李雪萍,苗昌盛,朱恩作,賀春玲,李在留
(1.河南科技大學 林學院,河南 洛陽 471003;2. 廣西大學 林學院,廣西 南寧 530004)
野生瀕危掌葉木SRAP-PCR體系的建立與優(yōu)化
李雪萍1,苗昌盛1,朱恩作1,賀春玲1,李在留2
(1.河南科技大學 林學院,河南 洛陽 471003;2. 廣西大學 林學院,廣西 南寧 530004)
以野生瀕危植物掌葉木的葉片為材料,通過正交試驗與單因素試驗相結合的方法,研究了模板DNA用量、Taq DNA 聚合酶用量、dNTP濃度、Mg2+濃度、引物濃度等因素對SRAP-PCR反應的影響,建立了適宜于掌葉木SRAP分析的擴增體系,即20 μL的反應體系中含模板DNA約20 ng,Mg2+2.0 mmol/L,引物0.6 μmol/L,dNTP 0.20 mmol/L,Taq DNA聚合酶1.5 U。該研究為利用SRAP技術分析掌葉木遺傳多樣性、進行掌葉木種質資源相關研究等奠定了良好的基礎。
掌葉木;SRAP;PCR;優(yōu)化
掌葉木Handeliodendron bodinieri,我國特有的珍稀瀕危野生物種,無患子科Sapindaceae掌葉木屬Handeliodendron落葉大喬木,第三紀孑遺植物。該物種分布區(qū)域狹小,全球僅見我國貴州南部的荔波、獨山以及廣西隆林、田林、凌云等縣零星分布[1]。作為亞熱帶石灰?guī)r石山常綠、落葉闊葉混交林的特有樹種之一,其對古植物、古地理、古氣候的研究以及喀斯特地形地貌研究與保護具有重要意義[2-4]。
SRAP(Sequence-related amplified polymorphism,序列擴增相關多態(tài)性)是Li和Quiros[5]發(fā)明的一種新型分子標記技術,其原理是利用獨特的引物設計對ORFs(open reading frames, 開放閱讀框架)進行擴增。因其具有引物通用性、在基因組中分布均勻、多態(tài)性高、操作簡單等優(yōu)點,近年來在遺傳多樣性分析、雜種鑒定、遺傳連鎖圖譜構建等方面應用廣泛[6-11]。
本研究對SRAP-PCR擴增體系的相關影響因素進行優(yōu)化篩選,建立適于掌葉木的簡單、高效、穩(wěn)定的SRAP反應體系,為進一步開展野生瀕危植物掌葉木的種質資源和分子生物學研究奠定基礎。
試驗材料采自廣西省鳳山縣巴蠟猴山境內,取其健康葉片,于冰壺中帶回實驗室后置于-70℃超低溫冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
采用申丹等[12]介紹的改良CTAB法,提取掌葉木的總DNA。根據相關文獻[13-19],設其原初反應體系(20 μL )為: 30 ng模板DNA,2.0 mmol/L MgCl2,0.20 mmol/L dNTP,0.20 μmol/L Primer1,0.20 μmol/L Primer2,1×PCR Buffer,Taq DNA聚合酶 1.0 U。初步反應程序依照Li和Quiros的程序,即:94 ℃預變性5 min,然后先執(zhí)行5個擴增循環(huán),每個循環(huán)中,94 ℃變性45 s,35 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min;再執(zhí)行35個循環(huán),每個循環(huán)中,94 ℃變性45 s,50 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min;最后72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。
引物采用通用SRAP的序列,由上海生工生物工程公司合成。擴增反應在SENSQUEST LAB CYCLER基因擴增儀上進行,所用Taq DNA聚合酶、dNTP均為Takara公司產品。擴增產物用1.5%瓊脂糖凝膠電泳進行檢測,3 V/cm恒定電壓下電泳約1.5 h,自動凝膠成像系統(tǒng)(UVItec)拍照記錄。
為了確定最佳的掌葉木SRAP-PCR的擴增條件,從4對SRAP引物(詳見表1)的16組引物組合中,初步選擇出譜帶多態(tài)性較高的通用引物Em3-Me1為引物,進行4因素(Mg2+濃度、dNTP濃度、引物濃度、Taq DNA聚合酶用量)4水平的正交優(yōu)化(見表2)及各因素的單因素試驗(各因素變化量詳見表3)研究,在正交試驗的基礎上,對DNA模板用量亦進行了5水平的試驗。
表1 所用SRAP引物及其序列Table 1 List of SRAP primers used in study
掌葉木SRAP-PCR體系中,Mg2+、dNTP、引物濃度及Taq DNA聚合酶用量的4因素4水平的正交優(yōu)化結果見圖1。參照何正文等[20]的方法,對擴增結果進行直觀分析,評定出第7泳道為最佳。即其對應的擴增體系(20 μL)為:Mg2+2.0 mmol/L,dNTP 0.20 mmol/L,引物 0.4 μmol/L,Taq DNA 聚合酶1.0 U。
表2 SRAP-PCR正交設計Table 2 SRAP-PCR orthogonal design used in study
表3 SRAP-PCR體系優(yōu)化的因素與水平Table 3 Factors and levels of SRAP-PCR system optimization
圖1 掌葉木的SRAP-PCR正交試驗圖譜Fig.1 SRAP-PCR pattern for an orthogonal design of H. bodinieri
2.2.1 模板濃度的影響
在本研究所設定的5個DNA用量下,模板DNA的用量對PCR擴增產物的產量和特異性有一定的影響。如圖2所示,雖然不同的模板DNA用量下均有擴增產物,但存在一定差別;隨著DNA用量的增加,擴增產物的條帶逐漸減少;DNA用量在10~30 ng之間時,擴增產物的條帶數目較多且比較清晰。因此,選擇模板DNA的最適用量為20 ng。
圖2 不同DNA用量對SRAP-PCR的影響Fig. 2 Effects of template DNA concentrations on SRAP-generated bands
2.2.2 Mg2+濃度的影響
Mg2+是Taq DNA聚合酶的激活劑,一般情況下,Mg2+不足時,Taq DNA聚合酶的作用效率降低,且dNTP競爭Mg2+,同時Mg2+受dNTP總量的影響。由圖3可以看出,在本研究中,當Mg2+濃度較低(1.0 mmol/L)時,沒有擴增條帶;當Mg2+濃度高于2.0 mmol/L時,均能得到條帶清晰的譜帶。最終選擇Mg2+的濃度為2.0 mmol/L。
圖3 Mg2+濃度對SRAP-PCR的影響Fig.3 Effects of Mg2+ concentrations on SRAP-generatedbands
2.2.3 dNTP濃度的影響
dNTP作為PCR擴增反應的原料,在PCR反應中為Taq DNA聚合酶提供底物。dNTP濃度過低時,可能導致擴增產物的減少;濃度過高時,則會增加錯誤率,同時會與Taq DNA聚合酶競爭Mg2+,引起反應中Mg2+總量的下降,從而抑制Taq DNA聚合酶的活性,影響擴增效率,甚至會阻止反應進行。
試驗結果(見圖4)表明,當dNTP濃度在0.10~0.30 mmol/L之間時,隨著其濃度的增加,擴增條帶由弱到強;dNTP濃度為0.40~0.50 mmol/L時,譜帶反而消失成彌散狀。因此,選擇使用0.20 mmol/L為dNTP的最適濃度。
圖4 dNTP濃度對SRAP-PCR的影響Fig.4 Effects of dNTP concentrations on SRAP-generated bands
2.2.4 引物濃度的影響
引物的選擇及用量影響著特異性條帶的清晰度。引物用量較小時,其與模板DNA的結合效率較低,產物的產量會受到影響;但引物濃度過大時,會增加非特異性擴增,引物二聚體的形成概率增加,以及與Taq DNA聚合酶競爭影響其與Mg2+結合的幾率。如圖5所示,在0.2~1.0 μmol/L的引物范圍內,均能得到相似的擴增條帶,僅當引物濃度為0.2 μmol/L時,擴增出的條帶稍有模糊。綜合考慮,確定0.6 μmol/L為引物最適濃度。
圖5 引物濃度對SRAP-PCR的影響Fig. 5 Effects of primers concentrations on SRAP-generated bands
2.2.5 Taq DNA聚合酶用量
一般認為,Taq DNA聚合酶用量過高會導致非特異性擴增,同時試驗成本較高;但濃度過小會影響擴增效率,降低擴增產物的產量。在本研究中,Taq DNA聚合酶5個梯度用量下,都有條帶擴出:當Taq DNA聚合酶用量為0.5 U時,擴增條帶相對較弱;其余4個用量下,所得條帶均較清晰,差異不大(見圖6)??紤]到成本問題,將1.5 U確定為Taq DNA聚合酶的適宜用量。
圖6 Taq酶用量對SRAP-PCR的影響Fig. 6 Effects of TaqDNA polymerase dosages on SRAP-generated bands
本研究通過單因素、正交試驗相結合的方法,對PCR擴增體系中的Mg2+濃度、dNTP濃度、引物濃度及Taq DNA聚合酶等影響因素進行優(yōu)化,建立起重復性好、穩(wěn)定性強的適于掌葉木SRAPPCR的反應體系,即 20 μL體系中,模板用量為20 ng,Mg2+濃度為2.0 mmol/L,引物濃度為0.6 μmol/L,dNTP濃度為 0.20 mmol/L,Taq DNA聚合酶1.5 U。該研究為今后開展野生瀕危植物掌葉木的相關研究奠定了良好的基礎。
[1] 藍開敏. 中國珍稀瀕危植物(掌葉木)[M]. 上海: 上海教育出版社, 1989: 294.
[2] Harrington M G, Edwards K J, Johnson S A, et al. Phylogenetic inference in Sapindaceae sensu lato using plastid matK and rbcL DNA sequences[J]. Systematic Botany, 2005, 30: 366-382.
[3] 曹麗敏, 夏念和, 鄧云飛. 掌葉木的花器官發(fā)生及其系統(tǒng)學意義[J]. 植物分類學報, 2006, 44(4): 393-400.
[4] Cao L M, Xia N H, Deng Y F. Embryology of Handeliodendron bodinieri (Sapindaceae) and its systematic value development of male and female gametophytes[J]. Plant Syst. Evol., 2008, 274:17-23.
[5] Li G, Quiros C F. Sequence-related amplified ploymorphism(SRAP), a new marker system based on a simple PCR reaction:its application to mapping and gene tagging in Brassica[J].Theor. Appl. Genet., 2001, 103:455-461.
[6] 薛丹丹, 郭海林, 鄭軼琦, 等. 結縷草植物雜交后代雜種真實性鑒定——SRAP分子標記[J].草業(yè)學報, 2009, 18(1): 72-79.
[7] Majid T, Zahra H, Mehdi R. Genetic diversity and population structure of four Iranian Alfalfa populations revealed by sequence-related amplified polymorphism (SRAP) markers[J].Crop. Sci. Biotech. , 2011, 14(3): 173-178.
[8] Yanchun S, Lu X, Fusheng C. Genetic diversity analysis of Monascus strains using SRAP and ISSR markers[J].Mycoscience, 2011, 52: 224-233.
[9] 張俊衛(wèi), 毛慶山, 包滿珠. 梅遺傳多樣性的SRAP分析[J]. 園藝學報, 2011, 38(1): 117-124.
[10] 陳 暉, 陳美霞, 陶愛芬, 等. 長果種黃麻SRAP標記遺傳連鎖作圖的構建及3個質量性狀基因定位[J]. 中國農業(yè)科學,2011, 44(12): 2422-2430.
[11] 彭邵鋒, 張黨權, 陳永忠, 等. 14個油茶良種遺傳多樣性的SRAP分析[J]. 中南林業(yè)科技大學學報, 2011, 31(1): 80-85.
[12] 申 丹, 曾 杰, 周世良, 等. 4種石山植物DNA提取方法篩選[J]. 廣西科學, 2005, 12(4): 340-342.
[13] 韓 欣, 張黨權, 王志平, 等. 基于SRAP的贛南油茶良種分子鑒別研究[J]. 中南林業(yè)科技大學學報, 2012,32(3):147-151.[14] 唐 琴, 曾秀麗, 廖明安, 等. 大花黃牡丹遺傳多樣性的SRAP分析[J]. 林業(yè)科學, 2012, 48(1): 70-76.
[15] 肖 黎, 馬太洋, 李曉玲, 等. 22種木蓮屬植物親緣關系的SRAP分析[J]. 西北植物學報, 2011, 31(11): 2178-2184.
[16] Xinchun L, Yongfeng L, Youzhen Z, et al. Identification of genetic diversity among cultivars of Phyllostachys violascens using ISSR, SRAP, and AFLP markers[J]. Bot. Rev., 2011, 77:223-232.
[17] 謝子四, 劉德兵, 魏守興, 等. 29個香蕉基因型遺傳多樣性的SRAP分析[J]. 西北植物學報, 2012, 32(8): 1547-1552.
[18] 羅淑萍,曾 斌,孫晉科,等 . 野扁桃ISSR-PCR反應體系的優(yōu)化[J].經濟林研究,2007,25(3):1-5.
[19] 李昌珠,李培旺,張良波,等. 光皮樹無性系ISSR-PCR反應體系的建立[J]. 經濟林研究,2009,27(2):6-9.
[20] 何正文, 劉運生, 陳立華, 等. 正交設計直觀分析法優(yōu)化PCR條件[J]. 湖南醫(yī)科大學學報, 1998, 23(4): 403-404.
Establishment and optimization of SRAP-PCR amplification system in Handeliodendron bodinieri
LI Xue-ping1, MIAO Chang-sheng1, ZHU En-zuo1, HE Chun-ling1, LI Zai-liu2
(1. College of Forestry, Henan University of Science and Technology, Luoyang 471003, Henan, China; 2. College of Forestry, Guangxi University, Nanning 530004, Guangxi, China)
In order to establish an optimal reaction system of SRAP-PCR in Handeliodendron bodinieri, the effects of main elements,such as template DNA concentration, Taq DNA polymerase dosage, dNTP concentration, Mg2+concentration, primer concentration on SRAP-PCR reaction were investigated by an orthogonal design and single factor experiments respectively. The optimal reaction system for SRAP analysis in H. bodinieri was obtained. It consisted of 20 ng template DNA, 1×PCR buffer, 2.0 mmol/L MgCl2, 0.20 mmol/L each of dATP, dCTP, dGTP and dTTP, 1.5 unit of Taq DNA polymerase and 0.6 μmol/L primer in a total volume of 20 μL. The study lays a good foundation for SRAP analysis in H. bodinieri.
Handeliodendron bodinieri; SRAP; PCR; optimization
S759.95;Q948
A
1673-923X(2013)09-0018-04
2013-02-10
國家自然科學基金項目(31060053);河南省自然科學基金項目(62580021);廣西自然科學基金項目(2011GXNSFB018016)
李雪萍(1980-),女,河南洛陽人,講師,博士,從事瀕危植物遺傳多樣性研究;E-mail:L_XX_P_98000@163.com
李在留(1979-),女,云南宣威人,副教授,博士,從事瀕危植物的瀕危機制研究;E-mail:lizailiu666@163.com
[本文編校:謝榮秀]