李紹彩,史富華,黃宇玲,張晉霞
心肌重構(gòu)可導(dǎo)致心臟肥厚和心室壁僵硬度增加,最終心功能惡化引起心力衰竭。NADPH氧化酶在心血管疾病的發(fā)生和進(jìn)展中具有重要作用,如內(nèi)皮功能障礙、動脈粥樣硬化、糖尿病血管病變、腎素-血管緊張素-醛固酮系統(tǒng)(RAAS)相關(guān)的高血壓和缺血性血管重塑[1]。血管NADPH氧化酶激活產(chǎn)生的活性氧增多形成的氧化應(yīng)激在心肌肥大發(fā)展過程中的重要作用也越來越受到重視。NADPH氧化酶的催化亞基Nox家族在心血管細(xì)胞中包含多個亞型,它們在不同病理刺激因素作用下介導(dǎo)不同的病理過程。他汀類藥物為羥甲基戊二酰輔酶A還原酶(HMG-CoA)抑制劑,是新一代調(diào)脂藥物。目前應(yīng)用于臨床的主要有辛伐他?。╯imvastatin,SIM)、洛伐他?。╨ovastatin)、普伐他汀(pravastatin)和阿托伐他?。╝torvastatin)等。他汀類除具有調(diào)脂作用外還具有其他多種作用,如改善內(nèi)皮功能、改善血液流變學(xué)、抑制炎癥反應(yīng)、穩(wěn)定斑塊、抑制平滑肌細(xì)胞增殖等作用,他汀類可以通過調(diào)節(jié)細(xì)胞因子的表達(dá)改善左室重塑。本研究通過腹主動脈結(jié)扎的方法復(fù)制心肌肥大模型,觀察壓力超負(fù)荷所致心肌肥大的過程中NADPH氧化酶不同Nox亞型的表達(dá)變化,以及辛伐他汀對壓力超負(fù)荷大鼠心肌NADPH氧化酶基因表達(dá)的作用,探索他汀類藥物抑制心肌肥大的可能機(jī)制。
1.1 動物 雄性SD大鼠220g~250g。由華北煤炭醫(yī)學(xué)院實驗動物中心提供。辛伐他汀為德國Merck Sharp&Dohme公司生產(chǎn)原粉。DMEM培養(yǎng)基購自美國Gibco公司。二甲基亞砜(DMSO)、牛胰蛋白酶為美國Sigma公司產(chǎn)品,胎牛血清(FBS)為美國Gibco公司產(chǎn)品。RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR試劑盒為美國Fermentas產(chǎn)品:TrizolReagent購自美國Invitrogen公司。
1.2 方法 腹主動脈縮窄模型(AC)建立。戊巴比妥鈉麻醉后固定,在分離的腹主動脈下方穿線,與-10號針頭結(jié)扎在一起,使腹主動脈形成環(huán)形縮窄。檢查結(jié)扎處,若搏動正常且腹后壁無出血,即可逐層縫合腹壁。肌注青霉素5×104U/只,以預(yù)防感染。假手術(shù)組除不結(jié)扎分離的腹主動脈外,其余操作均同手術(shù)組。術(shù)后常規(guī)飼養(yǎng),正常飲水。
1.3 實驗分組 將動物隨機(jī)分為3組,每組10只。腹主動脈縮窄組(Model);假手術(shù)組(Sham);辛伐他汀組(SIM):腹主動脈縮窄術(shù)后1h給予辛伐他汀,每日清晨灌胃10mg/(kg·d)。在術(shù)后6周測量各組動物體重及血壓,并進(jìn)行相應(yīng)指標(biāo)的測定。
1.4 測定指標(biāo)
1.4.1 心臟超聲心動圖 戊巴比妥鈉腹腔內(nèi)注射麻醉,用Hp Sonos2500型多功能超聲檢查儀及7.5MHz相控陣探頭(美國惠普公司)檢測左室收縮末內(nèi)徑(LVEDD)、舒張末內(nèi)徑(LVESD)等,計算左室射血分?jǐn)?shù)(LVEF)、短軸縮短率(LVFS)。1.4.2 血流動力學(xué)檢測 記錄左室收縮末壓(LVESP)、左室舒張末壓(LVEDP)及左室內(nèi)壓最大上升、下降速率(±dP/dtmax)。
1.4.3 心肌肥大指數(shù) 各組動物摘取心臟。測量全心重、左心室重,計算心室重與體重比值(V/Bwt,Hermann Wilson’s公式)作為心肌肥大指數(shù)。
1.4.4 實時定量PCR法測定 Nox2、Nox4和p47phox的mRNA轉(zhuǎn)錄變化 。Trizol法提取心肌組織中的總RNA,測定總RNA純度,參照反轉(zhuǎn)錄試劑盒(德國Fermentas公司)說明書,取2μg總RNA樣本在10μL體系中進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。在20μL體系中擴(kuò)增。Western印跡法檢測 Nox2、Nox4和p47phox的蛋白表達(dá)的變化。
1.5 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件,計量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較用單因素方差分析,兩兩比較用SNK法。
2.1 各組終點血壓測定 各組大鼠實驗終點進(jìn)行血壓測定,Sham 組為107.16mmHg±7.03mmHg,Model組為171.47 mmHg±18.93mmHg,SIM 組為121.82mmHg±12.56mmHg。其中,Model組血壓較Sham組明顯升高(P<0.01);V/Bwt的測定中,Model組(3.87±0.34)較Sham組(2.11±0.12)明顯升高(P<0.01),SIM 組 V/Bwt(2.23±0.76)較 Model組下降,造模成功。
2.2 超聲心動圖指標(biāo) 與Sham組相比,Model組的LVEF、LVFS明顯降低(P<0.01),而LVEDD、LVESD明顯增大(P<0.01);與 Model組相比,SIM 組的LVEF、LVFS明顯升高(P<0.01),LVEDD、LVESD明顯下降(P<0.01)。詳見表1。
表1 各組大鼠超聲心動圖指標(biāo)(±s)
表1 各組大鼠超聲心動圖指標(biāo)(±s)
與Sham組比較,1)P<0.01;與 Madel組比較,2)P<0.01
組別 n LVESD(mm) LVEDD(mm) LVEF(%) LVFS(%)Sham組 12 3.78±0.32 6.97±0.11 89.97±7.62 62.19±5.34 Model組 12 8.13±0.591) 9.82±0.391) 52.15±3.241) 27.29±7.661)SIM 組 12 5.48±0.622) 7.24±0.942) 78.93±6.772) 49.33±5.612)
2.3 血流動力學(xué)指標(biāo) 與Sham組相比,Model組的±dp/dtmax、LVESP明顯降低 (P<0.01),LVEDP明顯升高(P<0.01);與Model組相比,SIM 組±dp/dtmax、LVESP明顯升高(P<0.01),LVEDP明顯降低(P<0.01)。詳見表2。
表2 各組大鼠血流動力學(xué)指標(biāo)(±s)
表2 各組大鼠血流動力學(xué)指標(biāo)(±s)
與Sham組比較,1)P<0.01;與 Model組比較,P<0.01
組別 n LVESP(mmHg) LVEDP(mmHg) +dp/dtmax(mmHg/s) -dp/dtmax(mmHg/s)Sham組 12 120.17±10.01 5.12±0.99 5 021.07±221.17 4 198.23±143.21 Model組 12 84.32±6.941) 12.43±1.541) 3 301.27±190.111) 2 435.23±333.211)SIM 組 12 98.72±5.432) 7.33±1.082) 4 651.67±298.172) 3 298.12±201.112)
2.3 各組Nox2、Nox4和p47phox表達(dá)的變化 與Sham組相比,Model組的大鼠心肌中Nox2、Nox4和p47phoxmRNA及蛋白表達(dá)升高(P<0.01);SIM組較 Model組心肌中Nox2、Nox4和p47phoxmRNA及蛋白表達(dá)明顯下降(P<0.01)。詳見圖1、圖2。
圖1 Rail time-PCR法檢測心肌組織中Nox2、Nox4和p47phox表達(dá)
圖2 Western blot法檢測心肌組織中Nox2、Nox4和p47phox表達(dá)
心肌肥厚是心臟對機(jī)械負(fù)荷及神經(jīng)體液因子改變的代償性反應(yīng),是發(fā)生心肌缺血、心律失常的獨立危險因子[2],氧化應(yīng)激在心臟病變中起重要作用[3-7]。氧化應(yīng)激是由于機(jī)體細(xì)胞產(chǎn)生活性氧(ROS)增多,超過了體內(nèi)抗氧化系統(tǒng)的消除能力所導(dǎo)致的氧化還原狀態(tài)的失平衡[8]。高血壓、動脈粥樣硬化、糖尿病血管病變、心衰等心血管疾病病理發(fā)展過程中ROS主要來源于血管NADPH氧化酶,其與巨噬細(xì)胞NADPH氧化酶在結(jié)構(gòu)上很相似,但表達(dá)和調(diào)節(jié)上又有很多區(qū)別[9,10]。NADPH氧化酶是體內(nèi)唯一被發(fā)現(xiàn)的主要功能是產(chǎn)生ROS的酶,它對許多氧化還原敏感的信號通路有非常重要的作用。NADPH氧化酶產(chǎn)生的ROS可以使一氧化氮合酶(NOS)失偶聯(lián),還能激活黃嘌呤氧化酶,產(chǎn)生更多的ROS,使氧化應(yīng)激放大[11]。心血管NADPH氧化酶的催化亞基是不同的Nox同系物和p22phox,它們組成膜復(fù)合體細(xì)胞色素b558,位于胞漿顆粒和漿膜上;調(diào)節(jié)亞基包括p47phox、p67phox、p40phox和Rac,它們可組成另一個蛋白復(fù)合體,存在于胞漿。NADPH氧化酶可被多種病理生理刺激因子通過不同的Nox亞基特異性激活,產(chǎn)生不同的下游效應(yīng)[8,9,12]。心血管系統(tǒng)中主要有 Noxl、Nox2、Nox4,Nox2在內(nèi)皮細(xì)胞(ECs)、成纖維細(xì)胞、心肌細(xì)胞中豐富表達(dá);Noxl在血管平滑肌細(xì)胞(VSMCs)中高表達(dá),但在ECs和心肌細(xì)胞中未發(fā)現(xiàn);Nox4表達(dá)廣泛,在ECs和心肌細(xì)胞中均高表達(dá)。不同的心血管疾病病理因子,如血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)、細(xì)胞因子、機(jī)械張力等,刺激不同的Nox亞型激活,不同的Nox亞型激活后啟動病理變化也可能不同。Nox2型NADPH氧化酶在AngⅡ依賴性的心肌細(xì)胞肥大、心內(nèi)膜纖維化,以及壓力超負(fù)荷型左心肥厚(LVH)誘發(fā)的心臟收縮失常等發(fā)展過程中起重要的介導(dǎo)作用。而壓力超負(fù)荷所致的心肌細(xì)胞肥大卻可能與Nox4有關(guān)[13,14]。
阿托伐他汀可以抑制同型半胱氨酸(Hcy)誘導(dǎo)的NADPH氧化酶活性,通過抑制重要的NADPH氧化酶Noxl亞基mRNA的表達(dá)、抑制內(nèi)皮Nox4過表達(dá)和形成有活性的p22phox復(fù)合體而發(fā)揮細(xì)胞的抗氧化作用[15]。黎健等[16]研究顯示高濃度(0.8g/L)LDL刺激 HUVEC時,Nox4表達(dá)上凋,細(xì)胞內(nèi) ROS生成增加。用辛伐他汀預(yù)處理再加高濃度LDL刺激時,Nox4表達(dá)下降,ROS生成量減少。提示辛伐他汀可下調(diào)HUVEC中Nox4的表達(dá),降低ROS水平,進(jìn)一步在體內(nèi)證明辛伐他汀的抗氧化作用。
本研究結(jié)果表明,壓力超負(fù)荷性所致心肌肥大過程中NADPH氧化酶亞型Nox2、Nox4和調(diào)節(jié)亞基p47phox基因及蛋白水平均增高,而辛伐他汀的干預(yù)可逆轉(zhuǎn)這種增高,進(jìn)而抑制ROS產(chǎn)生信號系統(tǒng),導(dǎo)致NADPH氧化酶活性降低,改善肥大心肌的功能。他汀類藥物具有獨立于降脂作用以外保護(hù)肥大心肌細(xì)胞的作用。
[1] Care A,Brewer AC,Narayanapanicker A,et al.NADPH oxidases in cardiovascular health and disease[J].Antioxid Redox Signal,2005,8(5-6):691-728.
[2] Azzouzi H,Dewindt LJ.Heart spotting[J].Basic Res Cardiol,2008,103(3):228-231.
[3] McMurray J,Chopra M,Abdullah I,et al.Evidence of oxidative stress in chronic heart failure in humans[J].Eur Heart J,1993,14(11):1493-1498.
[4] Keith M,Geranmayegan A,Sole MJ,et al.Increased oxidative stress in patients with congestive heart failure[J].J Am Coll Cardiol,1998,31(6):1352-1356.
[5] Hare JM,Stamler JS.NO/redox disequilibrium in the failing heart and cardiovascular system[J].J Clin Invest,2005,115(3):509-517.
[6] Murdoch CE,Zhang M,Cave AC,et al.NADPH oxidasedependent redox signalling in cardiac hypertrophy,remodelling and failure[J].Cardiovasc Res,2006,71(2):208-215.
[7] Takimoto E,Kass DA.Role of oxidative stress in cardiac hypertrophy and remodeling[J].Hypertension,2007,49(2):241-248.
[8] Molavi B,Mehta JL.Oxidative stress in cardiovascular disease:Molecular basis of its deleterious effects,its detection,and therapeutic considerations[J].Curt Opin Cardiol,2004,19(5):488-493.
[9] Madamanchi N,Vendrov A,Runge MS.Oxidative stress and vascular disease[J].Arterioscler Thromb Vase Biol,2005,25(1):29-38.
[10] Morawietz H,Bornstein SR.Leptin,endothelin,NADPH oxidase,and heart failure[J].Hypertension,2006,47(5):e20.
[11] Landmesser U,Dikalov S,Price SR,et al.Oxidation of tetrahydrobiopterin leads to uncoupling of endothelial cell nitric oxide synthase in hypertension[J].J Clin Invest,2003,111:1201-1209.
[12] Cai H,Griendling KK,Harrison DG.The vascular NAD(P)H oxidases as therapeutic targets in cardiovascular[J].Sciences,2003,24:471-478.
[13] Bendall JK,Cave AC,Heymes C,et al.Pivotal role of a gp91phoxeontaining NADPH oxidase in angiotensin Ⅱ -induced cardiac hypertrophy in mice[J].Circulation,2002,105:293-296.
[14] Johar S,Cave AC,Narayanapanicker A,et al.Aldosterone mediates angiotensinⅡ-induced interstitial cardiac fibrosis via a Nox2-containing NADPH oxidase[J].Faseb J,2006,20(9):1546-1548.
[15] Bao XM,Wu CF,Lu GP.Atorvestatin attenuates homoeysteine induced apoptesis in human umbilical vein endothelial cells via inhibiting NADPH oxidase-related oxidative stress-triggered p38MAPK signaling[J].Acta Pharmacol Sin,2009,30(10):1392-1398.
[16] 黎健,高丹.NADPH氧化酶源性活性氧在糖尿病及其血管并發(fā)癥發(fā)生中的作用機(jī)制[J].中國動脈硬化雜志,2009,17(7):562-564.