馬 瑛,彭芝蘭,陳 欣
(1.四川大學(xué)華西第二醫(yī)院婦產(chǎn)科,四川 成都 610041;2.四川省綿陽市中心醫(yī)院婦產(chǎn)科,四川 綿陽 621000;3.成都地奧集團(tuán)篩選中心,四川 成都 610041)
卵巢癌惡性程度高、缺乏早期診斷手段,雖對化療比較敏感,但化療藥物的毒副反應(yīng)及長期治療易產(chǎn)生耐藥等因素,都導(dǎo)致卵巢癌的臨床治療有一定困難。腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移是血管依賴性的,卵巢癌組織有血管豐富、生長迅速的特點(diǎn),抗卵巢癌血管形成是一種新的治療策略。絲氨酸蛋白酶抑制劑(mammary serpin,MASPIN)是絲氨酸蛋白酶抑制劑超家族中的新成員,大量研究發(fā)現(xiàn)它作為腫瘤抑制基因?qū)δ[瘤的生長、侵襲、轉(zhuǎn)移有明顯抑制作用,近來更被證實(shí)是一種有效的血管生成抑制因子[1]。本研究通過免疫組織化學(xué)LSAB方法檢測MASPIN、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)在上皮性卵巢癌(epithelial ovarian cancer,EOC)組織中的表達(dá),分析其與卵巢癌病理類型、病理分級、手術(shù)病理分期等病理特點(diǎn)的關(guān)系;體外實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步檢測卵巢癌細(xì)胞中MASPIN高表達(dá)對VEGF和表達(dá)的影響,旨在探討MASPIN在卵巢癌的發(fā)展和血管生成中的作用,為以MASPIN為分子靶點(diǎn)的抗腫瘤基因治療提供理論依據(jù)。
1.1 一般資料 本研究采用的EOC組織(35例)為2004年10月至2005年4月在四川大學(xué)華西第二醫(yī)院婦科接受手術(shù)治療患者(年齡35~68歲)的新鮮卵巢組織標(biāo)本,術(shù)前未行化療、放療或生物治療,術(shù)后病理診斷確診并且患者臨床病理資料完整,病理診斷均由有經(jīng)驗(yàn)的病理專家復(fù)核。病理類型:漿液性腺癌22例,黏液性癌5例,子宮內(nèi)膜樣腺癌5例,透明細(xì)胞癌 3例;病理分級:高分化 3例(8.6),中分化6例(17.1),低分化26例(74.3);臨床分期I期14例(40.0),Ⅱ 期2例(5.7),Ⅲ 期l1例(31.4),IV期8例(22.9);淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移:有轉(zhuǎn)移8例(22.9 9/6),無轉(zhuǎn)移27例(77.1);腹水:有腹水19例(54.3),無腹水16例(45.7)。同期正常卵巢組織31例(子宮肌瘤21例、子宮腺肌癥10例)。卵巢組織的獲取均事先向患者說明,并取得同意。
1.2 主要試劑和儀器 兔抗人MASPIN抗體(AbS4A)購自Calbioehem公司,鼠抗人VEGF單抗購于北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,SP試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。限制性內(nèi)切酶、Taq DNA聚合酶、高保真 pfu DNA聚合酶、λEcoT14 I digest購自 MBI;T4-DNA連接酶購自NEB;PCR產(chǎn)物純化試劑盒購自申能博彩生物科技有限公司,質(zhì)粒純化試劑盒為Omega公司產(chǎn)品;PCR引物由上海博亞生物技術(shù)有限公司合成。Trizol Reagent(Invitrogen),TaKaRa One step PCR for RNA Kits(AMV)購自天泰生物技術(shù)有限公司。轉(zhuǎn)染試劑梭華-SofastTM購自廈門太陽馬生物工程有限公司;熒光素酶底物試劑購自Promega公司(CAT.NO.E1531);細(xì)胞培養(yǎng)材料購自成都哈里公司。Forma-80℃冰箱;BECKMAN冷凍高速離心機(jī);eppendorf臺式高速離心機(jī);BIORAD電泳槽,電泳儀;恒溫水浴箱,恒溫空氣搖床,恒溫空氣培養(yǎng)箱,恒溫烤箱;Hybaid PCR儀;Kodak凝膠成象系統(tǒng)及圖象分析軟件。HARRISCO2孵箱,NUAIRE超凈工作臺,倒置顯微鏡,96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,Wallace Victor2多功能發(fā)光檢測儀(PerkinElmer公司),DU 640(BECKMAN COULTERTM)分光光度計(jì);酶標(biāo)儀 MICROPLATE READER(BIO-RAD公司)。BIORAD掃描儀。
1.3 質(zhì)粒載體、宿主菌和細(xì)胞 pCDNA3-MASPIN、大腸桿菌JM109、人體正常前列腺組織由成都地奧集團(tuán)藥物篩選中心提供。SKOV3為人卵巢漿液性上皮癌細(xì)胞株,由四川大學(xué)華西第二醫(yī)院實(shí)驗(yàn)中心婦科腫瘤實(shí)驗(yàn)室提供。
1.4 免疫組織化學(xué)檢測MASPIN、VEGF在卵巢癌組織中的表達(dá) 將切除的新鮮標(biāo)本經(jīng)40 g/L甲醛固定,石蠟包埋,切片厚度4 Fm。免疫組織化學(xué)染色步驟按試劑盒說明進(jìn)行。用PBS代替一抗作為陰性對照,公司提供的陽性切片為陽性對照。MASPIN抗體(1∶400)、VEGF抗體(1∶200)稀釋。MASPIN、VEGF陽性為胞漿棕色顆粒沉著,用Olympus DP70采圖系統(tǒng)捕獲圖像,采用Laserpix圖像分析軟件進(jìn)行分析,測定IOD。
1.5 MASPIN穩(wěn)定表達(dá)細(xì)胞株的構(gòu)建 ①SKOV3細(xì)胞培養(yǎng)、傳代和保種:人卵巢癌細(xì)胞株SKOV3細(xì)胞培養(yǎng)、傳代、保種參照司徒振強(qiáng)的《細(xì)胞培養(yǎng)》[2]。②細(xì)胞轉(zhuǎn)染及轉(zhuǎn)染克隆的篩選:用陽離子聚合物法介導(dǎo)DNA轉(zhuǎn)移,轉(zhuǎn)染后將細(xì)胞置于37℃,5%CO2孵育箱孵育。設(shè)未轉(zhuǎn)染細(xì)胞作對照,用梯度濃度的G418篩選培養(yǎng)液進(jìn)行篩選,G418的最適濃度為700 μg/ml。每3天換一次液,2周后挑取抗G418克隆擴(kuò)增,分別命名為 SKOV3-MASPIN和 SKOV3-vector,并進(jìn)行 RT-PCR和Western blot、ABC免疫酶染色法鑒定。③細(xì)胞總RNA的提取:用Trizol Reagent提取SKOV3細(xì)胞總RNA,樣本為轉(zhuǎn)染了pcDNA3-MASPIN、pcDNA3空載體質(zhì)粒的SKOV3細(xì)胞和未轉(zhuǎn)染的SKOV3細(xì)胞,方法參照試劑說明書進(jìn)行。取少量RNA以電泳鑒定完整性,以紫外分光光度法檢測濃度和純度。調(diào)整濃度存放于-70℃?zhèn)溆谩?/p>
1.6 半定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)RT-PCR分析用于半定量RT-PCR分析的引物序列Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)軟件設(shè)計(jì),同時(shí)設(shè)計(jì)內(nèi)對照基因GAPDH引物,擴(kuò)增片段大小約485 bp。RT-PCR分析采用TAKARA公司的ONE STEP RT-PCR試劑盒,依據(jù)說明進(jìn)行。
1.7 ABC免疫酶染色法檢測 MASPIN、VEGF、HPA蛋白的表達(dá) SKOV3及G418篩選陽性的細(xì)胞,用0.25%胰酶消化,制成單細(xì)胞懸液,以1×106密度將細(xì)胞分別接種于預(yù)先放置蓋玻片的6孔培養(yǎng)板,置孵箱培養(yǎng)2天,取出蓋玻片,浸入磷酸鹽緩沖液PBS洗2次,加4%PFA(多聚甲醛)固定30分鐘,用PBS洗5分鐘×3次。0.3%H2O2-甲醇10秒,PBS洗5分鐘×3次。0.1%triton×100室溫下5分鐘,PBS洗5分鐘×3次。5%BSA(牛血清白蛋白)封閉,室溫下10分鐘,不洗,棄多余液體。染色步驟按試劑盒說明進(jìn)行。每批實(shí)驗(yàn)中均設(shè)立陽性和陰性對照,試劑公司提供的陽性切片作陽性對照,以PBS代替一抗作為陰性對照。MASPIN抗體(1∶100)、VEGF抗體(1∶200)。用Olympus DP70采圖系統(tǒng)捕獲圖像,每組細(xì)胞取4個(gè)視野,采用Laserpix圖像分析軟件進(jìn)行分析,測定IOD。
1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 所有計(jì)算均用SPSS 13.0軟件進(jìn)行,由統(tǒng)計(jì)學(xué)專業(yè)人員進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。分類資料率的比較采用卡方檢驗(yàn),MASPIN、VEGF與臨床各病理指標(biāo)的比較采用兩組獨(dú)立樣本的t檢驗(yàn)。VEGF、MASPIN之間的相關(guān)性比較采用直線或秩相關(guān)分析。三組及以上資料的比較,首先進(jìn)行方差齊性檢驗(yàn),方差齊者用多組計(jì)量資料的方差分析進(jìn)行比較,如有意義則采用q檢驗(yàn)兩兩比較。采用Kodak軟件對RT-PCR條帶進(jìn)行光密度值分析,分別以磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)和肌動(dòng)蛋白(β-actin)作系統(tǒng)內(nèi)參。通過計(jì)算對目的基因的表達(dá)進(jìn)行半定量。目的基因的表達(dá)指數(shù)=目的基因條帶的光密度值/相應(yīng)內(nèi)參照條帶的光密度值。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 MASPIN、VEGF在EOC的表達(dá)以及EOC臨床病理特點(diǎn)
2.1.1 MASPIN、VEGF在EOC中的表達(dá) MASPIN蛋白主要為細(xì)胞漿表達(dá)(圖1),在正常卵巢生發(fā)上皮細(xì)胞和EOC細(xì)胞的陽性表達(dá)分別為16.1%(5/31)和57.1%(20/35),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=10.07,P<0.01)。VEGF蛋白的陽性表達(dá)定位于細(xì)胞漿,周圍的血管內(nèi)皮細(xì)胞也有陽性表達(dá)(圖2),其白在正常卵巢生發(fā)上皮細(xì)胞和EOC細(xì)胞的陽性表達(dá)分別為25.8%(8/31)和77.1%(27/35),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=15.39,P < 0.01)。
圖1 MASPIN在卵巢癌中的陽性表達(dá)(IHC)200×
圖2 VEGF在卵巢癌中的陽性表達(dá)(IHC)200×
2.1.2 MASPIN、VEGF表達(dá)與EOC臨床病理特點(diǎn)見表1。其中MASPIN蛋白在非漿液性卵巢癌中表達(dá)高于漿液性卵巢癌中的表達(dá),MASPIN蛋白表達(dá)還隨著手術(shù)-病理分期的進(jìn)展而下調(diào),在I+II期和III+IV期中IOD值差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);在無腹水組中MASPIN蛋白表達(dá)高于有腹水組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移各組間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。在有腹水組和無腹水組IOD值分別為2.8466±1.4283和1.5526±1.3275,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。在其余各組間VEGF蛋白表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
表1 M ASPIN、V EG F表達(dá)與臨床病理指標(biāo)
2.1.3 MASPIN與VEGF的相關(guān)性 分析發(fā)現(xiàn)MASPIN與VEGF呈負(fù)相關(guān)(r=-0.738,P<0.05),即MASPIN的表達(dá)水平越高,VEGF的表達(dá)則相應(yīng)的降低。
2.2 轉(zhuǎn)染克隆的鑒定
2.2.1 AB免疫酶染色 SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN組的IOD值分別為493.5075±394.3448、415.5225 ± 144.8998、3629.547 ±1602.8288。SKOV3、SKOV3-pcDNA3 細(xì) 胞 中MASPIN表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而轉(zhuǎn)染MASPIN-cDNA的SKOV3-MASPIN細(xì)胞中MASPIN表達(dá)較轉(zhuǎn)染前及空載體組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),即轉(zhuǎn)染 MASPIN-cDNA的 SKOV3-MASPIN中MASPIN表達(dá)增強(qiáng)(圖3~圖5)。
2.2.2 RT-PCR SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN細(xì)胞采用RT-PCR方法,用Kodak凝膠成象系統(tǒng)及圖象分析軟件存儲圖象并分析結(jié)果,以MASPIN與GAPDH基因擴(kuò)增產(chǎn)物電泳帶的光密度比值,反映MASPIN的表達(dá)水平(圖6)。結(jié)果顯示,SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN 組的光密度比值分別為 0.6720±0.0131,0.6674±0.0128,1.0560±0.0052。SKOV3-MASPIN組 MASPIN表達(dá)水平明顯升高(P<0.05)。而SKOV3、SKOV3-pcDNA3組MASPIN表達(dá)變化差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
圖3 SKOV3細(xì)胞中的MASPIN表達(dá)(IC)400× 圖4 SKOV3-vector細(xì)胞中的MASPIN表達(dá)(IC)400× 圖5 SKOV3-MASPIN細(xì)胞中的MASPIN表達(dá)(IC)400× 圖6 篩選克隆的PCR擴(kuò)增鑒定
2.2.3 Western Blot SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN細(xì)胞采用 Western Blotting方法,用BIORAD掃描儀捕獲圖像,Kodak圖象分析軟件分析結(jié)果,以MASPIN與β-actin帶的光密度比值,反映MASPIN的表達(dá)水平(圖7)。結(jié)果顯示,SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN組的光密度比值分別為 0.7823±0.0108,0.7653±0.0186,1.6549±0.1074。SKOV3-MASPIN組MASPIN表達(dá)水平明顯升高 (P <0.05)。SKOV3、SKOV3-pcDNA3組MASPIN表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
2.3 MASPIN過表達(dá)對VEGF表達(dá)的影響
2.3.1 MASPIN過表達(dá)對VEGF的mRNA表達(dá)的影響 SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN 細(xì)胞采用RT-PCR方法,用Kodak凝膠成象系統(tǒng)及圖象分析軟件存儲圖象并分析結(jié)果,以VEGF與GAPDH基因擴(kuò)增產(chǎn)物電泳帶的光密度比值,反映MASPIN的表達(dá)水平(圖8)。結(jié)果顯示,SKOV3、SKOV3-pcDNA3、SKOV3-MASPIN組的光密度比值分別為 1.015±0.018、0.991±0.010和 0.901±0.010。SKOV3-MASPIN組VEGF表達(dá)水平明顯降低(P<0.05)。SKOV3、SKOV3-pcDNA3組 VEGF表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
圖7 pcDNA3-MASPIN在SKOV3細(xì)胞中穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的Western Blot結(jié)果 1.SKOV3總蛋白;2.SKOV3/pcDNA3總蛋白;3.SKOV3/pcDNA3-MASPIN總蛋白 圖8 PCR結(jié)果 1:SKOV3;2:SKOV3/pcDNA3;3:SKOV3/pcDNA3-MASPIN
2.3.2 MASPIN過表達(dá)對VEGF蛋白表達(dá)的影響采用ABC免疫酶染色法檢測轉(zhuǎn)染MASPIN前后VEGF蛋白表達(dá)的變化。SKOV3、SKOV3-pcDNA3和SKOV3-MASPIN組的IOD值分別2350.257±1386.7257、2440.083±1006.6204 和 331.0025±212.0308。SKOV3、SKOV3-pcDNA3細(xì)胞中 VEGF表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而轉(zhuǎn)染MASPIN-cDNA的SKOV3-MASPIN細(xì)胞中VEGF表達(dá)較轉(zhuǎn)染前及空載體組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),轉(zhuǎn)染 MASPIN-cDNA的 SKOV3-MASPIN細(xì)胞中VEGF表達(dá)下降(圖9~11)。
圖9 SKOV3細(xì)胞中的VEGF表達(dá)(IC)400×
圖1 0 SKOV3-vector細(xì)胞中的VEGF表達(dá)(IC)400×
圖1 1 SKOV3-MASPIN細(xì)胞中的VEGF表達(dá)(IC)400×
MASPIN是一種新的絲氨酸蛋白酶抑制劑基因,MASPIN的表達(dá)隨著腫瘤的發(fā)展而逐漸消失,恢復(fù)腫瘤細(xì)胞中MASPIN的表達(dá),能夠抑制腫瘤細(xì)胞的生長、運(yùn)動(dòng)、轉(zhuǎn)移能力,因此將其定位為腫瘤抑制基因[3]。隨著對MASPIN內(nèi)在分子機(jī)制的深入研究發(fā)現(xiàn)在不同類型的細(xì)胞中,MASPIN表達(dá)形式不同,發(fā)揮的作用也不相同,MASPIN的表達(dá)與功能也尚無定論。Boltze等[4]對結(jié)腸癌的研究發(fā)現(xiàn),MASPIN在88%~100%的腺瘤和正常組織以及69%的腫瘤中表達(dá)陽性,且MASPIN的弱表達(dá)或陰性表達(dá)與腫瘤復(fù)發(fā)呈正比。與之相反,Song等[5]研究發(fā)現(xiàn)Maspin在由正常胃組織向胃癌的進(jìn)展中表達(dá)水平逐漸升高,且與腫瘤分期、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān),認(rèn)為Maspin在胃癌進(jìn)展、脈管形成及轉(zhuǎn)移中扮演著重要角色。
為探討MASPIN在卵巢癌發(fā)展中的作用,本研究采用LSAB法檢測了MASPIN蛋白在31例正常卵巢組織和35例卵巢癌組織中的表達(dá),發(fā)現(xiàn)MASPIN蛋白主要定位于細(xì)胞漿,在正常卵巢組織中為陰性或弱陽性表達(dá),陽性率為16.1%(5/31),與卵巢癌組織中的57.1%(20/35)相比,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。手術(shù)病理分期是對卵巢癌治療和預(yù)后影響最大的指標(biāo)[6],本研究結(jié)果顯示,MASPIN蛋白表達(dá)在早期EOC(I、II)高于晚期(III、IV),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),說明MASPIN的表達(dá)隨著卵巢腫瘤的進(jìn)展而下調(diào)。從病理類型分析,MASPIN蛋白在非漿液性卵巢癌中表達(dá)高于在漿液性卵巢癌中表達(dá),即MASPIN主要在非漿液性癌中表達(dá),而漿液性癌的5年存活率低于黏液性和子宮內(nèi)膜樣癌[7]。據(jù)報(bào)道有腹水與無腹水組患者相比,前者的 5年生存率僅為 5%,而后者達(dá)45%[8]。這也說明MASPIN能在一定程度上抑制卵巢癌的轉(zhuǎn)移。
本研究結(jié)果顯示,MASPIN在卵巢癌中表達(dá)上調(diào),但其與低手術(shù)-病理分期、非漿液性腫瘤、無腹水形成的相關(guān)性是與它的腫瘤抑制基因特性相符合的。
對于MASPIN在不同類型細(xì)胞中的表達(dá)水平不同、發(fā)揮作用不相同的這些矛盾結(jié)果可能有以下幾種解釋:①與maspin蛋白發(fā)生相互作用的相關(guān)蛋白在不同類型細(xì)胞中有特定的表達(dá),因而maspin蛋白在不同類型細(xì)胞中的功能不同[9];②maspin在不同細(xì)胞中的亞定位也對其功能起著關(guān)鍵的影響[10];③maspin在腫瘤細(xì)胞中復(fù)雜的后生性改變,如maspin在不同細(xì)胞類型中特異表達(dá),受到其啟動(dòng)子區(qū)域甲基化的控制[11]。
Zhang等[1]在對乳腺癌、前列腺癌的研究中,通過體內(nèi)體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)MASPIN的腫瘤抑制活性可能主要依賴其對新生血管生成的抑制能力。因此MASPIN被看作一種新的腫瘤血管抑制因子。卵巢癌是一種實(shí)體腫瘤,在腫瘤間質(zhì)中存在著高密度的微血管,卵巢癌的生長轉(zhuǎn)移與微血管的形成密切相關(guān)??寡苌苫蛑委熢诼殉材[瘤的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中已取得了顯著療效,在卵巢癌的治療中具有很大潛力[12]。
已有的研究結(jié)果已證實(shí)VEGF與卵巢惡性腫瘤的增殖、浸潤和轉(zhuǎn)移密切相關(guān)[13]。本研究中VEGF在卵巢癌細(xì)胞中的表達(dá)(77.1%)與正常卵巢組織細(xì)胞(25.8%)相比增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),還發(fā)現(xiàn)VEGF與腹水形成有一定相關(guān)性,進(jìn)一步分析MASPIN與VEGF之間的相關(guān)性,結(jié)果顯示MASPIN表達(dá)與VEGF有顯著負(fù)相關(guān)性(P<0.05),因此推測在卵巢癌中,MASPIN具有抑制血管生成作用,并且可能與VEGF相關(guān)。
為進(jìn)一步探討MASPIN抑制卵巢癌血管生成的可能分子機(jī)制,本研究將真核表達(dá)質(zhì)粒pcDNA3-MASPIN-cDNA轉(zhuǎn)染卵巢癌細(xì)胞SKOV3,應(yīng)用RTPCR和免疫細(xì)胞化學(xué)方法分別從基因轉(zhuǎn)錄和蛋白表達(dá)水平來了解過表達(dá)MASPIN對VEGF的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)無論是基因轉(zhuǎn)錄還是蛋白表達(dá)水平,MASPIN對VEGF表達(dá)都有明顯抑制作用(P<0.05),進(jìn)一步說明MASPIN對腫瘤血管的抑制作用可能與VEGF有關(guān)。但MASPIN調(diào)節(jié)VEGF的內(nèi)在機(jī)制目前尚無研究。有報(bào)道指出,Bcl-2基因可能對 VEGF 的表達(dá)有一定調(diào)控作用[14,15]而 MASPIN可以通過包括線粒體和Bcl-2蛋白家族在內(nèi)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑增強(qiáng)內(nèi)皮細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞的凋亡[16~18]。因此推測MASPIN對VEGF的調(diào)節(jié)可能是通過抑制Bcl-2基因的表達(dá)、增強(qiáng)內(nèi)皮細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞的凋亡的途徑來發(fā)揮作用的。
綜上所述,與正常卵巢組織相比,MASPIN基因在卵巢癌中表達(dá)上調(diào),但MASPIN在卵巢癌的發(fā)展過程中可能仍發(fā)揮著腫瘤抑制基因的作用。MASPIN能從蛋白質(zhì)和mRNA水平下調(diào)卵巢癌中VEGF的表達(dá),并可能通過這一機(jī)制抑制卵巢癌血管生成。MASPIN表達(dá)對卵巢腫瘤進(jìn)展和血管生成的抑制作用,為以MASPIN為基礎(chǔ)的抗腫瘤血管生成基因治療提供了有利的理論依據(jù)。
[1]Zhang M,Volpert O,Shi YH,etal.Maspin is an angiogenesis inhibitor[J].Nat Med,2000,6(2):196-199.
[2]司徒振強(qiáng),吳軍正.細(xì)胞培養(yǎng)[M].西安:世界圖書出版社西安分公司,2004:78-88.
[3]Zou Z,Anisowicz A,Hendrix MJC,et al.Maspin,a serpin with tumor-suppressing activity in human mammary epithelial cells[J].Science,1994,263(5146):526-529.
[4]Boltze C.Loss ofmaspin is a helpful prognosticator in colorectalcancer.a tissue microarray analysis[J].Pathol Res Pract,2005,200(11-12):783-790.
[5]Song SY,Son HJ,Kim MH,et a1.Prognostic significance ofmaspin expression in human gastric edenocarcinoma[J].Hepatogsstroenterology,2007,54(75):973-976.
[6]Einhorn N,Nilsson B,Sjovall K.Factors influencing suivival in carcinoma of the ovary:Study from awell defined Ewidish population[J].Cancer,1985,55(9):2019-2015.
[7]TropéC.Prognostic factors in ovarian cancer.Cancer Treat Res.1998,95:287-352.
[8]Puls LE,Duniho T,Hunter JE,et al.The prognostic implication of asitis in advanced ovarian cancer[J].Gynocol Oncol,1996,61(1):109.
[9]Heighway J,Knapp T,Boyce L,et al.Expression profiling of primary non-small cell lung cancer for target identification[J].Oncogene,2002,21(50):7749-7763.
[10]Reis-Filho JS,Milanezi F,Schmitt FC.Maspin is expressed in the nuclei of breastmyoepithelial cells[J].JPathol,2002,197(2):272-273.
[11]Futscher BW,Oshiro MM,Wozniak RJ,etal.Role for DNAmethylation in the control of cell type specific maspin expression[J].Nat Genet,2002,31(2),175-179.
[12]Kohno T,MizukamiH,SuzukiM,etal.Interleukin-10mediated inhibition of angiogenesis and tumor growth in mice bearing VEGF2 producing ovarian cancer[J].Cancer Res,2003,63(16):5091-5094.
[13]van der Bilt AR,van der Zee AG,de Vries EG,etal.Multiple VEGF family members are simultaneously expressed in ovarian cancer:a proposed model for bevacizumab resistance[J].Curr Pharm Des,2012,18(25):3784-3792.
[14]Fernandez A,Udagawa T,Schwesinger C et al.Angiogenic Potential of Prostate Carcinoma CellsOverexpressing bcl-2[J].JNation Cancer Institute,2001,93(3):208-213.
[15]Trisciuoglio D,Gabellini C,Desideri M,et al.Involvement of BH4 domain of bcl-2 in the regulation of HIF-1-mediated VEGF expression in hypoxic tumor cells[J].Cell Death Differ,2011,18(6):1024-1035.
[16]Zhiqiang Z,Heidi YS,Ming Z.Targeted expression of maspin in tumor vasculartures induces endothelial cell apoptosis[J].Oncogene,2005,24(12):2008-2019.
[17]Lee SJ,Jang H,Park C.Maspin increases Ku70 acetylation and Baxmediated cell death in cancer cells[J].Int J Mol Med,2012,29(2):225-230.
[18]ZhangW,ShiHY,Zhang M.Maspin overexpressionmodulates tumor cell apoptosis through the regulation of Bcl-2 family proteins[J].BMC Cancer,2005,5:50-61.