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      釀酒酵母ARS305側翼序列對其自主復制活性的影響

      2013-12-31 00:00:00李珺
      湖北農業(yè)科學 2013年19期

      摘要:利用PCR技術擴增了釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)Ⅲ號染色體上以ARS(Autonomously replicating sequence,ARS)305為核心的不同長度側翼序列,并將其構建到酵母整合型載體pRS405中獲得了重組質粒PA500、PA1000、PA2000,然后通過電轉化法轉入釀酒酵母細胞中,測定了不同ARS305片段對酵母轉化效率及質粒在酵母中穩(wěn)定性。結果表明,并非側翼序列越長ARS活性越高,重組質粒PA1000具有比PA2000更高轉化頻率和轉化穩(wěn)定性,推測ARS兩側序列存在一些順式和反式的調控機制影響ARS自主復制功能。

      關鍵詞:釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae);ARS305;重組質粒;復制起始活性

      中圖分類號:Q78 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)19-4804-03

      真核生物染色體中存在多個復制起始位點,能夠使真核生物巨大的基因組在較短時間內完成復制。釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)的復制起始位點稱為自主復制序列(Autonomously replicating sequence,ARS),首次在釀酒酵母的TRPI基因緊密連鎖DNA序列中發(fā)現(xiàn),含有ARS的質粒轉化酵母后能獨立存在于宿主染色體外且能自主復制[1]。此后,Irene等[2]從釀酒酵母Ⅲ號染色體中共發(fā)現(xiàn)有19個ARS,約為150 bp,其中含有一段11 bp富含A/T的保守序列ACS[5′-(A/T)TTTA(T/C)(A/G)TTT(A/T)-3′]。然而含有保守序列ACS的不同片段在ARS活性方面卻表現(xiàn)出明顯的差異,部分活性高的ARS卻沒有ACS保守序列[3]。說明DNA復制起始功能不僅由ACS保守序列決定,還需核心序列3′和5′側翼序列的參與。

      在酵母遺傳工程中,不考慮載體-宿主系統(tǒng)的類型、外源基因產物的性質和工程菌的培養(yǎng)條件等因素,重組質粒的穩(wěn)定性可以從功能上鑒定復制起始位點的活性。通過DNA重組技術將可能含有ARS的DNA片段構建到缺失復制起始位點的質粒后轉入細胞,如果它有較高的細胞轉化率并且表現(xiàn)為遺傳不穩(wěn)定性,就表明該片段在宿主菌中可能有復制起始位點活性[4]。本研究擴增了以ARS305為核心的不同長度側翼序列,并將其構建到酵母整合型載體pRS405中,通過電轉化法轉入釀酒酵母細胞中,測定了不同ARS片段對酵母轉化效率及質粒在酵母中穩(wěn)定性,為后續(xù)以酵母作為模式生物研究真核基因的復制與轉錄機制提供了參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌株和質粒 Esherichia coli DH5α為內蒙古科技大學生物工程與技術研究所基因工程實驗室保藏。釀酒酵母YPH499(MATα ura3-52 lys2-801 anber ade2-101 ochre trp1-Δ63 his3-Δ200 leu2-Δ1)、整合型載體pRS405由美國新澤西州醫(yī)學院微生物學與分子遺傳學部Newlon教授饋贈。

      1.1.2 試劑 DNA Marker,限制性內切酶,T4 DNA連接酶,Taq DNA聚合酶及PCR產物純化試劑盒購自寶生物工程(大連)有限公司;Agarose購自Invitrogen公司;PCR引物合成及DNA測序工作由生工生物工程(上海)有限公司完成;其他試劑藥品為進口分析純和生化試劑。

      1.1.3 培養(yǎng)基 大腸桿菌的培養(yǎng)使用LB培養(yǎng)基(胰蛋白胨10 g/L,NaCl 10 g/L,酵母浸提物5 g/L,固體培養(yǎng)基瓊脂含量15 g/L);釀酒酵母YPH499的培養(yǎng)使用YPD培養(yǎng)基(胰蛋白胨20 g/L,酵母浸提物10 g/L,高壓滅菌20 min 后,加入100 mL滅菌的20 g/L葡萄糖溶液,固體培養(yǎng)基瓊脂含量15 g/L)。SD 篩選培養(yǎng)基(1.34%YNB,2%葡萄糖,2%瓊脂);氨基酸(20 mg/L Trp,20 mg/L His,20 mg/L Lys)。

      1.2 方法

      1.2.1 酵母基因組的提取 珠磨法提?。菏占^夜培養(yǎng)16~18 h的釀酒酵母YPH499菌液,用TE洗滌2次溶于200 μL TE中;加入50 mg玻璃珠(直徑0.3~0.5 mm)和100 μL酚∶氯仿(25∶24,V/V),漩渦振蕩2~3 min;12 000 r/min離心2 min,取上清,加入等體積酚∶氯仿(25∶24,V/V),抽提后12 000 r/min離心5 min;取上清,加入0.5 μL RNaseA,37 ℃溫浴30 min;加入2倍體積無水乙醇,-20 ℃靜置30 min;10 000 r/min離心5 min,沉淀物用70%乙醇洗2次,自然干燥后溶于20 μL TE,以0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢測。

      1.2.2 ARS305側翼序列的擴增 根據(jù)GenBank中釀酒酵母Ⅲ號染色體上的ARS305序列,利用Primer premier 5.0軟件設計了3對特異性引物(表1),由生工生物工程(上海)有限公司合成。PCR 擴增反應體系總體積為 25 μL:模板DNA 2.0 μL、10×DNA Polymerse Buffer 2.5 μL、EX Taq DNA Polymerse(5 U/μL)0.5 μL、dNTPs (10 mmol/L) 2.0 μL、引物F1和R2(10 mmol/L) 1.0 μL、ddH2O 16.0 μL。PCR反應后回收目的條帶,于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.3 酵母自主復制質粒的構建 采用限制性內切酶XhoⅠ(PstⅠ)和BamHⅠ雙酶切PCR擴增純化產物和整合型載體pRS405,分別回收目的片段和載體片段, 16 ℃條件下T4 DNA連接酶連接24 h,連接產物轉化至E. coli DH5α感受態(tài)細胞,涂布于含氨芐抗性(50 μg/mL)的LB平板上,37 ℃過夜培養(yǎng),提取質粒雙酶切鑒定陽性克隆,同法構建另外兩個重組質粒。

      1.2.4 重組質粒的電轉化 將純化的質粒加入到 100 μL釀酒酵母YPH499感受態(tài)細胞中,輕柔混勻后移入預冷的2 mm電擊杯中。按照文獻[5]設置參數(shù),電擊后迅速加入1 mL預冷的1 mol/L山梨醇緩沖液。28 ℃靜置復蘇 1~2 h后加入1 mL液體YPD培養(yǎng)基,于30 ℃、100 r/min下培養(yǎng)1 h。濃縮培養(yǎng)液,將其均勻涂布于含100 μg/mL亮氨酸的YPD平板上,30 ℃避光下培養(yǎng),得到轉化子。再從酵母轉化子中提取質粒DNA,轉化入E. coli DH5α感受態(tài)細胞中,抽提質粒 DNA 并進行雙酶切鑒定。

      2 結果與分析

      2.1 ARS305側翼序列的擴增

      PCR產物經 0.8%的瓊脂糖凝膠電泳后發(fā)現(xiàn),所擴增片段分別為1 200、1 700、2 300 bp,與預期大小相符(圖1)。

      2.2 酵母自主復制質粒的構建及檢測

      酵母整合型質粒pRS405可以在大腸桿菌中復制,氨芐青霉素抗性基因可作為篩選標記。但它不能在酵母中復制,只有通過重組到酵母染色體上才能隨染色體的復制而復制。pRS405帶有LEU基因可作為在酵母LEU基因缺失株中的篩選標記。將擴增的目的片段插入到酶切的pRS405載體中以檢測ARS305側翼序列自主復制活性。挑取單菌落,接種于氨芐抗性液體培養(yǎng)基,37 ℃過夜培養(yǎng),堿裂解法提取質粒。經BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切鑒定,電泳結果與預期大小相符(圖2),表明成功構建了自我復制型載體PA500、PA1000、PA2000。

      2.3 ARS功能質粒丟失率的測定

      酵母轉化效率是鑒定自主復制活性強弱的直接指標。將質粒PA500、PA1000、PA2000定量轉化酵母。結果表明,盡管這些片段均有ARS活性,但酵母轉化效率存在一定差異,且質粒PA1000比PA2000有更高的轉化頻率。

      由于含有 ARS 片段的質粒在酵母細胞內獨立復制,并非整合到酵母染色體上,所以在細胞分裂過程中,就存在質粒丟失問題。將含有質粒PA500、PA1000、PA2000的酵母于完全YPD培養(yǎng)基中經約8代培養(yǎng)(16 h),經計算質粒PA500每代的丟失率為16.2%,質粒PA1000 每代的丟失率為10.7%,質粒PA2000每代的丟失率為13.8%。這說明它們在酵母中都是不穩(wěn)定的(表2)。

      3 小結與討論

      盡管真核生物的復制在進化中有很強的保守性,但不同物種的DNA復制起始位點之間卻缺少明顯的一致序列或結構。釀酒酵母的復制起始位點由11 bp的ACS保守序列和幾個輔助序列(B區(qū))組成。ACS是復制起始識別蛋白ORC結合位點。ACS的側翼序列不保守,但其對ARS的活性卻是非常重要的[7]。

      雖然在酵母中大多數(shù)ARS都有ACS,但其中有些位點的使用頻率比其他位點的更高,且有一些潛在的復制起始位點在正常生長條件下從不使用,而一旦這些潛在的復制起始位點序列克隆到質粒上,都能有效地作為復制起始位點行使其功能。因此,在酵母細胞核中染色體的環(huán)境諸如核小體定位、染色質修飾、ARS序列特征等能決定哪些潛在的位點被用作起始點以及使用的頻率。Theis等[3]研究發(fā)現(xiàn)當敲除Ⅲ號染色體上其他高活性ARS,ARS308復制起始活性大大增強。Eaton等[8]等利用高通量列分析測定了酵母體內ARS兩側的核小體定位圖譜,發(fā)現(xiàn)酵母復制起始位點ARS兩側核小體分布具有一定的規(guī)律,復制起始識別蛋白ORC的結合也需要ARS兩側精確的核小體定位。

      本研究擴增了釀酒酵母Ⅲ號染色體有活性的ARS305及以ARS305為核心不同長度的側翼序列,并將目的片段構建到酵母整合型載體pRS405中獲得重組質粒PA500、PA1000、PA2000。酵母電轉化試驗發(fā)現(xiàn)ARS活性不僅受ACS元件控制,其旁側序列對其活性也有重要影響,且并非側翼序列越長活性越高(PA1000具有比PA2000更高轉化頻率和轉化穩(wěn)定性),推測延長的1 000 bp序列為ARS305活性負調節(jié)元件,與相應的反式作用因子共同調控ARS305活性,因此ARS功能并不完全依賴于ACS和解鏈程度,可能涉及一些順式和反式的調控機制。

      參考文獻:

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      [4] 張 迪,霍克克.真核 DNA復制起始點的結構與功能研究進展[J].高技術通訊,2003,13(12):98-102.

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      [8] EATON M L, GALANI K, KANG S, et al. Conserved nucleosome positioning defines replication origins[J]. Genes Development,2010,24(8):748-753.

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