溶液中木質素和葡萄糖的超濾分離

黃 洲，繆冶煉，陳介余，李文莉

(1.南京工業(yè)大學食品與輕工學院，南京211800； 2.日本秋田縣立大學生物資源學部，秋田0100195)

溶液中木質素和葡萄糖的超濾分離

黃 洲1，繆冶煉1，陳介余2，李文莉1

(1.南京工業(yè)大學食品與輕工學院，南京211800； 2.日本秋田縣立大學生物資源學部，秋田0100195)

以木質素和葡萄糖的混合溶液為木質纖維素水解液模型，采用截留相對分子質量為5 000的卷式聚醚砜膜對葡萄糖和木質素進行全回流模式的分離，探討了木質素和葡萄糖濃度、操作壓力、錯流速率對通量、木質素和葡萄糖截留率的影響。結果表明：在實驗條件范圍內，通量隨葡萄糖濃度和木質素濃度的增加而降低，并隨操作壓力、錯流速率的增加而增加。木質素截留率不受任何條件的影響，基本穩(wěn)定在97%。葡萄糖截留率隨木質素濃度的增加而增加，并隨錯流速率的增加而減小。在0.8 g/L的木質素質量濃度條件下，當錯流速率從0.12 m/s增加到0.17 m/s時，葡萄糖截留率從14%減小到7.3%。由此可見，在混合溶液的超濾過程中，通過合理選擇錯流速率，能夠改善木質素和葡萄糖的分離。

酶解；葡萄糖；木質素；木質纖維素；膜分離

預處理和水解是以木質纖維素材料為原料生產生物乙醇的主要操作步驟。然而，在預處理和水解過程中，可溶性木質素會進入水解液，對發(fā)酵微生物產生毒性，影響木質纖維素水解液的發(fā)酵效率[1]。在發(fā)酵前需除去可溶性木質素的方法有活性炭吸附法[1]、過量石灰澄清法[2-3]、離子交換樹脂法[4]及酶解法等[5]。本研究中筆者提出通過膜分離去除木質纖維素水解液中木質素，與現(xiàn)有方法相比，膜分離法具有對木質素成分的依賴性低、不會產生后續(xù)的毒性物質、處理能力強等特點。

造紙黑液呈強堿性，木質素和固形物含量高。在對黑液的膜分離中，通量、固形物和木質素截留率受到膜的材料和截留相對分子質量[6-7]、黑液的木質素[6]和固形物含量[7-8]、操作溫度[8]和壓力[7-8]等因素的影響。而木質纖維素水解液與造紙黑液的性質有很大區(qū)別。首先，兩者的主要成分不同。木質纖維素水解液主要含有葡萄糖、木糖和阿拉伯糖等還原糖，而造紙黑液主要含有木質素和固形物；其次，木質纖維素水解液與造紙黑液中木質素的相對分子質量不同。木質纖維素水解液中的木質素質量濃度小于1 g/L，而造紙黑液中的木質素質量濃度可達到5～60 g/L[9]。可溶性木質素的相對分子質量隨木質纖維素材料、提取方法和條件不同而變化[10-12]。木質纖維素水解液的性質必然影響其中還原糖和木質素的分離過程和效果。

Toledano等[11]比較了截留相對分子質量為5 000、10 000和15 0000的陶瓷膜對造紙黑液木質素(重均相對分子質量和數(shù)均相對分子質量分別為5 654、1 879)的分離性能。木質纖維素水解液中的還原糖主要為葡萄糖、木糖和阿拉伯糖，其質量濃度分別為8.9、4.7和0.3 g/L[13]，相對分子質量分別為180、150和150 。木質素和還原糖的相對分子質量相差較大，為膜分離提供了技術依據(jù)。

筆者為了把握木質纖維素水解液中木質素和還原糖的膜分離特性，以木質素和葡萄糖的混合溶液為木質纖維素水解液模型，采用截留相對分子質量為5 000的卷式聚醚砜膜對葡萄糖和木質素進行分離，以期探討木質素和葡萄糖濃度、操作壓力、錯流速率對通量、木質素和葡萄糖截留率的影響。

1 材料與方法

1.1 木質素和葡萄糖的混合溶液

在5 L純水中加入一定量的木質素(日本關東化學株式會社)和葡萄糖(分析純，國藥集團化學試劑有限公司)，制備木質素和葡萄糖的混合溶液?；旌先芤旱哪举|素質量濃度為0～1.6 g/L，葡萄糖質量濃度為2～15 g/L。

木質素的相對分子質量(Mr)采用凝膠滲透色譜法測定[14]。取木質素0.1 g，用0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液(pH 6.0)定容至100 mL，制備出質量濃度為1 g/L的木質素溶液。取木質素溶液1 mL，用0.22 μm微濾膜過濾后，取20 μL上樣分析。利用上海曦玉分析儀器科技有限公司XY100型GPC-凝膠滲透色譜系統(tǒng)及色譜儀進行分析。檢測器為XY100型UV紫外檢測器、檢測波長為220 nm，分離柱為凝膠滲透色譜柱(7.8 mm×30 cm，SEC-150)，流動相為0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液，標準試樣為聚氧化乙烯，流動相流速為0.6 mL/min，柱溫為40 ℃，柱壓為0.2 MPa。

圖1表示木質素累積質量分數(shù)隨相對分子質量(lgMr)的變化。由圖1可知:木質素的相對分子質量分布范圍為350～34 000。相對分子質量5 000時的累積質量分數(shù)為50.3%。木質素的重均相對分子質量、數(shù)均相對分子質量分別為6 858、2 370，比文獻[10]中芒草木質素(通過7.5% NaOH、90 ℃、90 min處理得到)的重均相對分子質量5 654、數(shù)均相對分子質量1 879 稍大。兩者的多分散系數(shù)相近，在3左右。

圖1 木質素累積質量分數(shù)隨相對分子質量的變化Fig.1 Change of the cumulative weight fraction with molecular weight of lignin

1.2 膜分離實驗裝置

膜分離實驗裝置主要由不銹鋼材質原料罐、高壓柱塞泵(HYDRA-CELL，美國普菲克公司)、超濾膜組件、溫度表、壓力表、流量計、截留液和滲透液取樣口等部分組成。其中，原料罐的外徑為185 mm，內徑為155 mm，高度為340 mm，高壓柱塞泵的最大流量為8.4 m3/h，最高壓力為7 MPa，超濾膜(PT1812C型，美國GE-Osmosis公司)的特性如表1所示。

表1 超濾膜的特性Table 1 Characteristics of the ultrafiltration membrane

注：以上數(shù)據(jù)來源于美國GE-osmosis公司。

操作溫度會改變溶液的黏度，從而影響通量，但對截留率的影響很小[8,15]。本研究的主要討論內容為木質素和還原糖的超濾分離特性，因此選擇在室溫條件下進行分離操作。原料罐采用夾層結構。在實驗中，向原料罐夾層中通入自來水，以維持料液溫度在室溫。

1.3 超濾

超濾前，首先測定膜的純水通量。向原料罐內倒入純水5 L，在操作壓力0.6 MPa、室溫、錯流速率0.12 m/s的條件下使純水在分離裝置內循環(huán)。在穩(wěn)定運行的狀態(tài)下，測定純水的流量。上述操作重復2次，取平均值。

排除原料罐中的純水，加入木質素和葡萄糖的混合溶液5 L，采用全回流模式進行分離。所謂全回流分離操作模式，就是混合溶液經(jīng)過高壓柱塞泵打入超濾膜組件中，流出的截留液和滲透液全部返回原料罐中，以保證原料罐中的混合溶液處于濃度穩(wěn)定狀態(tài)[16]。使混合溶液在一定的操作壓力和錯流速率條件下運行10 min后，測定滲透液和截留液的流量，取出滲透液5 mL和截留液5 mL作為木質素和葡萄糖分析試樣。超濾中，混合溶液溫度一定(室溫)，操作壓力分別設定為0.2、0.4、0.6、0.8和1 MPa，錯流速率分別設定為0.12、0.13、0.15、0.17、0.20和0.22 m/s。每個條件的分離操作重復2次，其測定取平均值。

超濾結束后，排出混合溶液，向料液罐內裝入清洗液(三聚磷酸鈉5 g/L，十二烷基苯磺酸鈉2 g/L)5 L，運行15 min，再用純水5 L運行15 min，反復4～5次，以沖洗分離裝置。

通量(Jv)采用式(1)計算。

(1)

式中：Q為滲透液流量，L/h；S為膜的有效面積，m2。

木質素或葡萄糖的截留率(R)采用式(2)計算。

(2)

式中:ρp為滲透液中木質素或葡萄糖的質量濃度，g/L；ρr為截留液中木質素或葡萄糖的質量濃度，g/L。

1.4 木質素濃度的測定

木質素濃度采用紫外分光光度法測定[1]。取測試液2 mL，在280 nm波長處測定溶液的吸光值，并按照式(3)計算木質素質量濃度。

木質素測定的標準曲線制作方法如下。準確稱取木質素100 mg，用蒸餾水定容至500 mL，然后分別稀釋至質量濃度0.012、0.018、0.024、0.030、0.036和0.042 g/L，作為標準溶液。采用紫外分光光度計(752S型紫外分光光度計，上海棱光技術有限公司)測定標準溶液在280 nm處的吸光值A280。吸光值與木質素質量濃度的關系見式(3)：

(3)

式中:A280為吸光值；ρL為木質素質量濃度，g/L。

1.5 葡萄糖濃度的測定

葡萄糖濃度采用DNS法測定[17]。取測試液2 mL于試管中，加入3,5-二硝基水楊酸(DNS試劑)(分析純，國藥集團化學試劑有限公司)2 mL，置于沸水浴中加熱10 min，冷卻后加蒸餾水20 mL。用快速混勻器(SK-1型，常州國華電器有限公司)將試管中的液體充分混勻，靜置30 min，在波長540 nm處測定吸光值，并按照式(4)計算葡萄糖質量濃度。

葡萄糖標準曲線的制作方法如下：準確稱取干燥至恒質量后的葡萄糖100 mg，加少量蒸餾水溶解后，以蒸餾水定容至100 mL，即含葡萄糖為1.0 mg/mL。分別取標準葡萄糖溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mL于試管中，用蒸餾水補足至2 mL，加入DNS試劑2 mL。在沸水浴中加熱10 min，冷卻后加蒸餾水20 mL，用快速混勻器將試管中的液體充分混勻，靜置30 min。在波長540 nm下測定其吸光值A540。吸光值與葡萄糖質量濃度的關系見式(4)。

(4)

式中:A540為吸光值；ρg為葡萄糖質量濃度，g/L。

2 結果與討論

2.1 膜通量的穩(wěn)定性

每次對混合溶液進行超濾前，在操作壓力0.6 MPa、錯流速率0.12 m/s的條件下測定膜的純水通量，以檢驗膜通量的穩(wěn)定性，結果見圖2。由圖2可知：膜的純水通量幾乎不變，維持在130 L/(m2·h)左右。這說明每次清洗能使膜通量恢復到初始水平，從而保證實驗數(shù)據(jù)的可比性。

圖2 實驗前超濾膜的純水通量Fig.2 Pure-water flux of ultrafiltration membrane before each test

2.2 分離過程中通量、截留率的變化

在操作壓力0.6 MPa、錯流速率0.12 m/s的條件下對混合溶液(木質素質量濃度為0.8 g/L，葡萄糖質量濃度為6 g/L)進行分離，圖3表示分離過程中通量的變化。由圖3可知：通量初始值為131 L/(m2·h)，5～20 min后穩(wěn)定在108 L/(m2·h)。

圖3 分離過程中通量的變化Fig.3 Changes of flux during separation

膜分離的操作壓力和錯流速率分別設定在0.6 MPa、0.12 m/s。圖4表示分離過程中木質素和葡萄糖截留率的變化。由圖4可知：木質素截留率隨時間的變化很小，基本穩(wěn)定在97%。葡萄糖的初始截留率為3.4%，5 min后基本穩(wěn)定在14%。因此，本研究在超濾10 min后取樣，再測定通量、木質素和葡萄糖的濃度。

圖4 分離過程中木質素和葡萄糖截留率的變化 Fig.4 Changes of retention of lignin and glucose during separation

2.3 木質素和葡萄糖濃度的影響

圖5 木質素和葡萄糖質量濃度對通量的影響Fig.5 Effects of concentration of lignin and glucose on flux

圖5表示木質素和葡萄糖濃度對通量的影響。膜分離的操作壓力和錯流速率分別設定在0.6 MPa、0.12 m/s。由圖5可知：通量隨葡萄糖和木質素濃度的上升而下降。葡萄糖質量濃度為2 g/L、木質素質量濃度為0時，通量為113 L/(m2·h)。當葡萄糖質量濃度上升到15 g/L，木質素質量濃度上升到1.6 g/L時，通量下降到89 L/(m2·h)。通量下降的主要原因在于驅動力降低和濃差極化。在同一操作壓力下，木質素和葡萄糖濃度增加使膜兩側的滲透壓差增大，驅動力降低。與此同時，木質素濃度越高，在膜表面形成濃差極化阻力越大。經(jīng)預實驗發(fā)現(xiàn)，葡萄糖濃度對木質素和葡萄糖截留率影響很小。因此，在后續(xù)實驗中，混合溶液的葡萄糖質量濃度設定為6 g/L。

圖6表示木質素濃度對木質素和葡萄糖截留率的影響。膜分離的操作壓力和錯流速率分別設定在0.6 MPa、0.12 m/s。由圖6可知：木質素截留率不受木質素濃度影響，基本穩(wěn)定在97%。本研究中50.3%木質素的相對分子質量小于5 000(圖1)，而大部分小于膜截留相對分子質量的木質素也被截留，其原因在于木質素分子具有復雜的空間結構。在秸稈的木質素結構中愈創(chuàng)木酚基團和紫丁基基團含量最多。而愈創(chuàng)木酚基團的空間結構松散，紫丁香基基團的空間結構緊湊。Toledano等[11]和Alriols等[12]發(fā)現(xiàn)，用不同截留相對分子質量的膜對木質素分級時，低相對分子質量組分中含有較多的紫丁香基基團，高相對分子質量組分中含有較多的愈創(chuàng)木酚基團。此外，可溶性木質素含有大量的酚羥基和醇羥基，通過氫鍵[17-18]結合，會形成更大的聚合物。

葡萄糖截留率受木質素濃度的影響較大。當木質素質量濃度從0增加到1.2 g/L時，葡萄糖截留率從4%上升到16%，但是當木質素質量濃度大于1.2 g/L時，葡萄糖截留率基本穩(wěn)定。這是因為部分木質素堵塞在膜孔內，使膜孔空隙變小，造成部分葡萄糖被截留。此外，膜表面形成木質素濃差極化層，其厚度會隨著木質素濃度的增加而增加，使葡萄糖截留率增大。當木質素濃度達到一定程度后，濃差極化層厚度趨于穩(wěn)定，葡萄糖的截留率不再增加[18]。

圖6 木質素濃度對木質素和葡萄糖截留率的影響Fig.6 Effects of lignin concentration on retention of lignin and glucose

2.4 操作壓力和錯流速率的影響

因為超濾是一種壓力驅動的過程，所以操作壓力在分離過程中扮演著重要的角色[17]。本研究在不同壓力下對混合溶液(葡萄糖質量濃度為6 g/L，木質素質量濃度為0.4 g/L)進行分離，考察了操作壓力對通量、木質素和葡萄糖截留率的影響。

圖7、圖8分別表示操作壓力對通量和截留率的影響。其中，葡萄糖質量濃度設定在6 g/L，木質素質量濃度設定在0.4 g/L，錯流速率設定在0.12 m/s。由圖7可知：通量隨操作壓力的升高而呈線性增加。此時的膜分離中，滲透壓基本不變，因此驅動力的增加與操作壓力的升高相一致[19]。在錯流速率為0.12 m/s的條件下，當操作壓力從0.2 MPa增加到1 MPa時，通量從33 L/(m2·h)增加到186 L/(m2·h)。由圖8可知：在0.2～1 MPa的操作壓力范圍內，木質素和葡萄糖的截留率基本不變，分別穩(wěn)定在97%、10%左右。

圖7 操作壓力對通量的影響Fig.7 Effects of applied pressure on flux

圖8 操作壓力對木質素和葡萄糖截留率的影響Fig.8 Effects of applied pressure on retention of lignin and glucose

在操作壓力一定(0.6 MPa)、錯流速率不同的條件下對混合溶液(葡萄糖質量濃度為6 g/L，木質素質量濃度為0.8 g/L)進行分離，測定通量、木質素和葡萄糖的截留率。圖9表示錯流速率對通量的影響。由圖9可知：當錯流速率從0.12 m/s增加到0.17 m/s時，通量從94 L/(m2·h) 增加到118 L/(m2·h)。當錯流速率大于0.17 m/s時，通量基本不變。由此可見，在一定范圍內增加錯流速率能夠減小膜表面的濃差極化，從而提高通量[17,20-21]。

圖9 錯流速率對通量的影響Fig.9 Effect of crossflow velocity on flux

圖10表示錯流速率對木質素和葡萄糖截留率的影響。其中，葡萄糖質量濃度設定在6 g/L，木質素質量濃度設定在0.8 g/L，操作壓力設定在0.6 MPa。由圖10可知：木質素截留率在錯流速率為0.12～0.22 m/s范圍內基本不變，穩(wěn)定在97%。另一方面，在錯流速率范圍0.12～0.17 m/s內，葡萄糖截留率隨錯流速率的增加而逐漸降低。在錯流速率為0.12 m/s時，葡萄糖截留率為14%，當錯流速率大于0.17 m/s時，截留率保持穩(wěn)定在7.3%。

圖10 錯流速率對木質素和葡萄糖截留率的影響Fig.10 Effects of crossflow velocity on retention of lignin and glucose

一般來說，膜表面的濃差極化和膜孔堵塞是葡萄糖被截留的主要原因。錯流速率的增加可以減少濃差極化，從而降低葡萄糖截留率[17,20-21]。很明顯，錯流速率的增加有助于提高處理能力，改善木質素和葡萄糖的分離。

3 結 論

以木質素和葡萄糖的混合溶液為木質纖維素水解液模型，采用截留相對分子質量為5 000的卷式聚砜膜對葡萄糖和木質素進行分離，在木質素質量濃度0～1.6 g/L、葡萄糖質量濃度2～15 g/L、操作壓力0.2～1 MPa、錯流速率0.12～0.22 m/s的范圍內，分別探討了木質素和葡萄糖濃度、操作壓力、錯流速率對通量、木質素和葡萄糖截留率的影響。

1) 通量隨葡萄糖濃度和木質素濃度的增加而降低,隨操作壓力、錯流速率的增加而增加。在葡萄糖質量濃度6 g/L、木質素質量濃度0.8 g/L、操作壓力0.6 MPa的條件下，當錯流速率從0.12 m/s增加到0.17 m/s時，通量從94 L/m2·h 增加到118 L/(m2·h)。當錯流速率大于0.17 m/s時，通量不受錯流速率的影響。

2)木質素截留率不受木質素和葡萄糖濃度、操作壓力、錯流速率的影響，基本穩(wěn)定在97%。

3)葡萄糖截留率不受葡萄糖濃度、操作壓力的影響，隨木質素濃度的增加而增加，并隨錯流速率的增加而減小。在0.8 g/L的木質素質量濃度條件下，當錯流速率從0.12 m/s增加到0.17 m/s時，葡萄糖截留率從14%降到7.3%。當錯流速率大于0.17 m/s時，葡萄糖截留率不受錯流速率的影響。

本研究通過實驗證明了采用截留分子相對質量為5 000的卷式聚醚砜膜分離混合溶液中木質素和葡萄糖的可行性，今后將以木質纖維素水解液為對象，探討其中各成分對木質素和還原糖分離的影響。

[1] Wang L,Chen H Z.Increased fermentability of enzymatically hydrolyzed steam-exploded corn stover for butanol production by removal of fermentation inhibitors[J].Process Biochem,2011,46:604-607.

[2] 薛珺,蒲歡,孫春寶.纖維素稀酸水解產物中發(fā)酵抑制物的去除方法[J].纖維素科學與技術,2004,12(3):48-52.

[3] Qureshi N,Saha B C,Hector R E,et al.Production of butanol (a biofuel) from agricultural residues:part II.use of corn stover and switchgrass hydrolysates[J].Biomass Bioenergy,2010,34:566-571.

[4] Larsson S,Reimann A,J?nsson L,et al.Comparison of different methods for the detoxification of lignocellulosic hydrolysates of spruce[J].Appl Microbiol Biotech,1999,77:91-103.

[5] Cho D H,Lee Y J,Um Y,et al.Detoxication of model phenolic compounds in lignocellulosic hydrolysates with peroxidase for butanol production fromClostridiumbeijerinckii[J].Appl Microbiol Biotech,2009,83:1035-1043.

[6] Wallberg O,Anders H,Jonsson A S.Kraft cooking liquors from a continuous cooking process[J].Desalination,2005,180:109-118.

[7] Dafinov A,Font J,Ricard G V.Processing of black liquors by UF/NF ceramic membranes[J].Desalination,2005,173:83-90.

[8] Wallberg O,Jarwon A S,Roland W.Ultrafiltration of kraft black liquor with a ceramic membrane[J].Desalination,2003,156:145-153.

[9] Zabkova M,Silva E A B,Rodrigues A E.Recovery of vanillin from lignin/vanillin mixture by using tubular ceramic ultraltration membranes[J].J Membrane Sci,2007,301:221-237.

[10] Sun R,Mark L J,Banks W B,et al.Effect of extraction procedure on the molecular weight of wheat straw lignins[J].Ind Crop Prod,1997,6:97-106.

[11] Toledano A,García A,Mondragon I,et al.Lignin separation and fractionation by ultraltration[J].Sep Purif Technol,2010,71:38-43.

[12] Alriols M G,García A,Llano-ponte R,et al.Combined organosolv and ultrafiltration lignocellulosic biorefinery process[J].Che Eng J，2010,157:113-120.

[13] 何珣.木質纖維素生產蛋白質飼料的基礎研究[D].南京:南京工業(yè)大學,2009:1-63.

[14] 李靜,付時雨,張漢英.水溶性凝膠滲透色譜法測定堿木素分子量[J].色譜,1998,16(3):235-237.

[15] 董艷.膜分離提取純化中藥多糖的工藝研究[D].天津:天津大學,2007:1-67.

[16] Weng Y H,Wei H J,Tsai T Y,et al.Separation of acetic acid from xylose by nanofiltration[J].Sep Purif Technol,2009,67:95-102.

[17] 張龍翔,張庭芳,李令媛.生化實驗方法和技術[M].北京：北京高等教育出版社:1997.

[18] Schmidt J A,Rye C S,Gurnagul N.Lignin inhibits autoxidative degradation of cellulose[J].Polym Degrad Stabil,1995,49:291-297.

[19] Zhang Z,Yang R,Zhang S,et al.Purification of lactulose syrup by using nanofiltration in a diafiltration mode[J].J Food Eng,2011,105:112-118.

[20] Jonsson G,Boesen C E.Concentration polarization in a reverse-osmosis test cell[J].Desalination,1977,21:1-10.

[21] Sutzkover I,Hasson D,Semiat R.Simple technique formeasuring the concentration polarization level in a reverse osmosis system[J].Desalination,2000,131:117-127.

(責任編輯 周曉薇)

Separation of lignin and glucose in solutions by ultrafiltration

HUANG Zhou1,MIAO Yelian1,CHEN Jieyu2,LI Wenli1

(1.College of Food and Light Industrial Engineering,Nanjing Tech University,Nanjing 211800,China;2.Faculty of Bioresource Science,Akita Prefectural University,Akita 0100195,Japan)

Solutions of lignin and glucose were used as models of lignocellulose hydrolysates,and the lignin and the glucose were separated using a spiral-wound polyethersulfone membrane with a molecular weight cut-off of 5 000.The effects of lignin concentration and glucose concentration,applied pressure and crossflow velocity on solution flux,lignin retention and glucose retention were discussed.Under the experimental conditions,the solution flux decreased with increasing of glucose concentration and lignin concentration,and increased with increasing of applied pressure and crossflow velocity.The lignin retention was almost constant at 97%.The glucose retention increased with increasing of lignin concentration,and decreased with increasing of crossflow velocity.Under the condition of a lignin concentration at 0.8 g/L,the glucose retention decreased from 14% to 7.3% when the crossflow velocity increased from 0.12 m/s to 0.17 m/s.A suitable crossflow velocity could improve the ultrafiltration separation of the lignin and the glucose.

enzymatic hydrolysis;glucose;lignin;lignocellulose;membrane separation

10.3969/j.issn.1672-3678.2014.02.011

2012-11-19

國家重點基礎研究發(fā)展計劃(973計劃)(2009CB724700)

黃 洲(1986—)，男，江蘇常熟人，碩士研究生，研究方向：生物化工；繆冶煉(聯(lián)系人)，教授，E-mail：ylmiao@njtech.edu.cn

TK6

A

1672-3678(2014)02-0056-07