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      不同濃度玻璃化冷凍液對牛未成熟卵母細胞發(fā)育能力的影響

      2013-11-30 06:45:26栗穎華禹學禮張德勛陳君怡許亞坤李曉霞昝林森
      家畜生態(tài)學報 2013年6期
      關(guān)鍵詞:細管玻璃化囊胚

      栗穎華 , 禹學禮 ,張德勛 ,陳君怡,許亞坤,李曉霞,昝林森

      (1.河南科技大學 動物科技學院,河南 洛陽 471003;2.洛陽巨爾乳業(yè)有限公司,河南 洛陽471031;3.西北農(nóng)林科技大學 動物科技學院,陜西 楊凌 712100)

      GV期卵母細胞冷凍具有重要的科學意義和應用價值。在人類醫(yī)學領(lǐng)域,GV期卵母細胞冷凍保存可以為放療癌癥患者、卵巢摘除患者保存生殖能力;在畜牧領(lǐng)域,未經(jīng)成熟培養(yǎng)的GV期卵母細胞現(xiàn)場冷凍可以避免長時間運輸對卵母細胞造成的不良影響,為胚胎生物技術(shù)研究提供充足的試驗材料。目前,卵母細胞的冷凍效率非常低,且大多以MII期卵母細胞為冷凍對象,牛MII期卵母細胞經(jīng)冷凍后再體外受精,囊胚率11%~25%[1];而GV期卵母細胞對冷凍更敏感,一直被視為生物材料的“冷凍禁區(qū)”,直到近些年采用玻璃化冷凍才獲得成功,冷凍后成熟率僅為19%~21%,囊胚率僅為1%~5%[2]。影響牛GV期卵母細胞玻璃化冷凍效果的因素眾多,玻璃化冷凍液是最重要的影響因素之一。玻璃化冷凍液的特點是必須添加高濃度冷凍保護劑,冷凍中雖然高濃度冷凍保護劑可以降低冰晶的形成,從而減少冰晶對細胞的損傷[3],但是也會因滲透壓的變化[4]及冷凍保護劑的化學毒性[5-6]而對細胞造成損傷。因此,不同冷凍保護劑對細胞毒性、不同冷凍保護劑的配比是牛GV期卵母細胞冷凍的研究熱點之一。

      本文擬在相關(guān)研究的基礎(chǔ)上,探索不同玻璃化冷凍液對牛卵丘卵母細胞復合體(cumulus oocyte complexes , COCs)冷凍后體外成熟及受精后發(fā)育能力的影響,從而檢測常用的幾種玻璃化冷凍液對卵母細胞的毒性,并篩選出最佳的牛GV期卵母細胞玻璃化冷凍液。

      1 材料與方法

      1.1 材 料

      1.1.1 卵母細胞 從宰殺后的牛體內(nèi)取出卵巢,置于30 ℃的PBS中運到實驗室;從直徑2~8 mm的卵泡中抽吸COCs,在體視顯微鏡下揀出,根據(jù)試驗設(shè)計隨機分組。精液為洛陽白馬寺種公牛站生產(chǎn)的細管冷凍精液。

      1.1.2 開放式拉長細管(open pulled straw, OPS)制備 在小酒精燈火焰上方加熱0.25 mL細管(IMV,L'Aigle,F(xiàn)rance),細管變軟后拉伸至內(nèi)徑約0.8 mm,消毒備用。

      1.1.3 主要試劑和溶液配制 除特別說明外均購自Sigma公司(St. Louis,MO,USA)。玻璃化冷凍液(vitrification solution, VS)的基礎(chǔ)液均為mPBS+0.5M蔗糖+18%聚蔗糖+0.4%BSA。

      玻璃化冷凍液1(VS1):平衡液為基礎(chǔ)液添加5%EG、5%DMSO;冷凍液為基礎(chǔ)液添加10%EG、10%DMSO。

      玻璃化冷凍液2(VS2):平衡液為基礎(chǔ)液添加10%EG、10%DMSO;冷凍液為基礎(chǔ)液添加20% EG、20%DMSO。

      玻璃化冷凍液3(VS3):平衡液為基礎(chǔ)液添加10%EG、10%DMSO;冷凍液為基礎(chǔ)液添加25%EG、25%DMSO。

      解凍液:基礎(chǔ)液為TCM-199 +10%FCS+25mM Hepes,解凍液為基礎(chǔ)液中分別加入0.1 M、0.25 M和0.5 M蔗糖而成。

      1.2 方 法

      1.2.1 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞的毒性試驗 在20 ℃的室溫條件下,隨機將采集的COCs分成數(shù)量相近的7份,將其中一份直接進行體外成熟培養(yǎng),作為對照組;將另6份分別在不同濃度的平衡液中平衡10 min后,在相應的玻璃化冷凍液(VS1、VS2、VS3)中暴露30 s或60 s,最后脫除冷凍劑,分別進行體外成熟培養(yǎng)。將卵母細胞進行染色并觀察,第一極體排出、細胞核達到MII期者為成熟卵母細胞,統(tǒng)計成熟率。

      1.2.2 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞體外受精(In Vitro Fertilization,IVF)后發(fā)育能力的影響 將每次采集的COCs隨機分成數(shù)量相近的4份,其中1份直接進行體外成熟(In Vitro Maturation,IVM)、IVF和早期胚胎體外培養(yǎng)(In Vitro Calture,IVC),作為對照組;另3份分別在VS1、VS2、VS3中冷凍,冷凍采用OPS法[7],解凍后再進行IVM、IVF和IVC[8],受精后2 d統(tǒng)計卵裂率,5~6 d統(tǒng)計桑椹胚數(shù)量并計算桑胚發(fā)育率,7~8 d統(tǒng)計囊胚數(shù)量并計算囊胚發(fā)育率。

      1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

      試驗數(shù)據(jù)采用SPASS 17.0 進行方差分析,以“平均數(shù)±標準誤”表示。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞的毒性

      表1表明,在20 ℃的室溫條件下,牛COCs在VS1中分別暴露30 s、60 s并經(jīng)體外成熟培養(yǎng)后,成熟率分別為81.5%、78.9%,與對照組(81.6%)差異均不顯著(P>0.05),但對照組、30 s組與60 s組依次呈下降趨勢。在VS2中分別暴露30 s、60 s并經(jīng)體外成熟培養(yǎng)后,成熟率分別為78.5%和75.2%,與對照組差異亦均不顯著(P>0.05),對照組、30 s組與60 s組間成熟率亦呈下降趨勢。在VS3中停留30 s時,成熟率為73.0%,與對照組差異不顯著(P>0.05),但60 s組成熟率僅為53.2%,明顯低于對照組(P<0.01)。

      表1 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞的毒性Table 1 In vitro maturation rates of bovine COCs exposed to different vitrification solutions

      注:同列肩標字母不同者表示差異極顯著(P<0.01)。下同。

      Note:Values in same column with different superscripts differ significantly(P<0.01). The same below.

      2.2 三種玻璃化冷凍液對IVF后發(fā)育能力的影響

      表2表明,未經(jīng)冷凍的卵母細胞成熟率、卵裂率、桑椹胚率和囊胚率分別為80.7%、56.4%、20.6%和19.7%,而3個試驗組的上述各指標分別明顯低于對照組(P<0.01)。3個試驗組中,VS1、VS2和VS3組的卵母細胞成熟率分別為61.1%、67.9%±4.7和63.6%,3組間差異不顯著(P>0.05);VS1、VS2和VS3組卵裂率分別為19.0%、33.9%和27.7%,VS2和VS3組明顯高于VS1組,但后二者間差異不顯著(P>0.05);VS2組的桑椹胚率、囊胚率分別為6.3%和5.4%,與VS3組(5.0%、3.6%)差異不顯著(P>0.05),VS1組桑椹胚率和囊胚率均為0。

      表2 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞IVF后發(fā)育能力的影響Table 2 Effect of three vitrification solutions on developmental competence of bovine oocyte following IVF

      3 討 論

      3.1 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞的毒性

      卵母細胞玻璃化冷凍的效果與玻璃化冷凍液中冷凍保護劑的濃度、作用時間等因素密切相關(guān)[9],高濃度冷凍保護劑有可能因滲透壓及自身的化學毒性對卵母細胞產(chǎn)生一定程度的傷害[10]。在眾多研究及本實驗室前期研究的基礎(chǔ)上,本研究選擇三種不同濃度的玻璃化冷凍液進行毒性試驗。在VS1中,DMSO占10%,EG占10%,總濃度為2.89M;VS2中DMSO濃度為20%,EG濃度為20%,總濃度為5.78 M;VS3中DMSO濃度為25%,EG濃度為25%,總濃度達到7.19 M。在20℃的室溫條件下,將COCs分別置于上述幾種玻璃化冷凍液中30 s或60 s后再進行體外成熟培養(yǎng),對比其成熟率發(fā)現(xiàn),當卵母細胞與冷凍液的接觸時間控制在30 s以內(nèi)時,三種不同濃度的冷凍液對卵母細胞成熟率均沒有明顯影響。但是,隨著冷凍保護劑濃度的升高、卵母細胞在冷凍保護劑中停留時間的增加,毒性作用呈增加趨勢,在VS3中,DMSO和EG濃度各達25%(滲透性冷凍保護劑總濃度達50%),當作用時間增加到60 s時,對卵母細胞呈現(xiàn)出明顯的毒性。說明冷凍保護劑的濃度越高、作用時間越長,對卵母細胞造成的損傷越大。就本試驗所選的三種玻璃化冷凍液而言,如果將其在室溫下的操作時間控制在30 s以內(nèi),就不會影響卵母細胞成熟率。實際上,在冷凍過程中只要操作者技術(shù)熟練,并采用分批冷凍,可以將室溫下卵母細胞與玻璃化冷凍液的作用時間控制在30 s 以內(nèi)。

      3.2 三種玻璃化冷凍液對牛卵母細胞IVF后發(fā)育能力的影響

      目前,卵母細胞冷凍大多以MII期卵母細胞為冷凍材料,本試驗以未經(jīng)成熟培養(yǎng)的COCs為冷凍對象,此時,其中的卵母細胞大多處于GV期。將COCs分別用VS1、VS2、VS3冷凍并解凍后,經(jīng)IVM、IVF和早期胚胎體外培養(yǎng),結(jié)果顯示VS2冷凍COCs的效果最好,雖然VS3組與VS2的冷凍效果沒有明顯差異,但由于VS3的濃度高于VS2,從盡可能減小冷凍保護劑濃度對細胞的毒性考慮,GV期卵母細胞的首選冷凍液應是VS2。

      本試驗中, COCs經(jīng)玻冷凍、解凍和IVM后,三個試驗組中VS2組的卵母細胞成熟率最高,為67.9%±4.7,但明顯低于對照組(80.7±5.6;P<0.05),比試驗1中VS2 30 s組的卵母細胞成熟率(78.5%±5.1,表1)低10.6%,說明牛GV期卵母細胞冷凍后成熟率的降低主要受冷凍和解凍過程的影響,而不是由冷凍保護劑的毒性造成的。

      冷凍保護劑在細胞內(nèi)外的平衡是決定細胞冷凍成功與否的關(guān)鍵,而牛COCs的物理、化學和生物學特性決定了其不利于冷凍。據(jù)Massip[11]分析,卵母細胞周圍包被數(shù)層卵丘細胞,又是比較大的單細胞,使得冷凍保護劑進入細胞的速度大大降低,從而影響了玻璃化冷凍的效率。鑒于此,在前人及本實驗室前期研究的基礎(chǔ)上,本試驗選擇了三個配方(VS1、 VS2、VS3)做進一步篩選試驗,三個配方中均采用化學毒性較小、分子量小、滲透性強的DMSO和 EG作為細胞內(nèi)抗凍劑,以降低冷凍保護劑的毒性,提高滲透速度。本試驗中,雖然VS2、VS3組分別獲得了5.4%、3.6%的囊胚率,但明顯低于對照組的19.7%,冷凍效果仍不理想,需要在理論和方法上進行更多的深入研究。

      參考文獻:

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      [3] Mazur P, Seki S, Pinn I L, et al. Extra- and intracellular ice formation in mouse oocytes[J]. Cryobiology, 2005, 51:29-53.

      [4] Pedro P B, Zhu S E, Makino N, Sakurai T, Edashige K, Kasai Met al. Effects of hypotonic stress on the survival of mouse oocytes and embryos at various stages[J]. Cryobiology, 1997, 35:150-158.

      [5] Cha K Y, Chung H M, Lim J M, et al. Freezing immature oocytes[J]. Mol Cell Endocrinol, 2000, 169:43-47.

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      [7] 禹學禮,鄧 雯, 龐有志,等. 開放式拉長細管冷凍法對牛卵母細胞體外受精效果的影響 [J].畜牧獸醫(yī)學報,2005,3: 221-224.

      [8] 禹學禮,鄧 雯,龐有志,等. 培養(yǎng)條件對牛卵母細胞體外受精后胚胎發(fā)育的影響 [J]. 西北農(nóng)林科技大學學報:自然科學版, 2005, 8: 16-20.

      [9] Yamada C, Caetano H V, Simes R, et al. Immature bovine oocyte cryopreservation: Comparison of different associations with ethylene glycol, glycerol and dimethylsulfoxide[J]. Anim Reprod Sci, 2007, 99:384-388.

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      [11] Massip A. Cryopreservation of bovine oocytes: current status and recent developments[J]. Reprod Nutr Dev, 2003, 43:325-330.

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