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      人多巴胺D2受體基因內含子區(qū)51103 T/C多態(tài)性對基因轉錄活性的影響

      2014-03-06 06:01:24段朝霞張潔元陳魁君李曉霞王建民李兵倉
      解放軍醫(yī)藥雜志 2014年11期
      關鍵詞:報告基因內含子熒光素酶

      段朝霞,張潔元,陳魁君,李曉霞,王建民,李兵倉

      多巴胺D2受體(DRD2)是多巴胺受體之一,屬于G蛋白偶聯(lián)家族,能通過與 Gi/Go偶聯(lián)抑制cAMP的形成,在體內發(fā)揮重要作用。DRD2主要分布于紋狀體內,參與認知、情緒、運動及內分泌等多種功能活動的調節(jié)[1]。人類DRD2基因位于第11號染色體,全長270 kb,共有8個外顯子。大量研究證實,DRD2基因多態(tài)性與創(chuàng)傷后應激障礙(PTSD)、抑郁癥、精神分裂癥、藥物及酒精成癮等精神類疾病發(fā)生的易患性及藥物治療的敏感性相關[2-5]。本課題組前期的研究通過HapMap檢索發(fā)現(xiàn)DRD2基因第3內含子區(qū)51 103 bp位點的rs2075652多態(tài)性可能與PTSD的易患性相關,然而截至目前該位點的具體生物學機制還不十分清楚。鑒于此,本研究擬構建含單核苷酸多態(tài)性(SNP)rs2075652位點的DRD2基因熒光素酶表達載體,為今后探索其生物學功能奠定基礎。

      1 材料與方法

      1.1 材料 pmirGlo質粒、海腎熒光素酶表達質粒pRL-SV40、DNA純化試劑盒和雙熒光素酶報道基因試劑盒均為Promega公司產品;質粒提取試劑盒、基因組DNA提取試劑盒購自北京天根生物技術有限公司;高保真DNA聚合酶、膠回收試劑盒、T4 DNA連接酶購于Takara公司(大連);限制性內切酶Sac I、Xho I購自NEB公司;脂質體Lipofectine 2000TM為Invitrogen公司產品;DMEM、胎牛血清購自Gibco;人胚腎癌細胞株HEK293購自中國科學院細胞庫,為本研究組保存,培養(yǎng)于含有 10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中;感受態(tài)細胞E.coli DH5α和培養(yǎng)基等其他試劑均由南方中心實驗室提供;PCR引物由上海生物工程有限公司合成;PCR產物和質粒測序均由Takara公司(大連)完成。

      1.2 實驗方法

      1.2.1 含rs2075652多態(tài)位點的第3內含子區(qū)序列擴增及純化:按照北京天根生物技術有限公司試劑盒說明書提取人全血基因組DNA,經(jīng)核酸定量儀定量后置于-70℃?zhèn)溆?。根?jù)DRD2基因組序列NC-000011.9 Reference GRCh37.p5 Primary Assembly(GenBank,上下游各延伸 10 kb的序列范圍:113270317~113356001),設計4條擴增DRD2第3內含子區(qū)序列及51 103 bp位點突變的引物。rs2075652-1:5' ctgcactggacactggggactctag 3',rs2075652-2:5'cttggggatccttgccggttact 3';rs2075652-M1:5'atcccaactaccatttgtaaagtgcttac 3';rs2075652-M2:5'gtaagcactttacaaatggtagttgggat 3'。以人全血基因組DNA為模板,先用rs2075652-1與rs2075652-2擴增啟動子區(qū)序列,并克隆至PTA2載體中,測序鑒定正確后,再雙酶切(Sac I+Xho I),然后亞克隆至pmir-Glo載體。含突變位點的序列則以PTA2-652質粒為模板,以引物rs2075652-1和rs2075652-M1、引物rs2075652-2和rs2075652-M2分別進行聚合酶鏈反應(PCR)后,再以兩段 PCR產物為模板,以rs2075652-1和rs2075652-2為引物,進行融合PCR反應。PCR反應均采用25μl反應體系進行PCR擴增,循環(huán)參數(shù)為:98℃ 5 min,98℃ 30 s,57℃ 30 s,72℃ 1 min 30 s,35 個循環(huán),72℃ 10 min。取 5 μl PCR產物行1.5%瓊脂糖凝膠電泳,并用膠回收試劑盒回收目的條帶。

      1.2.2 熒光素酶報告基因質粒的構建及鑒定:膠回收的PCR產物與經(jīng)過改造的報告基因載體pmirGlo均以Sac I和Xho I雙酶切,對目的條帶采用膠回收并進行純化。純化過的DNA片段和質粒按2︰1的比例,在 T4 DNA連接酶作用下連接2 h,得到重組質粒pmirGlo-DRD2-T和pmirGlo-DRD2-C。將重組質粒轉化DH5α細菌,于含氨芐西林的LB培養(yǎng)基平皿上進行選擇培養(yǎng)。挑取其中3個克隆擴增并經(jīng)Sac I和Xho I雙酶切和測序鑒定。測序工作由Takara公司(大連)完成。

      1.2.3 細胞轉染及熒光素酶轉錄活性測定:將處于對數(shù)生長期的HEK293細胞經(jīng)胰酶消化后重懸,細胞密度為1.5×105個/ml,各取200 ml/孔接種于48孔板內,置于37℃、5%CO2孵育箱中培養(yǎng)。細胞匯合度為80%左右時,將重組質粒pmirGlo-DRD2-T和pmirGlo-DRD2-C轉染細胞,為校正孔間轉染效率,各組均用表達海腎熒光素酶報告基因質粒pRLSV40同時進行轉染,每個樣品設3個重復孔。轉染采用脂質體法:首先形成Lipofectine-DNA復合物,室溫靜置20 min后,將Lipofectine-DNA復合物加入細胞培養(yǎng)液中,培養(yǎng)6 h后更換成含10%血清的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細胞,檢測熒光強度,實驗結果取各次平均值。

      1.2.4 雙熒光素酶報告基因監(jiān)測系統(tǒng)檢測熒光素酶活性:取細胞裂解液20μl,在其中加入100μl的Firefly luciferase檢測試劑,混勻后立即在化學發(fā)光儀中檢測發(fā)光值,記錄10 s時的值(對應于Firefly的表達水平);然后再加入100μl的stop&Glo試劑,同樣檢測10 s時的化學發(fā)光值(對應于Renilla熒光素酶的表達水平),以二者比值(F/R)為校正后的結果,實驗重復3次。

      1.3 統(tǒng)計學方法 應用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計學分析,所有數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(x±s)表示,采用單因素方差分析,α=0.05為檢驗水準。

      2 結果

      2.1 含rs2075652多態(tài)位點的第3內含子區(qū)序列PCR擴增 將PCR擴增產物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳,紫外燈下可見1條明顯的DNA條帶位于399 bp附近,與所需擴增片段大小相符,且無非特異性擴增片段,此條帶即為設計擴增含rs2075652位點T的目的片段(見圖1A)。將目的片段克隆至PTA2載體中,進行測序鑒定。再以PTA2-652質粒為模板,以引物rs2075652-1和rs2075652-M1、引物rs2075652-2和rs2075652-M2分別進行PCR擴增,分別擴出278 bp和189 bp的目的條帶(見圖1B);再以兩段 PCR產物為模板,以 rs2075652-1和rs2075652-2為引物,進行融合 PCR反應,擴增出399 bp的含rs2075652突變位點C的目的條帶(見圖1C)。

      圖1 含rs2075652-多態(tài)位點的第3內含子區(qū)序列PCR擴增產物A.用rs2075652-1和rs2075652-2引物、人基因組DNA為模板擴增的PCR產物;M.DL2000 DNA Marker,1.擴增的PCR產物。B.用rs2075652-1、rs2075652-M1和 rs2075652-M2、rs2075652-2兩對引物分別擴增的 PCR產物;M.DL2000 DNA Marker,1.rs2075652-1、rs2075652-M1擴增的PCR產物,2.rs2075652-M2、rs2075652-2擴增的PCR產物。C.用rs2075652-1和rs2075652-2為引物、B的兩種PCR產物為模板擴增的融合PCR產物;M.DL2000 DNA Marker;1.融合擴增的PCR產物

      2.2 重組質粒的酶切鑒定 重組質粒轉染大腸桿菌克隆、培養(yǎng),隨機挑取3個單菌落中的少許菌體為模板進行擴增并經(jīng)Sac I和Xho I雙酶切鑒定結果見圖2,得到大小為7 kb左右的pmirGlo質粒片段和含rs2075652 T和rs2075652 C的第3內含子區(qū)的目的條帶。1號克隆送公司進行測序分析,其測序結果與GenBank中的DRD2基因啟動子序列比對后完全一致,證實重組質粒載體構建成功,測序結果(常見多態(tài)位點為反向測序,突變位點為正向測序)見圖3。

      圖2 多巴胺D2受體-T和多巴胺D2受體-C重組質粒的雙酶切鑒定M.DL15000 DNA Marker;1.pmirGlo-DRD2-T質粒雙酶切;2.pmirGlo-DRD2-C質粒雙酶切

      2.3 熒光素酶報告基因轉錄活性 轉染pmirGlo-DRD2-C質粒的細胞裂解液中熒光素酶活性(0.542±0.004)強于轉染pmirGlo-DRD2-T質粒的細胞裂解液(0.474±0.016),差異有統(tǒng)計學意義(P=0.002),見圖4。

      3 討論

      DRD2是最受關注、也是研究最多的多巴胺受體之一。既往研究顯示,DRD2是與PTSD關系最為密切的多巴胺受體,因為大多數(shù)經(jīng)典的抗精神病藥物的藥理學作用中都有拮抗DRD2的作用,且藥物效價與拮抗強度有關。動物實驗證實邊緣系統(tǒng)中杏仁核等區(qū)域的多巴胺能神經(jīng)元對創(chuàng)傷應激高度敏感[6]。在中樞應用DRD2激動劑阿撲嗎啡可以降低白鼠實驗性創(chuàng)傷應激后的死亡率,而多巴胺受體阻滯劑舒必利則有相反的效果,而PTSD患者的尿中多巴胺及其代謝產物高香草醛酸濃度增高,其水平與癥狀嚴重程度相關[7]。PTSD患者中樞神經(jīng)多巴胺系統(tǒng)可能存在缺陷,而無法適宜地應對創(chuàng)傷應激,導致暫時或持續(xù)性的精神異常癥狀。因此,DRD2基因改變可能是導致各種精神異常行為、精神及神經(jīng)系統(tǒng)疾病發(fā)生的重要原因[8-10]。

      自被發(fā)現(xiàn)以來,內含子一直是人們爭論的焦點。因內含子屬于非編碼序列,曾一度被認為其存在沒有任何意義,是無用基因,因此目前對內含子的功能還知之甚少。然而越來越多的研究發(fā)現(xiàn)內含子并不是基因組的“垃圾”,而是在基因表達調控中有重要的生物學功能。另外,在原核生物基因中不存在內含子或含有少量的內含子,而在真核生物基因中內含子的存在是普遍現(xiàn)象,內含子的長度遠遠大于外顯子,甚至在人類基因組中非編碼序列占到95% ~97%[11]。由此可見,生物進化程度越高,其內含子所含比例也越高,這也進一步說明內含子是具有重要生物學功能的。對于內含子的功能,目前普遍認為它們與基因的表達調控有關,如內含子含有增強子或其他順式作用元件,促進轉錄的起始或延伸,增加了mRNA在核內的穩(wěn)定性,可充當啟動子等。因含有增強啟動子的序列,在一些基因中,內含子可增強基因轉錄的起始反應。內含子由于含有增強子的組分,或由于拼接體及多聚腺昔酸化作用保護mRNA前體,使其免受RNA酶的作用,增強了基因的表達。在另一些基因中,內含子可抑制轉錄的延長,轉錄衰減位點可能位于內含子上,從而導致基因的失活[12]。

      報告基因是一種編碼可供檢測的酶或蛋白質的基因,是基因表達調控研究的一個重要工具,通過測定報告基因的表達產物,可以推測出該DNA片段在基因表達調控中的作用[13]。本研究采用高保真PCR法從人全血基因組中擴增出了DRD2基因第3內含子區(qū)399 bp的含rs2075652多態(tài)位點的序列,并將其分別克隆到pmirGlo-Basic質粒的多克隆位點中,成功構建了人 pmirGlo-DRD2-T和 pmirGlo-DRD2-C熒光素酶報告基因,并證實了rs2075652多態(tài)位點由T突變?yōu)镃后,熒光素酶活性增強,說明DRD2基因第3內含子區(qū)55 103位點可能為轉錄增強位點或具有增強子活性,為研究DRD2基因的轉錄調控機制提供了基礎,但其增強轉錄活性的具體分子機制還有待于進一步深入研究證實。

      圖3 重組質粒的pmir Glo-DRD2-T和pmir Glo-DRD2-C的測序結果

      圖4 重組質粒pmir Glo-DRD2-T和pmir Glo-DRD2-C熒光素酶活性比較結果b P<0.01

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