李雄超,張衛(wèi)兵,*,梁 琪,李學(xué)朋,張 炎,宋雪梅
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730070;2.甘肅省功能乳品工程實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730070)
高產(chǎn)胞外多糖干酪乳桿菌的太空誘變選育
李雄超1,2,張衛(wèi)兵1,2,*,梁琪1,2,李學(xué)朋1,2,張炎1,2,宋雪梅1,2
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730070;2.甘肅省功能乳品工程實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730070)
為了提高干酪乳桿菌G5的胞外多糖產(chǎn)生能力,采用太空誘變技術(shù)對(duì)其進(jìn)行選育,從中篩選出高產(chǎn)胞外多糖菌株。通過(guò)富集培養(yǎng)、平板篩選、脫脂乳發(fā)酵和遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),最終得到兩株高產(chǎn)胞外多糖且遺傳穩(wěn)定性較好的突變株EPS-33和EPS-43。突變株EPS-33和EPS-43在25℃發(fā)酵脫脂乳,發(fā)酵結(jié)束時(shí)胞外多糖的產(chǎn)量分別220.42和198.49mg/L,為出發(fā)菌株的1.9倍和1.7倍。2個(gè)突變菌株與出發(fā)菌株產(chǎn)胞外多糖的變化趨勢(shì)基本相同,但產(chǎn)量大幅增加。
太空誘變,干酪乳桿菌,胞外多糖
胞外多糖(Exopolysaccharides,EPS)是由微型藻類(lèi)或細(xì)菌在生長(zhǎng)過(guò)程中分泌到細(xì)胞外的一類(lèi)糖類(lèi)化學(xué)物。已報(bào)道的產(chǎn)胞外多糖細(xì)菌有乳酸菌、腸桿菌、枯草芽孢桿菌等。乳酸菌產(chǎn)生的胞外多糖有的依附于微生物細(xì)胞壁形成莢膜,稱(chēng)為莢膜多糖;有的進(jìn)入培養(yǎng)基形成粘液,稱(chēng)為粘液多糖,這兩者都屬于次級(jí)代謝產(chǎn)物,分子量一般在4.0×104~6.0×106u之間[1-3]。乳酸菌產(chǎn)生的胞外多糖可賦予食品特殊的口感和風(fēng)味,增強(qiáng)食品的穩(wěn)定性和持水性,可作為食品添加劑被廣泛地運(yùn)用在食品加工中。并且胞外多糖還具有促進(jìn)腸道菌群生長(zhǎng)、增強(qiáng)免疫活性、抗腫瘤及降低結(jié)腸癌發(fā)病率等多種功能,可應(yīng)用于醫(yī)藥領(lǐng)域[4-5]。
太空誘變技術(shù)是利用衛(wèi)星、飛船等返回式航天器將菌株搭載到宇宙空間中,在微重力、高真空、強(qiáng)輻射、交變磁場(chǎng)、超凈環(huán)境等太空誘變因子的作用下使菌株的遺傳性狀發(fā)生改變[6]的相對(duì)常規(guī)的物理或化學(xué)誘變技術(shù),太空誘變技術(shù)具有誘變率高、誘變多向、育種周期短等特點(diǎn)。近年來(lái),太空誘變技術(shù)在微生物育種方面得到了越來(lái)越廣泛的應(yīng)用,通過(guò)太空誘變技術(shù)得到許多性狀優(yōu)良的菌株,其中包括可高效利用木糖生產(chǎn)L-乳酸的乳酸菌、高產(chǎn)山梨糖的生黑醋酸桿菌、高產(chǎn)泰樂(lè)菌素的弗氏鏈霉菌等[7-9]。
本研究以本實(shí)驗(yàn)室篩選的干酪乳桿菌G5[10]為出發(fā)菌株,利用太空誘變技術(shù)對(duì)其進(jìn)行誘變處理,以期獲得高產(chǎn)胞外多糖的突變株。
1.1材料與設(shè)備
菌粉干酪乳桿菌凍干成菌粉后搭載神州八號(hào)飛船進(jìn)行太空誘變;脫脂乳粉購(gòu)自完達(dá)山乳業(yè)股份有限公司。
YQX-II型厭氧培養(yǎng)箱上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司;SW-CJ-2FD型雙人單面凈化工作臺(tái)蘇州凈化設(shè)備有限公司;PHS-3C型數(shù)顯酸度計(jì)杭州雷磁儀器分析廠;754PC型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)上海光譜儀器有限公司;Yx-280A型手提式壓力蒸汽滅菌器合肥華奉醫(yī)療設(shè)備有限公司;BP121S型電子天平德國(guó)賽多利斯集團(tuán);LVDV-1型粘度計(jì)上海萬(wàn)磁儀器有限公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1實(shí)驗(yàn)流程出發(fā)菌株→凍干粉→太空誘變→復(fù)水→富集培養(yǎng)→平板篩選→脫脂乳發(fā)酵→高產(chǎn)突變株篩選→遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)→產(chǎn)胞外多糖曲線。
1.2.2培養(yǎng)基MRS固體培養(yǎng)基[11]:蛋白胨10g,牛肉膏10g,酵母提取物5g,K2HPO42g,檸檬酸二銨2g,乙酸鈉5g,葡萄糖20g,吐溫-80 1m L,MgSO4·7H2O 0.58g,MnSO4·4H2O 0.25g,瓊脂15g,蒸餾水1L,調(diào)節(jié)pH至6.2~6.4,121℃滅菌20m in。
MRS液體培養(yǎng)基:培養(yǎng)基成分同固體培養(yǎng)基,不加瓊脂。
脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基[11]:脫脂乳粉9g,蒸餾水100m L,115℃滅菌15m in。調(diào)節(jié)pH至6.8~7.0。
1.2.3富集培養(yǎng)將5m L無(wú)菌生理鹽水加入經(jīng)太空誘變的凍干菌粉,充分溶解后取1m L菌液接入10m L MRS液體培養(yǎng)基中,25℃厭氧培養(yǎng)48h。連續(xù)進(jìn)行3次富集培養(yǎng)后,放入4℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.4平板篩選取1m L富集培養(yǎng)液用無(wú)菌生理鹽水進(jìn)行梯度稀釋?zhuān)x擇合適稀釋倍數(shù)的菌液涂布在MRS平板上,25℃厭氧培養(yǎng)24h后觀察菌落形態(tài)特征。用無(wú)菌牙簽接觸菌落,輕輕挑起并垂直離開(kāi),觀察菌落在培養(yǎng)基表面的拉絲情況[12-14]。挑選粘性菌落進(jìn)行MRS平板劃線分離,25℃厭氧培養(yǎng)24h后將轉(zhuǎn)接入MRS斜面培養(yǎng)基,25℃厭氧培養(yǎng)24h,待長(zhǎng)好后4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.5發(fā)酵性能測(cè)定挑取一環(huán)斜面菌種接入10m L脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基中,25℃厭氧培養(yǎng),連續(xù)活化3次?;罨蟮木臧?%(V/V)的接種量接種到150m L脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基中,25℃厭氧培養(yǎng),記錄其凝乳時(shí)間和凝乳狀態(tài)。發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定粘度和滴定酸度[11]。
1.2.6胞外多糖的提取精確量取10m L發(fā)酵乳,沸水浴加熱30min后,10000r/min、4℃離心5min,去除沉淀,向上清液中加入1m L 15%TCA后充分?jǐn)嚢瑁o置30m in后10000r/m in、4℃離心15m in,去除沉淀后取上清液,用NaOH溶液調(diào)節(jié)pH為8,然后于10000r/m in、4℃離心15m in,去除沉淀后取上清液,向其中按1∶5(V/V)加入無(wú)水乙醇,使乙醇的濃度大于80%,4℃靜置12h;然后于15000r/m in、4℃離心30m in,棄去上清液,取沉淀用無(wú)水乙醇洗滌;將洗滌過(guò)的沉淀用10m L蒸餾水溶解,蒸餾水透析48h,每4h換一次水[15]。透析后用蒸餾水定容到100m L待用。
1.2.7胞外多糖產(chǎn)量的測(cè)定胞外多糖產(chǎn)量的測(cè)定使用苯酚硫酸法[15-17],用葡萄糖做標(biāo)準(zhǔn)曲線。
標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:精確稱(chēng)取105℃干燥至恒重的葡萄糖1.00g,置于1000m L容量瓶中,蒸餾水定容。再分別吸取5.0、10.0、15.0、20.0、25.0、30.0m L加入100m L容量瓶中定容,蒸餾水做空白對(duì)照。吸取標(biāo)準(zhǔn)溶液1m L,于室溫下向其中加入5%苯酚1m L并搖勻,再快速向其中加入5m L濃硫酸。待反應(yīng)結(jié)束溶液冷卻至室溫時(shí),用紫外分光光度計(jì)于490nm處測(cè)其吸光度。空白樣以1m L蒸餾水按照同樣的步驟進(jìn)行。
取1m L樣液,于室溫下向其中加入5%苯酚1m L并搖勻,再快速向其中加入5m L濃硫酸。待反應(yīng)結(jié)束溶液冷卻至室溫時(shí),用紫外分光光度計(jì)于490nm處測(cè)定吸光度,根據(jù)下式計(jì)算樣品中胞外多糖含量:
式中:C—胞外多糖含量,單位為毫克每升(mg·L-1);100—表示樣品定容到100m L;10—表示發(fā)酵乳樣品體積為10m L;A—樣品在490nm處的吸光度。
1.2.8遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)將篩選出來(lái)的高產(chǎn)胞外多糖菌株按3%(V/V)的接種量,接種到脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基中,連續(xù)傳代培養(yǎng)15代,測(cè)定其第1~15代的胞外多糖產(chǎn)量,考察菌株產(chǎn)胞外多糖的遺傳穩(wěn)定性。
1.2.9發(fā)酵時(shí)間對(duì)胞外多糖產(chǎn)量的影響將篩選出來(lái)的高產(chǎn)胞外多糖菌株與出發(fā)菌株以3%(V/V)的接種量,分別接種到脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基中,25℃厭氧培養(yǎng),每1h測(cè)定一次胞外多糖含量,考察發(fā)酵時(shí)間對(duì)胞外多糖產(chǎn)量的影響。
1.3數(shù)據(jù)處理
采用SPSS 13.0軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析處理。
2.1平板篩選結(jié)果
經(jīng)太空誘變的菌株富集培養(yǎng)后用MRS平板分離,部分菌株在MRS平板上的菌落形態(tài)特征如表1所示。
從表1可以看出,在太空誘變前,菌株表面無(wú)光澤,菌落呈隆起狀。經(jīng)過(guò)太空誘變后,部分菌株菌落變?yōu)楸砻嬗泄鉂?,菌落扁平,菌落邊緣光滑平整。出發(fā)菌株沒(méi)有出現(xiàn)拉絲,為非粘菌落;誘變后部分菌株呈現(xiàn)出拉絲狀,為粘絲菌落,可根據(jù)菌落的這一特性對(duì)高產(chǎn)胞外多糖的菌株進(jìn)行初篩。從中共篩選出44株菌進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
2.2發(fā)酵性能測(cè)定
將篩選得到的44株菌進(jìn)行脫脂乳發(fā)酵實(shí)驗(yàn),記錄各菌株的發(fā)酵時(shí)間,并觀察其凝乳狀態(tài),結(jié)果如表2所示。
從表2可以看出,相比出發(fā)菌株G5,大部分突變株的發(fā)酵時(shí)間保持不變,僅有EPS-1、EPS-17、EPS-40三株菌發(fā)酵時(shí)間變長(zhǎng)。大部分突變株的滴定酸度保持不變,滴定酸度在81~85°T范圍內(nèi),少部分突變株如EPS-10、EPS-43的滴定酸度略有提升,達(dá)到89°T。大部分突變株發(fā)酵乳的組織結(jié)構(gòu)狀態(tài)相比出發(fā)菌株G5有所改善,粘度都有所提高。其中菌株EPS-19、EPS-33和EPS-43在25℃發(fā)酵乳粘度較高,分別為2.704、3.271、2.947Pa/s。這是因?yàn)榫戤a(chǎn)生的胞外多糖可起到增稠劑或膠凝劑的作用,從而會(huì)增加發(fā)酵乳的粘度[16]。
表1 乳酸菌菌落特征及粘絲性能Table 1 Colony characteristic and sticky silk performance of Lactic acid bacteria
表2 菌株的發(fā)酵性能Table 2 Performance of strains
2.3胞外多糖產(chǎn)量的測(cè)定
將得到的發(fā)酵乳采用熱處理、TCA處理、堿沉淀、乙醇溶解和透析處理去除其中的蛋白質(zhì)和小分子糖成分,再測(cè)定其中的胞外多糖含量,各菌株胞外多糖的產(chǎn)量如表3所示。
表3 菌株胞外多糖的產(chǎn)量Table 3 Exopolysaccharides production of strains
從表3中可以看出,突變菌株EPS-19、EPS-33和EPS-43具有較高的產(chǎn)胞外多糖的能力。菌株EPS-19、EPS-33和EPS-43的胞外多糖產(chǎn)量分別為180.56、220.42、198.49mg/L。相比而言,出發(fā)菌株G5的胞外多糖產(chǎn)量為116.38mg/L,突變菌株EPS-19、EPS-33和 EPS-43的產(chǎn)胞外多糖能力分別為出發(fā)菌株G5的1.6、1.9和1.7倍。
2.4遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
將胞外多糖產(chǎn)量較高的菌株EPS-19、EPS-33和EPS-43連續(xù)培養(yǎng)15代,測(cè)定其第1~15代的胞外多糖產(chǎn)量,結(jié)果見(jiàn)圖1。
從圖1可以看出,隨著傳代次數(shù)的增加,菌株EPS-33的胞外多糖產(chǎn)量穩(wěn)定在215.61~224.98mg/L之間,菌株EPS-43的胞外多糖產(chǎn)量穩(wěn)定在196.43~ 204.72mg/L之間,二者胞外多糖產(chǎn)量基本保持不變。菌株EPS-19的胞外多糖產(chǎn)量隨著傳代次數(shù)的增加而逐漸減少,第15代時(shí),其胞外多糖產(chǎn)量?jī)H為132.41mg/L,所以突變菌株EPS-19的高產(chǎn)胞外多糖性能不具有遺傳穩(wěn)定性。因此選擇菌株EPS-33和EPS-43作為高產(chǎn)胞外多糖的菌株。
圖1 突變菌株的遺傳穩(wěn)定性Fig.1 Genetic stability ofmutant strains
2.5發(fā)酵時(shí)間對(duì)胞外多糖產(chǎn)量的影響
將出發(fā)菌株、突變菌株EPS-33和EPS-43以3%(V/V)的接種量,分別接種到脫脂乳發(fā)酵培養(yǎng)基中,每隔1h測(cè)定胞外多糖含量,直至發(fā)酵結(jié)束。脫脂乳發(fā)酵期間,EPS-33和EPS-43胞外多糖產(chǎn)量隨發(fā)酵時(shí)間延長(zhǎng)的變化情況如圖2所示。
圖2 胞外多糖產(chǎn)量隨發(fā)酵時(shí)間的變化曲線Fig.2 The curve of exopolysaccharides production alongwith the fermentation time
從圖2可以看出,三個(gè)菌株產(chǎn)胞外多糖的變化趨勢(shì)基本相同,在脫脂乳發(fā)酵前6h,三個(gè)菌株的胞外多糖產(chǎn)量均較低。出發(fā)菌株G5胞外多糖產(chǎn)量在7h時(shí)開(kāi)始快速增加,14h后增長(zhǎng)速度逐漸放緩。菌株EPS-33和EPS-43的胞外多糖產(chǎn)量在6h開(kāi)始迅速增加,16h后增長(zhǎng)速度逐漸放緩。菌株G5胞外多糖產(chǎn)量在發(fā)酵結(jié)束時(shí)最高,達(dá)到116.38mg/L;菌株EPS-33和EPS-43的胞外多糖產(chǎn)量在發(fā)酵結(jié)束時(shí)也達(dá)到最高,分別為220.42、198.49mg/L。
采用太空誘變育種技術(shù)對(duì)一株干酪乳桿菌G5進(jìn)行誘變,通過(guò)富集培養(yǎng)、平板篩選、脫脂乳發(fā)酵實(shí)驗(yàn)、遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),篩選得到多株形態(tài)特征和發(fā)酵性能變化的突變株,其中突變菌株EPS-33和EPS-43在25℃下發(fā)酵脫脂乳,胞外多糖產(chǎn)量分別可以達(dá)到220.42、198.49mg/L,為出發(fā)菌株G5的1.9倍和1.7倍。2個(gè)突變菌株與出發(fā)菌株產(chǎn)胞外多糖的變化趨勢(shì)基本相同,但產(chǎn)量大幅增加,說(shuō)明太空誘變對(duì)干酪乳桿菌胞外多糖產(chǎn)量的提高效果顯著。本研究可為太空誘變?cè)谌樗峋x育中的應(yīng)用和乳酸菌胞外多糖的生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。
[1]旭日花,李平蘭.乳酸菌胞外多糖研究新進(jìn)展[J].中國(guó)乳品工業(yè),2009,37(12):41-50.
[2]張麗,張?zhí)m威,韓雪.乳酸菌胞外多糖的研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2012,33(17):378-381.
[3]張福利,呂宜娜.產(chǎn)胞外多糖乳酸菌混合培養(yǎng)對(duì)酸奶品質(zhì)的影響[J].輕工科技,2012(5):30-51.
[4]Ruas-Madiedo P,Hugenholtz J,Zoon P.An overview of the functionality of exopolysaccharides produced by lactic acid bacteria[J].International Dairy Journal,2002,12(2):163-171.
[5]Seema P,Avishek Majumder,Arun Goy,et al.Potentials of exopolysaccharides from lactic acid bacteria[J].Indian JMicrobiol,2012,52(1):3-12.
[6]樊秋玲,劉敏.空間育種研究進(jìn)展[J].航天醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)工程,2002,15(6):231-235.
[7]侯艷梅,江均平,蔣立文.利用木糖生產(chǎn)L-乳酸高產(chǎn)菌太空誘變育種[J].食品工業(yè)科技,2008,29(2):74-76.
[8]荊士華,安海英,李春杰,等.生黑醋酸桿菌的太空誘變選育[J].生物技術(shù),2011,21(1):76-78.
[9]魏麗勤,方曉梅,李寧梅,等.太空搭載泰樂(lè)菌素高產(chǎn)菌株的選育[J].工業(yè)微生物,2007,37(1):1-7.
[10]李靜.甘南牧區(qū)傳統(tǒng)發(fā)酵乳中低溫乳酸菌的分離篩選及安全性評(píng)價(jià)[D].蘭州:甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué),2011.
[11]凌代文,東秀珠.乳酸菌的分類(lèi)鑒定及實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,1993.
[12]田豐偉,丁虎生,丁納.產(chǎn)胞外多糖的乳酸菌的簡(jiǎn)便篩選與鑒定[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2008,34(3):15-19.
[13]劉先,康小紅,孫軍德.高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的篩選與初步鑒定[J].農(nóng)產(chǎn)品加工·學(xué)刊,2010,(3):38-40.
[14]范麗平,王亞峰,霍貴成.產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的鑒定及發(fā)酵性能研究[J].食品與機(jī)械,2010,26(3):14-17.
[15]羅玲泉,劉成國(guó),黃永鋒.酸乳EPS的提取研究[J].四川食品與發(fā)酵,2006,42(5):23-26.
[16]Patel S,A Goyal.Isolation,characterization and mutagenesis of exopolysaccharide synthesizing newstrains of lactic acid bacteria[J].The Internet Journal of Microbiology,2010,8(1):1-12.
[17]Bouzar F,Cernin J,Desmazeaud M.Exopolysaccharide production and texture promoting abilities of mixed-starter cultures in yoghurts production[J].Journal of Dairy Science,1997,80(10):2310-2317.
[18]Jung S,Kim WJ,Lee KG,et al.Isolation and identification of lactic acid bacteria from sourdoughwith high exopolysaccharide production ability[J].Food Science and Biotechnology,2009,18(2):384-389.
[19]劉燕.高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的篩選及培養(yǎng)基優(yōu)化的研究[D].鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.
[20]Aly S,Cheik A T Ouattara,Paul W Savadogo,et al. Identification ofexopolysaccharides-producing lactic acid bacteria from Burkina Faso fermented milk samples[J].African Journal of Biotechnology,2004,3(3):189-194.
[21]孫軍德,劉先.高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的篩選及培養(yǎng)條件優(yōu)化[J].沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,41(1):90-93.
Mutation of Lactobacillus casei with high production of exopolysaccharides by space mutagenesis
LIXiong-chao1,2,ZHANGWei-bing1,2,*,LIANG Qi1,2,LIXue-peng1,2,ZHANG Yan1,2,SONG Xue-mei1,2
(1.College of Food Science and Engineering,Gansu Agricultural University,Lanzhou 730070,China;2.Functional Dairy Engineering Laboratory of Gansu Province,Lanzhou 730070,China)
A starting strain of Lactobacillus casei G5 was mutated by space mutagenesis technology to screen strains w ith high p roduction of exopolysaccharides.Through enrichment culture,p late screening,skim m ilk fermentation and genetic stability experiment,we finally got two stab le mutant strains EPS-33 and EPS-43 w ith high p roduction of exopolysaccharides.while mutant strains EPS-33 and EPS-43 fermented in skim m ilk at 25℃,the yield of exopolysaccharides were 220.42mg/L and 198.49mg/L,which were 1.9 and 1.7 times of starting strain.Exopolysaccharides p roduc tion of the two mutant strains had the same change trend as starting strain,but the twomutant strains had a significant increase in p roduction.
space mutagenesis;Lac tobacillus casei;exopolysaccharides
TS201.3
A
1002-0306(2014)18-0185-05
10.13386/j.issn1002-0306.2014.18.031
2013-12-18*通訊聯(lián)系人
李雄超(1989-),男,碩士研究生,研究方向:乳品微生物。
國(guó)家農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化資金項(xiàng)目(2012GB2G100461);“十二五”農(nóng)村領(lǐng)域國(guó)家科技計(jì)劃項(xiàng)目(2011AA100903);蘭州市科技創(chuàng)新人才團(tuán)隊(duì)培育計(jì)劃項(xiàng)目(2011-1-144);教育部“新世紀(jì)優(yōu)秀人才支持計(jì)劃”項(xiàng)目(NCET-10-0015)。