(中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,湛江524001)
β-受體激動劑(β-agonists),是一類人工合成的藥物,在藥學上稱為β-腎上腺素受體興奮劑[1]。主要用于防治人、獸的支氣管哮喘和支氣管痙攣等癥狀。根據(jù)苯環(huán)取代基及其結(jié)構(gòu),β-受體激動劑可分為苯胺型(克倫特羅、西馬特羅)、苯酚型(沙丁胺醇)、間苯二酚型(特布他林、萊克多巴胺、非諾特羅)[2]。研究表明,在動物飼料中添加β-受體激動劑具有營養(yǎng)再分配作用,可以明顯提高動物瘦肉率,因而常被非法用于動物飼養(yǎng)中[3]。長期食用含有β-受體激動劑殘留的食品會對人體健康產(chǎn)生極大的危害,甚至危害生命。目前,我國對該類藥物在動物飼養(yǎng)及相關(guān)產(chǎn)品中的使用都有嚴格的規(guī)定,并已將β-受體激動劑類列為動物源性食品中的重點監(jiān)控藥物,農(nóng)業(yè)部和各省市農(nóng)業(yè)主管部門均有相關(guān)機構(gòu)對畜禽產(chǎn)品中β-受體激動劑進行監(jiān)測。
目前已報道的β-受體激動劑檢測方法主要有酶聯(lián)免疫法[4-6]、高效液相色譜法[7,8]、氣質(zhì)聯(lián)用法[9-11]和液質(zhì)聯(lián)用法[12-14]等。各個方法均有其優(yōu)缺點,其中酶聯(lián)免疫法程序簡單,分析速度快,檢測成本低,但考慮到樣品復(fù)雜的基質(zhì)體系,易出現(xiàn)假陽性或假陰性,從而造成誤判或漏判,僅作為初篩方法被應(yīng)用;而液相色譜法雖然定量結(jié)果準確度高,但靈敏度相對較低,對復(fù)雜基質(zhì)條件中低含量待測物質(zhì)的定性存在一定困難;氣質(zhì)聯(lián)用法需要使用N,O-雙三甲基硅烷三氟乙酰胺(BSTFA)[11]等衍生試劑進行衍生化處理,步驟較為繁瑣;超高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法具有分析時間短、確證能力強、靈敏度高、抗干擾能力強等優(yōu)點,已逐漸成為分析測試的重要手段之一,將其應(yīng)用于食品中β-受體激動劑的檢測具有重要的現(xiàn)實意義。
由于β-受體激動劑在畜禽產(chǎn)品中與葡萄糖醛酸、硫酸酯蛋白等成分相結(jié)合[12],有機溶劑直接浸提法可以較好的提取游離態(tài)的β-受體激動劑,但不能將結(jié)合態(tài)目標物提取出來,也就不能準確反映樣品中待測物質(zhì)的實際含量,因此須將結(jié)合態(tài)的β-受體激動劑轉(zhuǎn)化為游離態(tài)再進行檢測。目前的研究主要集中在酸法水解[15]和酶法水解[16],酸水解較為劇烈,且水解隨意性大,水解后產(chǎn)物眾多,可能增加測定時的基質(zhì)干擾。而酶水解過程相對溫和,由于酶具有專一性的特點,在合適的酶解條件下酶解樣品既能使結(jié)合態(tài)的β-受體激動劑轉(zhuǎn)化為游離態(tài),又可以盡量避免產(chǎn)生過多的酶解產(chǎn)物干擾測定。目前我國相關(guān)質(zhì)檢機構(gòu)在畜禽產(chǎn)品中β-受體激動劑質(zhì)量安全專項中較多使用的是《農(nóng)業(yè)部1025號公告-18-2008》方法[16],該方法需加酶酶解16h將結(jié)合的β-受體激動劑釋放出來,檢測過程耗費時間較長,對監(jiān)督和執(zhí)法等工作帶來了滯后性和不便性,因此需要進一步研究酶解的最佳作用條件,并建立超高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用檢測方法,在準確定性、定量測定目標物的前提下縮短前處理和分析時間,以適應(yīng)快速檢測的發(fā)展趨勢。本實驗擬優(yōu)化提取豬肉中β-受體激動劑的酶解條件,建立豬肉中9種β-受體激動劑殘留的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測方法,為豬肉樣品中9種β-受體激動劑的快速確證和定量分析提供方法依據(jù)。
豬肉購買于湛江市農(nóng)貿(mào)市場;特布他林、西馬特羅、沙丁胺醇、氯丙那林、非諾特羅、萊克多巴胺、克倫特羅、噴布特羅、妥布特羅,沙丁胺醇-D3、萊克多巴胺-D6及克倫特羅-D9(色譜純,德國Dr.Ehrenstorfer公司);乙腈(色譜純,美國Spectrum公司);乙酸銨(色譜純,美國DIMA公司);甲酸(色譜純,Merck公司); β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶(100000 U/mL, Merck公司);高氯酸、乙酸乙酯及異丙醇(分析純);Oasis?MCX固相萃取柱(3 mL/60 mg,美國 Waters公司);實驗用水為超純水。
ACQΜITY UPLCTM-TQD超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(配有電噴霧離子源(ESI)及Masslynx數(shù)據(jù)處理軟件,美國Waters公司);T25高速均質(zhì)機、MS3 渦旋混合器(德國IKA公司);Milli-QA10 超純水儀(美國Millipore公司);CR22GⅢ 離心機(日本HITACHI公司);E120H超聲波儀(德國Elma公司);SWB-2000恒溫水浴搖床(天津奧特賽恩斯公司)。
1.3.1 標準溶液的配制
單標儲備液:分別準確稱取特布他林、西馬特羅、沙丁胺醇、氯丙那林、非諾特羅、萊克多巴胺、克倫特羅、噴布特羅、妥布特羅標準品10 mg,用甲醇超聲溶解并定容于100 mL容量瓶中,配制成100 μg/mL的單標儲備溶液, -18℃避光保存。
混合標準中間液:分別準確吸取9種單標貯備液1.0 mL于100 mL容量瓶中,加甲醇定容,配制成1.0 μg/mL的混合標準中間液。
混合內(nèi)標工作液:分別吸取適量沙丁胺醇-D3、萊克多巴胺-D6、克倫特羅-D9標準溶液,用甲醇配成100 ng/mL的混合內(nèi)標液。
1.3.2 標準曲線溶液的配制
吸取混合標準中間液和混合內(nèi)標工作液適量,配制成9種β-受體激動劑質(zhì)量濃度分別為0.25、1、2、5、10 μg/L的系列標準工作溶液,其中3種內(nèi)標的質(zhì)量濃度均為1 ng/mL,依次進樣10 μL,并繪制標準工作曲線。
1.3.3 樣品預(yù)處理1.3.3.1 樣品前處理
將購買回的豬肉去脂肪,取瘦肉部分充分絞碎,備用。
稱取2 g絞碎樣品于50 mL塑料離心管中,加入8 mL 0.2 mol/L乙酸銨緩沖溶液(pH為5.2),8000 r/min高速勻漿30 s,再加入適量β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶,渦旋混勻,放置在37 ℃水浴搖床恒溫振蕩適當時間。
酶解到達預(yù)定時間后取出,放置至室溫并充分渦旋,5000 r/min離心8 min,吸取上清液,加入內(nèi)標工作液及0.1 mol/L高氯酸溶液5 mL,充分渦旋混合,用高氯酸調(diào)節(jié)溶液pH值為1.0±0.2,以8000 r/min高速離心8 min去除沉淀,移取上清液并用10 mol/L和1 mol/L的氫氧化鈉溶液調(diào)pH至11。加入10 mL飽和氯化鈉溶液,用10 mL異丙醇-乙酸乙酯(6:4)溶液提取兩次,渦旋混勻10 min,8000 r/min離心8 min后取有機相置于40 ℃水浴下氮氣吹干。吹干后的殘留物用5 mL 0.2 mol/L乙酸銨緩沖溶液(pH為5.2),超聲溶解備用。
Oasis?MCX固相萃取柱先用2 mL甲醇、2 mL去離子水活化。取上述提取液全部過柱,再依次用2 mL去離子水、2mL 2%甲酸溶液淋洗,真空泵負壓下抽干,用5%氨水甲醇溶液2.5 mL洗脫,洗脫液在40 ℃水浴下氮氣吹干。殘渣用1.0 mL含0.1%甲酸的甲醇水溶液(5:95,v/v)溶解,超聲混勻后全部轉(zhuǎn)移至2 mL離心管中,15000 r/min高速離心8 min,取上清液經(jīng)0.2 μm濾膜過濾后供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定。
1.4.1 色譜條件
色譜柱:ACQUITY UPLC BEH C18柱(50×2.1 mm,1.7 μm);流動相:A(乙腈)-B(0.1%甲酸水溶液);流速:0.3 mL/min ;柱溫:40 ℃;進樣量:1 μL。梯度洗脫:0 min~2 min,維持5%的A;2 min~10 min, 5%的A線性變化到60%A;10 min~12 min,60%的A線性變化到5%A;12 min~13 min,維持5%的A。
1.4.2 質(zhì)譜條件
離子源:電噴霧電離源(ESI);掃描方式:正離子模式;毛細管電壓:3.0 kV;離子源溫度:110 ℃;脫溶劑氣溫度:350 ℃;脫溶劑氣流量:750 L/h;錐孔反吹氣流量:50 L/h;掃描方式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)。
采用電噴霧電離源,分別將質(zhì)量濃度為0.5 μg/mL的β-受體激動劑單標標準溶液注入質(zhì)譜儀進行全掃描,找出準確的[M+H]+峰,并以其為母離子進行轟擊獲得二次碎裂產(chǎn)生的碎片離子,分別找出2個信號較強的碎片離子與母離子組成監(jiān)測離子對,并分別對錐孔電壓、碰撞能量等參數(shù)進行優(yōu)化。優(yōu)化獲得的多反應(yīng)監(jiān)測模式離子對及質(zhì)譜條件見表1。
采用超高效液相色譜儀和ACQUITY UPLC BEH C18柱對樣品進行分離,在流動相的選擇上比較了甲醇-水溶液、乙腈-0.1%甲酸水溶液、乙腈-5mmol/L乙酸銨溶液對目標物質(zhì)的分離效果。結(jié)果表明3種流動相均可以分離9種β-受體激動劑,但使用乙腈-0.1%甲酸水溶液能更好分離待測組分,而且色譜柱的柱壓更低,各色譜峰的信噪比更高,峰形更好,因此選擇用乙腈-0.1%甲酸水溶液作為流動相。比較乙腈含量從2%~60%的出峰時間和分離效果,優(yōu)化了流動相梯度洗脫的程序,確定流動相初始濃度為乙腈-0.1%甲酸水溶液(5/95,v/v),在此梯度洗脫條件下出峰時間合適,峰形好,9種β-受體激動劑的MRM色譜圖見圖1。
表1 β-受體激動劑測定的質(zhì)譜條件
注:*為定量離子
動物體在吸收β-受體激動劑,經(jīng)過代謝后大多數(shù)會與硫酸酯蛋白和葡萄糖醛酸作用,以硫酸軛合物和葡萄糖醛酸軛合物等結(jié)合態(tài)形式存在,因此需要將其轉(zhuǎn)化為游離態(tài)進行檢測。采用β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶對豬肉樣品進行酶解,以9種β-受體激動劑的總峰面積為指標,考察了在37℃,pH=5.2的條件下β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶的添加量和酶解時間對β-受體激動劑殘留測定結(jié)果的影響(圖2,圖3)。
從圖2和圖3可以看出,隨著酶添加量的增加和酶解時間的延長,9種β-受體激動劑的總峰面積呈現(xiàn)先增加后降低的規(guī)律,在分別對9種β-受體激動劑峰面積進行分析后發(fā)現(xiàn)這主要是由于非諾特羅和噴布特羅兩種成分峰面積降低所致。一方面,在酶解的前期隨著酶加量和酶解時間的延長,呈結(jié)合態(tài)的β-受體激動劑被釋放出來,各待測組分的測定值均增加。但另一方面,隨著酶解的深入,酶解的產(chǎn)物增多,基質(zhì)組分變得更加復(fù)雜,可能對非諾特羅和噴布特羅產(chǎn)生較大基質(zhì)抑制效應(yīng),使得其測定值降低。因此,在37℃和pH=5.2的條件下,每克豬肉樣品中β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酶的適宜添加量為2500U,酶解時間為6.0h。
圖1 優(yōu)化條件下β-受體激動劑的MRM色譜圖(進樣體積為10μL,濃度為5μg/L)
圖2 酶添加量對9種β-受體激動劑總峰面積的影響(37℃,pH=5.2,酶解8.0h)
圖3 酶解時間對9種β-受體激動劑總峰面積的影響(37℃,pH=5.2,每克樣品酶加量為2500U)
在優(yōu)化的色譜和質(zhì)譜條件下考察了9種β-受體激動劑的線性關(guān)系。以目標化合物質(zhì)量濃度與相應(yīng)內(nèi)標物質(zhì)量濃度的比值為橫坐標,目標化合物定量離子峰面積與相應(yīng)內(nèi)標物峰面積的比值為縱坐標,繪制待測物質(zhì)標準曲線(表2)。由表2可見,9種β-受體激動劑在0.25~10 μg/L質(zhì)量濃度范圍內(nèi)均有良好的線性關(guān)系。采用空白樣品基質(zhì)加標的方法,以S/N≥3時目標物的含量為該方法的檢出限,以S/N≥10時目標物的含量為該方法的定量限。經(jīng)計算本方法測定9種β-受體激動劑的檢出限為0.2 μg/kg,定量限為0.5 μg/kg。
表2 9種β-受體激動劑的線性回歸方程和相關(guān)系數(shù)
在空白豬肉樣品中添加標準溶液進行添加回收率實驗,添加水平分別為0.5、1.0、5.0 μg/kg,每個添加水平進行6次重復(fù)實驗,加標回收率和精密度結(jié)果見表3。從表3可以看出,9種β-受體激動劑的回收率在80.4%~110.3%之間,相對標準偏差≤6.7%。
本研究優(yōu)化了提取豬肉中9種β-受體激動劑的酶解條件,并建立了同時測定豬肉中9種β-受體激動劑的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測方法。在37℃和pH=5.2時,β-鹽酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶的最佳酶解條件為每克豬肉中酶添加量為2500 U,酶解時間為6.0 h。9種β-受體激動劑以乙腈-0.1%甲酸水溶液為流動相進行分析,樣品運行時間為13 min即可獲得滿意的分離效果。采用內(nèi)標法定量,在添加水平分別為0.5、1.0、5.0 μg/kg的條件下9種β-受體激動劑的回收率在80.4%~110.3%之間,相對標準偏差≤6.7%。該方法的樣品前處理時間和上機分析時間較短,且靈敏度高,回收率和重現(xiàn)性等均能滿足定量分析要求,結(jié)果準確可靠。適于豬肉中特布他林、西馬特羅、沙丁胺醇、氯丙那林、非諾特羅、萊克多巴胺、克倫特羅、噴布特羅、妥布特羅標的同時測定,尤其適合大批量樣品的快速確證和定量分析。
表3 空白樣品中β-受體激動劑的添加回收率及相對標準偏差(n=6)
[1]翟福麗,賴克強,張衍亮,等.動物性食品中β-興奮劑殘留概述[J].食品科學,2011,32(5):351-356.
[2]許志剛,練海賢,李攻科,等. β2-興奮劑的樣品前處理與分析檢測方法研究進展[J].分析測試學報,2011,30(4):465-472.
[3]孫雷,張驪,畢言鋒,等.豬肝中β-受體激動劑殘留檢測能力驗證結(jié)果分析[J].中國獸藥雜志,2011,45(2):35-38.
[4]王俊平,趙云襄,王碩,等.沙丁胺醇直接酶聯(lián)免疫快速檢測的方法[J].食品研究與開發(fā),2011,32(2):97-100.
[5]申宏丹,竇 紅,高春平,等. 直接競爭酶聯(lián)免疫法檢測萊克多巴胺研究[J].動物醫(yī)學進展,2009,30(8):58-63.
[6]農(nóng)業(yè)部1025號公告-6-2008 動物性食品中萊克多巴胺殘留檢測酶聯(lián)免疫吸附法[S].
[7]戴華,袁智能,黃志強,等. 飼料中鹽酸克倫特羅、沙丁胺醇高效液相色譜測定[J].分析測試學報,2003,22(3):57-59.
[8]林奕芝,劉奮,戴京晶,等. 高效液相色譜法測定肉與肉制品中鹽酸克倫特羅殘留量[J].中國衛(wèi)生檢驗雜志,2002,12(2):180-181.
[9]王培龍,范理,蘇曉鷗,等.分子印跡固相萃取-氣相色譜-質(zhì)譜法測定豬尿中4種β-受體激動劑[J].分析化學,2012,40(3):470-473.
[10]Caban M,Stepnowski P,Kwiatkowski M,et al. Determination of β-blockers and β-agonists using gas chromatography and gas chromatography-mass spectrometry-A comparative study of the derivatization step[J]. Journal of Chromatography A,2011,1218(44):8110-8122.
[11]農(nóng)業(yè)部958號公告-4-2007 動物組織及動物尿液中萊克多巴胺殘留檢測方法氣相色譜-質(zhì)譜法[S].
[12]郭偉,楊麗君,時文春,等. 高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測定豬肉中3種β-受體激動劑殘留量[J].分析試驗室,2010,29(4):92-98.
[13]Lee H B,Sarafin K,Peart T E. Determination of β-blockers and β2-agonists in sewage by solid-phase extraction and liquid chromatography-tandem mass spectrometry[J]. Journal of Chromatography A,2007,1148(2):158-167.
[14]Sardela V F,Deventerb K,Pereira H M G ,et al. Development and validation of a ultra high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometric method for the direct detection of formoterolin human urine[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,2012,70: 471-475.
[15]白凌,陳大舟,李蕾. 液相色譜-質(zhì)譜法檢測肝臟中5種β-受體激動劑[J].質(zhì)譜學報,2008,29(1):10-12.
[16]農(nóng)業(yè)部1025號公告-18-2008 動物源性食品中β-受體激動劑殘留檢測液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[S].