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    黃芩苷提取精制工藝研究

    2013-12-22 08:05:35廖矛川羅會(huì)畏高瑞希鄒大江黃先菊
    關(guān)鍵詞:膏率堿水提物

    廖矛川,羅會(huì)畏,李 竣,高瑞希,鄒大江,黃先菊

    (中南民族大學(xué)藥學(xué)院,武漢 430074)

    黃芩為唇形科植物ScutellariabaicalensisGeorg的干燥根[1],其性寒味苦,具有清熱燥濕,瀉火解毒功效,主要產(chǎn)于我國(guó)東北、河北、山西、河南、陜西、內(nèi)蒙古等地.其成分黃芩苷具有抑菌抗炎、清熱解毒、螯合金屬離子、鎮(zhèn)靜、降壓、保護(hù)神經(jīng)、抗變態(tài)反應(yīng)和清除超聲陰離子等藥理作用[2],是黃芩的主要活性成分之一,也是黃芩和黃芪制劑的主要質(zhì)量控制指標(biāo)成分.

    黃芩中黃芩苷的提取工藝,除傳統(tǒng)水提取酸沉淀法外,還有以醇和三正辛基氧化膦、堿水、磷酸三丁酯等可回收的有機(jī)溶劑為提取溶劑[3-5]的優(yōu)勢(shì)提取工藝.常用的精制方法有沉淀分離、高速逆流分離、大孔樹脂分離[6,7]等.本文采用水提法、醇提法、堿水提法,并統(tǒng)一比較樹脂法和酸沉淀法這2種工業(yè)可選用精制黃芩苷方法,確定黃芩中黃芩苷提取和精制的最佳工藝路線.

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    黃芩飲片(廣州南北行中藥飲片有限公司,產(chǎn)地黑龍江,經(jīng)中山大學(xué)張華林博士鑒定為正品黃芩),D101型大孔樹脂(安徽三星樹脂科技有限公司),黃芩苷對(duì)照品(110715-201016,中國(guó)藥品生物制品檢定所),甲醇(色譜純,美國(guó)TEDIA天地試劑公司),其他試劑均為分析純.

    高效液相色譜儀(Agilent 1200series),電子天平(CP214型,奧豪斯儀器有限公司),低速離心機(jī)(TDZ5型,長(zhǎng)沙平凡有限公司),真空干燥箱(DZF-6050型,上海精宏有限公司).

    1.2 黃芩提取溶劑的比較

    稱取50g的黃芩飲片,分別用水、60%乙醇、NaOH堿水(pH=10)回流提取3次,提取時(shí)間分別為2,2,1.5 h,每次提取溶劑量為12倍藥材量(g / mL).提取后用2層紗布過濾,2500 r/min離心,取上清液干燥得粗提粉末.3種溶劑提取平行試驗(yàn)3次,按下式計(jì)算出膏率和黃芩苷得率.

    出膏率=干浸膏重量/提取用生藥重量×100% ,

    黃芩苷得率=黃芩苷重量/提取用生藥重量×100% .

    1.3 黃芩苷精制的比較

    1.3.1 酸沉精制實(shí)驗(yàn)

    分別精密稱取2.1中3種提取物干燥粉末各5.0 g,加入150mL蒸餾水40℃超聲溶解,用稀HCl調(diào)至pH=2.0,80℃下保溫30 min,靜置過夜,以2500 r/min離心沉淀,洗滌沉淀至pH=7.0,真空干燥沉淀.

    1.3.2 大孔樹脂精制實(shí)驗(yàn)

    稱取90g D101型大孔樹脂,無水乙醇濕法裝柱,無水乙醇流動(dòng)清洗,檢查乙醇流出液至乙醇液與水(1∶5)混合不呈白色渾濁為止,以大量蒸餾水洗脫至無醇味,待用.分別精密稱取2.1中3種提取物約3.0 g,以20mL水溶解,濕法上柱,使原液吸附30min,大量水淋洗,至洗脫液無色且薄層色譜檢測(cè)不出糖類成分,再以75%乙醇洗脫至無色,收集洗脫液,真空干燥成粉末.

    1.4 黃芩提取物黃芩苷含量測(cè)定

    1.4.1 色譜條件

    色譜柱:Syncronis C18(250mm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相:甲醇/0.4%磷酸(50∶50);檢測(cè)波長(zhǎng)280nm;流速:1mL/min;柱溫:30℃;進(jìn)樣量:20μL.理論塔板數(shù)以黃芩苷峰計(jì)算應(yīng)不低于3000.在上述條件下,得黃芩苷的高效液相色譜圖(見圖1).

    a)黃芩苷標(biāo)準(zhǔn)品;b)水提取物;c)堿水提取物;d)醇提取物;e~g)酸沉精制的水提取、堿水提取物、醇提取物;h~j)大孔樹脂精制的水提取、堿水提取物、醇提取物

    1.4.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    精密稱定黃芩苷對(duì)照品10 mg,置于50mL容量瓶中,加50%甲醇溶解、定容、搖勻,制得200μg/mL黃芩苷對(duì)照品溶液.分別精密吸取對(duì)照品溶液0.25,0.50,1.00,2.00,4.00,8.00mL至10mL容量瓶中,以流動(dòng)相稀釋至刻度,搖勻,得濃度為5,10,20,40,80,160μg/mL標(biāo)準(zhǔn)溶液.分別吸取稀釋后的標(biāo)準(zhǔn)溶液20μL進(jìn)樣,測(cè)定黃芩苷的峰面積.并以峰面積(A)對(duì)質(zhì)量濃度ρ(μg/mL),回歸方程:A=58.121ρ-52.263,r=0.9992,表明黃芩苷在5~160μg/mL范圍內(nèi)線性良好.

    1.4.3 樣品含量的測(cè)定

    精密稱定不同方法下的黃芩樣品各25mg,置于50mL容量瓶中,加入30mL 50%甲醇溶解.超聲處理(功率250W,頻率33kHz)30min,放冷,加50%甲醇定容至刻度,搖勻?yàn)V過,取濾液按下式計(jì)算黃芩苷含量:

    黃芩苷含量(%)=[對(duì)應(yīng)濃度(μg/mL)×20×100]/樣品重(mg)×100%.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 黃芩提取結(jié)果

    黃芩經(jīng)不同溶劑提取后,水提液為黃色渾濁液體,堿水為紅色油狀,醇提液為黃色澄清液體,結(jié)果見表1.由表1可知,堿水提取物中黃芩出膏率為(53.23±1.40)%,明顯高于水和60%乙醇提取物(P<0.01);60%乙醇提取物中黃芩苷得率為(11.84±1.14)%,高于水和堿水提取物(P<0.01);3種提取方法中60%乙醇提取物中黃芩苷含量為(25.13±1.89)%,高于水和堿水提取物中黃芩苷含量(P<0.05).

    表1 黃芩不同提取方法比較 (n=3)

    **P<0.01;*P<0.05

    2.2 酸沉精制結(jié)果

    不同提取方法樣品經(jīng)酸沉淀精制后結(jié)果見表2.由表2可知,醇提取酸沉淀出膏率為(42.17±1.24)%,明顯高于水和堿水提取物(P<0.01);酸沉精制醇提物和水提取黃芩苷含量分別為(60.33±1.02)%和(69.29±1.54)%,明顯優(yōu)于堿水提取物(P<0.01);醇提物黃芩苷得率為(25.40±1.02)%,高于水和堿水提取物(P<0.01).

    表2 不同提取物酸沉法比較(n=3)

    **P<0.01;*P<0.05

    2.3 大孔樹脂精制結(jié)果

    不同提取方法樣品經(jīng)大孔樹脂精制后結(jié)果見表3.由表3可知,大孔樹脂精制后,黃芩出膏率醇提物和大孔水提物分別為(43.96±1.67)%和(34.90±1.52)%,明顯優(yōu)于堿水提物(P<0.01);醇提物黃芩苷含量為(46.68±1.47)%,黃芩苷得率為(20.66±1.51)%,均高于水和堿水提取物(P<0.01).

    表3 不同提取物大孔樹脂精制比較(n=3)

    **P<0.01;*P<0.05

    2.4 各工藝路線比較分析

    各工藝路線總黃芩苷得率和總出膏率的計(jì)算公式為:總黃芩苷得率=總出膏率×總黃芩苷含量,總出膏率為各種方法出膏率之積,總黃芩苷含量為精制所得黃芩苷含量;得出黃芩出膏率最高的方法是醇提取大孔樹脂精制法為20.73%,黃芩苷得率最高的方法是醇提取酸沉淀法為11.93%,黃芩苷含量最高的方法是水提取酸沉淀法為69.29%.

    3 討論

    黃芩苷為黃酮類化合物,脂溶性較大,在水中溶解度小,堿性條件下易溶解.根據(jù)其化學(xué)性質(zhì)的特點(diǎn)采用了水、60%乙醇,堿水三種溶劑提取黃芩藥材.結(jié)果顯示堿水溶劑提取后黃芪出膏率明顯高于水和60%乙醇的提取方法,但其所得雜質(zhì)太多,長(zhǎng)時(shí)間加熱提取易破壞提取物的有效成分.D101型大孔樹脂是一種球狀、非極性聚合物吸附劑,常用于富集各種中草藥中黃酮、皂苷等天然成分及復(fù)方,具有使用方便、價(jià)格低廉的優(yōu)勢(shì),使用大孔樹脂富集黃芩苷樣品相比酸沉法損失量明顯較小,故在不要求獲得高純度產(chǎn)品的條件下可以考慮使用大孔樹脂富集黃芩苷.本實(shí)驗(yàn)采用大孔樹脂精制醇提物,黃芩出膏率最高;酸沉淀法精制醇提取物,黃芩苷得率最高;酸沉淀法精制水提物,黃芩苷含量最高.故在實(shí)際應(yīng)用中以大孔樹脂精制醇提物和酸沉法精制水提物,能獲得較高的黃芩出膏率和黃芩苷含量,為黃芩苷的開發(fā)利用提供基礎(chǔ).

    [1]國(guó)家藥典委員會(huì).中國(guó)藥典:I部[M].北京: 化學(xué)工業(yè)出版社,2010: 282-283.

    [2]張建春,張 華,施 瑛,等.黃芩苷的研究近況[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2005,16(3): 247-249.

    [3]黎萬壽,陳 幸.黃芩苷提取工藝研究[J].中草藥,2000,31(2): 107.

    [4] Kitazaki H,Ishimaru M,Inoue K.et a1.Separation of baicalein from baicalin by solvent extraction[J].Kagaku Kagaku Ronbun.1996,22(2): 287.

    [5]Tsumura & Co.Method of separating and recovering flavone compound having glycoside structure and flavone compound not having glycoside structure: JP,WO/1996/002528 [P].1996-02-01.

    [6] 劉彬果,鐘 蕾,郭文勇,等.大孔吸附樹脂法對(duì)黃芩總黃酮富集純化工藝的研究[J].第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,25(5): 562-564.

    [7] Lu H T,Jiang Y,Chen F.Application of high-speed counter-current chromatography to the preparative separation and purification of baicalin from the Chinese medicinal plant Scutellaria baicalensis[J].J of Chromatogr A,2003,1017(1/2):117-123.

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