范海濤 ,張虎成,曲 偉,王孟君,,劉欣欣,王鵬飛
1北京電子科技職業(yè)學(xué)院生物工程學(xué)院,北京 100029;2 北京聯(lián)合大學(xué),北京 100012;3軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院毒物藥物研究所,北京 100027
紅茶菌(Kombucha)又名海寶或胃寶,在我國(guó)民間很早就有培養(yǎng)和流傳,并作為一種日常飲用的傳統(tǒng)飲料。近年來(lái),國(guó)內(nèi)外醫(yī)學(xué)界的研究表明,紅茶菌對(duì)多種慢性疾病,如高血壓、冠心病、糖尿病等具有一定的療效[1],由于紅茶菌的培養(yǎng)屬于共生菌的混合發(fā)酵過(guò)程,故培養(yǎng)液成分復(fù)雜,目前認(rèn)為多種成分決定了紅茶菌培養(yǎng)液的活性。文獻(xiàn)報(bào)道[2,3],紅茶菌培養(yǎng)液中含有較多的多糖類物質(zhì),并可能與香菇、靈芝和茯苓等真菌多糖類似,具有藥物活性。本課題組前期初步活性研究表明,紅茶菌多糖(Kombucha Polysaccharides,KPS)具有清除自由基的活性,與其他許多多糖活性相仿。
對(duì)紅茶菌多糖含量的測(cè)定已有相關(guān)報(bào)道,如:程江峰[4]以苯酚-硫酸法對(duì)紅茶菌多糖進(jìn)行了含量測(cè)定,初步確定了測(cè)定條件。但是不同單糖與苯酚-硫酸試劑顯色情況不同,其標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率也不同,甚至有些糖差別很大[5],因此單純用葡萄糖作標(biāo)準(zhǔn)曲線來(lái)計(jì)算多糖含量必然會(huì)存在較大誤差。為了開(kāi)發(fā)利用紅茶菌多糖,需建立一種比經(jīng)典方法更可行和準(zhǔn)確的多糖部位中糖含量的測(cè)定方法。對(duì)于雜多糖,分析結(jié)果必須根據(jù)各單糖的組成比及各單糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線的校正系數(shù)加以校正計(jì)算,才能獲得準(zhǔn)確的結(jié)果,操作比較繁瑣[6]。針對(duì)這個(gè)問(wèn)題,有學(xué)者采用測(cè)定換算因子的方法來(lái)消除單純以葡萄糖作標(biāo)準(zhǔn)曲線引起的誤差[7,8],并用于植物來(lái)源多糖的含量測(cè)定。
紅茶菌培養(yǎng)液中多糖包括茶葉來(lái)源的植物多糖及發(fā)酵菌產(chǎn)生的細(xì)菌多糖和真菌多糖,其單糖組成及連接方式等相對(duì)較復(fù)雜,對(duì)苯酚-硫酸比色法進(jìn)行含量測(cè)定的影響因素較多。本研究以精制紅茶菌多糖測(cè)得紅茶菌多糖對(duì)葡萄糖的換算因子,再以此校正采用苯酚-硫酸比色法測(cè)定的紅茶菌粗多糖部位的多糖含量,并進(jìn)行方法學(xué)考察,確定測(cè)定紅茶菌多糖含量的快速、簡(jiǎn)便、可靠的方法。
UV-5800 紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì),上海元析儀器有限公司;恒溫培養(yǎng)箱,上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;CARY50 全波長(zhǎng)紫外掃描儀,瓦里安公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,德國(guó)Heidolph;電子天平,奧豪斯公司;高速離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;冷凍干燥機(jī),天津因賽科技發(fā)展有限公司。
祁紅茶葉,購(gòu)于北京物美大賣場(chǎng)北苑店(產(chǎn)地福建省福安市福東茶廠);紅茶菌菌種為本實(shí)驗(yàn)室保存;苯酚,為重蒸苯酚,購(gòu)自北京鼎國(guó)生物技術(shù)有限責(zé)任公司;過(guò)氧化氫、葡萄糖、氯化鈉、三氯甲烷、正丁醇、無(wú)水乙醇等試劑均為分析純;濃硫酸為優(yōu)級(jí)純。
稱取4 g 紅茶,以1000 mL 的沸水煮20 min,加入50 g 葡萄糖,煮10 min,放涼后濾去茶葉補(bǔ)足水至1000 mL 作為紅茶菌培養(yǎng)基。將培養(yǎng)基分裝、滅菌、接種、培養(yǎng)后得到紅茶菌培養(yǎng)液。
培養(yǎng)10 d 后的紅茶菌培養(yǎng)液,棄去菌膜,取菌液460 mL 沸水提取30 min,冷卻后3000 rpm 離心,取上清,50 ℃減壓濃縮至小體積,冷卻至室溫后加入乙醇,至溶液中乙醇的體積分?jǐn)?shù)為80%,置于4℃冰箱中過(guò)夜,次日棄上清,并將沉淀?yè)]干乙醇后以水溶解后再次離心,上清液再次以80%乙醇沉淀,4℃冰箱中過(guò)夜后棄上清,如此反復(fù)處理多次,直至目測(cè)多糖溶液無(wú)色,將多糖溶液以Sevag 法除蛋白多次,直至其在280 nm 處無(wú)明顯紫外吸收峰,除蛋白結(jié)束,濃縮水層得粗多糖溶液,冷凍干燥得紅茶菌粗多糖,為灰白色粉末51.8 mg,計(jì)算其得率為11.26 mg/100 mL。
將紅茶菌粗多糖先后用過(guò)氧化氫、透析處理,并以無(wú)水乙醇、丙酮反復(fù)洗滌8 次后真空冷凍干燥,即得紅茶菌精制多糖。本實(shí)驗(yàn)室曾對(duì)該操作下的黑骨藤精制多糖進(jìn)行了驗(yàn)證,可保證多糖中基本不含其他雜質(zhì)[9]。
2.3.1 苯酚溶液的配制
稱取苯酚36 g,加入蒸餾水24 mL,即為60%的苯酚溶液,冰箱中密封避光長(zhǎng)期保存。
取密封避光保存的60%苯酚溶液,放置于室溫,精密移取5 mL 置于50 mL 的容量瓶中,定容,即為6%的苯酚溶液,臨用前現(xiàn)配。
2.3.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液的配制
精密稱定105 ℃干燥至恒重的無(wú)水葡萄糖50 mg,蒸餾水定容于50 mL 容量瓶中,搖勻,配制成濃度為1 g/L 的儲(chǔ)備液。從儲(chǔ)備液中分別精密移取0.5、1.0、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、5.0、6.0 mL 置于9個(gè)50 mL 容量瓶中,蒸餾水定容,配制成10、20、40、50、60、70、80、100、120 mg/L 的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液。
2.3.3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
精密移取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液各1.0 mL,空白取1.0 mL 水,分別置于50 mL 容量瓶中,各加6%的苯酚1.0 mL 后充分振搖,再迅速加入濃硫酸5.0 mL,振搖,室溫放置40 min 后于490 nm 處測(cè)定吸光度,以葡萄糖濃度(C)對(duì)吸光度(A)進(jìn)行線性回歸,在10~100 mg/L 范圍內(nèi)得回歸方程C=131.58A -4.88,r=0.9997,葡萄糖對(duì)照品在此范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.3.4 紅茶菌精制多糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液的配制
按照2.3.2 方法,將紅茶菌精制多糖配制成40、50、60、70、80 和100 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)系列溶液。
2.3.5 紅茶菌精制多糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
按照2.3.3 方法,得紅茶菌精制多糖的回歸方程C=797.22A-6.26,r=0.9991,紅茶菌精制多糖在20~100 mg/L 范圍內(nèi)的線性關(guān)系良好。
根據(jù)苯酚-硫酸法測(cè)定糖含量的原理,不同種類的糖與苯酚-硫酸試劑顯色情況不同,利用換算因子校正測(cè)定結(jié)果能夠較好地消除這個(gè)因素帶來(lái)的誤差,使結(jié)果更準(zhǔn)確。
精密稱定紅茶菌精制多糖20.3 mg,蒸餾水定容于50 mL 容量瓶中,配制成濃度為406 mg/L 的儲(chǔ)備液。從中取出5 mL 置于25 mL 的容量瓶中,蒸餾水定容,配制成81.2 mg/L 的待測(cè)溶液。精密移取精制多糖的待測(cè)溶液1.0 mL,按照測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測(cè)定其吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算其中的多糖濃度,按f=W/(C ×D)計(jì)算換算因子,其中W 為樣品配制濃度(mg/L),C 為通過(guò)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出的多糖濃度(mg/L),D 為樣品溶液稀釋的倍數(shù),本實(shí)驗(yàn)未進(jìn)行稀釋,D=1,測(cè)得f=5.93(n=3)。
精密稱定紅茶菌粗多糖77.7 mg,定容于10 mL容量瓶中,從中精密移取2 mL,定容于50 mL 容量瓶中,配制成濃度為310.8 mg/L 的儲(chǔ)備液。從中取出10 mL 置于50 mL 的容量瓶中,定容,配制成62.2 mg/L 的待測(cè)溶液。
精密移取紅茶菌粗多糖待測(cè)液1.0 mL,按測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測(cè)定其吸光度,平行測(cè)定6 份,得吸光度平均值為0.103,RSD 為4.2%(n=6),表明此方法精密度良好。
精密移取紅茶菌粗多糖待測(cè)液1.0 mL,按測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法分別于0、1、2、3、4 h 測(cè)定其吸光度,得吸光度平均值為0.108,RSD 為4.9%(n=5)。
精密吸取已知含量的紅茶菌粗多糖待測(cè)溶液1.0 mL 6 份,分別置于6 個(gè)25 mL 容量瓶中,分別加入葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)系列溶液1.0 mL,按測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法操作,按下式計(jì)算加樣回收率:R=[(M-P/f)/A]×100%,式中P 為加入的紅茶菌粗糖濃度62.1 mg/L;A 為葡萄糖加入量;M 為(A+P)藥量混合后進(jìn)行回收實(shí)驗(yàn)所得測(cè)定值經(jīng)換算后得到的總糖量;f 為紅茶菌多糖-葡萄糖的換算因子5.93。測(cè)得平均加樣回收率為101.40%,RSD 5.03%,見(jiàn)表1。
表1 紅茶菌多糖加樣回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 1 Results of recovery test of Kombucha polysaccharides
精密移取粗多糖待測(cè)溶液1.0 mL,按照測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測(cè)定其吸光度,根據(jù)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算其中的多糖濃度。多糖含量=CDf/W ×100%,計(jì)算得紅茶菌粗多糖部位中多糖的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為86.93%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為4.2%(n=6)。按照實(shí)驗(yàn)2.2 中粗多糖收率,得紅茶菌培養(yǎng)液中多糖含量為9.79 mg/100 mL。根據(jù)以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定苯酚-硫酸法結(jié)合換算因子測(cè)定紅茶菌培養(yǎng)液中多糖方法可行。
苯酚-硫酸法測(cè)定糖含量時(shí),糖的種類對(duì)結(jié)果影響較大,且個(gè)別糖之間有較大差別,簡(jiǎn)單以葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)不同來(lái)源的多糖進(jìn)行含量測(cè)定會(huì)使結(jié)果差異很大[10],因此有必要采用換算因子法對(duì)測(cè)定結(jié)果進(jìn)行校正,使測(cè)定結(jié)果更加接近真實(shí)值。本研究首次通過(guò)實(shí)驗(yàn)計(jì)算發(fā)現(xiàn)紅茶菌多糖-葡萄糖的換算因子為5.93。
本實(shí)驗(yàn)室對(duì)紅茶菌精制多糖進(jìn)行了進(jìn)一步分離,初步得到十一個(gè)多糖部位,對(duì)這些部位進(jìn)行換算因子的測(cè)定,也有差異,表明這些多糖部位的單糖組成的不同,反映了換算因子校正測(cè)定結(jié)果只能盡可能接近真實(shí)值,應(yīng)該針對(duì)具體的研究對(duì)象分別進(jìn)行測(cè)定和計(jì)算,以保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性。
近年來(lái),對(duì)細(xì)菌及真菌來(lái)源的多糖逐漸清晰的藥理學(xué)研究,表明了其具有廣闊的開(kāi)發(fā)應(yīng)用前景,紅茶菌多糖部位中多糖含量測(cè)定結(jié)果的準(zhǔn)確性,對(duì)紅茶菌多糖的進(jìn)一步研究、開(kāi)發(fā)和利用有現(xiàn)實(shí)意義,本文采用的方法操作簡(jiǎn)便、顯色穩(wěn)定、重現(xiàn)性好、結(jié)果準(zhǔn)確度高,可作為紅茶菌多糖的含量測(cè)定方法。
1 Wu Y(吳燕),Ruan H(阮暉),He GQ(何國(guó)慶).Progress in research and application of Kombucha.Sci Technol Food Ind(食品工業(yè)科技),2012,8:436-438.
2 Kanai K,Kondo E,Jacques PJ,et al.Immunopotentiating effect of fungal glucans as revealed by frequency limitation of postchemotherapy relapse in experimental mouse tuberculosis.Jpn J Med Sci Biol,1980,6:283-293.
3 Ouyang TZ(歐陽(yáng)天贄),Li XD(李小定),Rong JH(榮建華).Recent studies on bioactivities of fungal polysaccharides.Nat Prod Res Dev(天然產(chǎn)物研究與開(kāi)發(fā)),2006,18:524-528.
4 Cheng JF(程江峰).Preliminary Isolation and determination of Kombucha polysaccharides.Northwest Pharm J(西北藥學(xué)雜志),2004,2:61-62.
5 Yang YJ(楊勇杰),Jiang RZ(姜瑞芝),Chen YH(陳英紅),et al.Determination of sugars in heteropolysaccharide by phenol-sulfuric acid method.Chin Tradit Patent Med(中成藥),2005,6:706-708.
6 Chen TQ(陳同強(qiáng)),Adilbekov J,Zhao LG(趙良功),et al.Analysis of the composition of monosaccharides and the contents of polysaccharides in four components of Radix Hedys-ari Polysaccharides 3.Chin Pharm J(中國(guó)藥學(xué)雜志),2012,7:551-555.
7 Xu LY(徐麗媛),Li ZM(李志猛),Yang L(楊蕾),et al.Quantitative determination of polysaccharides in Tusizi(Semen cuscutae).J Beijing Univ Tradit Chin Med(北京中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào)),2011,8:548-551.
8 Zhou JH(周建衡),Li TJ(李天驕),Hong ZF(洪振豐),et al.Extraction and determination of polysaccharide from Rubus alceaefolius Poir.Lishizhen Med Mater Med Res(時(shí)針國(guó)醫(yī)國(guó)藥),2007,5:1055-1056.
9 Sun L(孫磊),Qiao SY(喬善義),Zhao YM(趙毅民).Studies on content determination of polysaccharides in Periploca forrestii.China J Chin Mater Med(中國(guó)中藥雜志),2009,10:1241-1244.
10 Zhuang XW(莊筱葳),Liu XF(劉秀芳),Mao GY(毛貴元),et al.Comparison and optimization of methods for analyzing the water soluble polysaccharides in Cordyceps militaris.Mycosystema(菌物學(xué)報(bào)),2012,3:443-449.