19] Hern Ndez M, Esteve T, Prat S, et al. Development of real-time PCR systems based on SYBR Green I, Amplifluor and TaqMan technologies for specific quantitative detection of the transgenic maize event GA21 [J]. Journal of Cereal Science, 2004, 39(1): 99-107.

      [20] Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, et al. Loop-mediated isothermal amplification of DNA [J]. Nucleic acids Research, 2000, 28(12): 63-63.

      [21] 蘭青闊, 王永, 趙新, 等. LAMP在檢測轉(zhuǎn)基因抗草甘膦大豆cp4-epsps基因上的應(yīng)用[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008, 36(24): 10 377-10 378,10 390.

      [22] 蘭青闊, 王永, 趙新, 等. 環(huán)狀等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)快速檢測轉(zhuǎn)基因玉米MON863的研究[J]. 玉米科學(xué), 2011, 19(1): 31-34.

      [23] 王永, 蘭青闊, 趙新, 等. 轉(zhuǎn)基因作物外源轉(zhuǎn)基因成分環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)檢測方法的建立及應(yīng)用[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2009, 42(4): 1 473-1 477.

      [24] 王永, 蘭青闊, 趙新, 等. 抗蟲轉(zhuǎn)Bt基因水稻外源轉(zhuǎn)基因成分環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)檢測方法的建立及應(yīng)用[J]. 天津農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 18(1): 7-10.

      [25] Leimanis S, Hernandez M, Fernandez S, et al. A microarray-based detection system for genetically modified (GM) food ingredients [J]. Plant Molecular Biology, 2006, 61(1/2): 123-139.

      [26] Mannelli I, Minunni M, Tombelli S, et al. Quartz crystal microbalance (QCM) affinity biosensor for genetically modified organisms (GMOs) detection [J]. Biosensors and Bioelectronics, 2003, 18(2): 129-140.

      [27] Compton J. Nucleic acid sequence-based amplification [J]. Nature, 1991, 350(6313): 91-92.

      [28] 陶震, 蔡興鋒, 顏志強(qiáng), 等. HRCA技術(shù)在轉(zhuǎn)基因植物檢測中的應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2003, 19(3): 294-300.

      [29] 蘭青闊, 王永, 趙新, 等. 基于Special-Base模型檢測轉(zhuǎn)基因作物nos/plamid構(gòu)建特異性[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2012, 17(2): 8-12.

      [30] Tengs T, Zhang H, Holst-jensen A, et al. Characterization of unknown genetic modifications using high throughput sequencing and computational subtraction [J]. BMC Biotechnology, 2009, 9(1): 87.

      [31] Guo L, Yang H, Qiu B, et al. Capillary electrophoresis with electrochemiluminescent detection for highly sensitive assay of genetically modified organisms [J]. Analytical Chemistry, 2009, 81(23): 9 578-9 584.

      [32] Luan F X, Tao R, Xu Y G, et al. High-throughput detection of genetically modified rice ingredients in foods using multiplex polymerase chain reaction coupled with high-performance liquid chromatography method [J]. European Food Research and Technology, 2012, 234(4): 649-654.

      [33] 芮玉奎, 羅云波, 黃昆侖, 等. 近紅外光譜在轉(zhuǎn)基因玉米檢測識別中的應(yīng)用[J]. 光譜學(xué)與光譜分析, 2005, 25(10): 1 581-1 583.

      [34] Zhu D, Tang Y, Xing D, et al. PCR-free quantitative detection of genetically modified organism from raw materials. An electrochemiluminescence-based bio bar code method [J]. Analytical Chemistry, 2008, 80(10): 3 566-3 571.

      [35] Michelini E, Simoni P, Cevenini L, et al. New trends in bioanalytical tools for the detection of genetically modified organisms: An update [J]. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2008, 392(3): 355-367.

      [36] Ahmed F E. Detection of genetically modified organisms in foods [J]. TRENDS in Biotechnology, 2002, 20(5): 215-223.

      [37] Urbanek-karlowska B, Sawilska-rautenstrauch D, Jedra M, et al. Detection of genetic modification in maize and maize products by ELISA-test] [J]. Roczniki Państwowego Zakladu Higieny, 2003, 54(4): 345.

      [38] 嚴(yán)吉明, 崔林開, 葉華智, 等. 轉(zhuǎn)Bt基因植物中殺蟲蛋白的酶聯(lián)免疫檢測技術(shù)研究Ⅱ-Bt殺蟲晶體蛋白抗體的制備[J]. 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2005, 23(2): 163-167.

      [39] Kumar R, Singh C K, Kamle S, et al. Development of nanocolloidal gold based immunochromatographic assay for rapid detection of transgenic vegetative insecticidal protein in genetically modified crops [J]. Food Chemistry, 2010, 122(4): 1 298-1 303.

      [40] Dong W, Yang L, Shen K, et al. GMDD: A database of GMO detection methods [J]. BMC Bioinformatics, 2008, 9(1): 260.

      [41] Guide I. 30 Terms and definitions used in connection with reference materials [M]. Geneva:ISO, 1992.

      [42] 金浩, 韓永志. 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)及其應(yīng)用技術(shù)[M]. 北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社, 2003,

      [43] 中國標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會全國標(biāo)準(zhǔn)樣品技術(shù)委員會. 標(biāo)準(zhǔn)樣品實(shí)用手冊[M].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社, 2003.

      [44] Ciabatti I, Marchesi U, Froiio A, et al. Role of the “National Reference Centre for Genetically Modified Organisms (GMO) Detection” in the Official Control of Food and Feed [J]. Veterinary Research Communications, 2005, 29(2): 31-44.

      [45] Holst-jensen A, De Loose M, Van Den Eede G. Coherence between legal requirements and approaches for detection of genetically modified organisms (GMOs) and their derived products [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2006, 54(8): 2799-2809.

      [46] Zhang D, Corlet A, Fouilloux S. Impact of genetic structures on haploid genome-based quantification of genetically modified DNA: Theoretical considerations, experimental data in MON 810 maize kernels (Zea mays L.) and some practical applications [J]. Transgenic Research, 2008, 17(3): 393-402.

      [47] Kuribara H, Shindo Y, Matsuoka T, et al. Novel reference molecules for quantitation of genetically modified maize and soybean [J]. Journal of AOAC International, 2002, 85(5): 1 077-1 089.

      [48] 蘇長青, 謝家建, 王奕海, 等. 轉(zhuǎn)基因水稻Bt汕優(yōu)63的整合結(jié)構(gòu)和品系特異性定量PCR方法[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2011, 19(3): 434-441.

      [49] Meng Y, Liu X, Wang S, et al. Applicability of plasmid calibrant pTC1507 in quantification of TC1507 maize: An interlaboratory study [J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2011, 60(1): 23-28.

      [50] 李亮, 臧超, 王晶, 等. 轉(zhuǎn)基因水稻克螟稻2號定量檢測用質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)分子研制及不確定度評價(jià)[J]. 中國生物工程雜志, 2012, 32(10): 19-24.

      [51] 董蓮華, 李亮, 王晶. 轉(zhuǎn)基因玉米pNK603質(zhì)粒分子的構(gòu)建與應(yīng)用[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2011, 19(3): 565-570.

      [52] 李俊毅, 李想, 褚慶華, 等. 適于轉(zhuǎn)基因油菜RT73品系特異性檢測的標(biāo)準(zhǔn)分子構(gòu)建及其適用性鑒定[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2011(4): 76-83.

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