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      不同分子質(zhì)量的菊粉對乳酸桿菌生長的影響

      2013-09-19 08:53:10旭,蘆春,鄭麗,邵
      關(guān)鍵詞:菊粉乳酸桿菌桿菌

      鄒 東 旭,蘆 明 春,鄭 曉 麗,邵 文 培

      (大連工業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,遼寧 大連 116034)

      0 引 言

      乳酸桿菌屬(Lactobacillus)為兼性厭氧微生物,發(fā)酵產(chǎn)生乳酸等有機酸,可阻止病原菌對腸道的入侵和定植、維持腸道的微生態(tài)平衡、增強機體免疫力、促進消化等生理功能[1],有研究顯示乳酸桿菌的發(fā)酵液有很強的抑菌效果。

      菊粉是一種果聚糖混合物,以β-(2,1)糖苷鍵連接,聚合度2~60,是良好的益生元。有研究表明,果聚糖選擇性地刺激一些乳酸菌的生長,其有效劑量為4~15g[2]。分子質(zhì)量是決定其益生功能和耐受量的重要因素,而在不同分子質(zhì)量的菊粉對乳酸桿菌生長的影響方面鮮有研究,因此本實驗探討了3種不同分子質(zhì)量的菊粉對兩株乳酸桿菌生長的影響,對3種菊粉益生元效果的差異性作出初步評估,為菊粉的選擇性應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材 料

      1.1.1 菌種與原料

      菌種:嗜酸乳桿菌(Lactobacillusacidophilus,簡稱La),保加利亞乳桿菌(Lactobacillus bulgaricus,簡稱Lb),中國工業(yè)微生物菌種保藏中心提供。

      原料:菊粉Ins(Standard inulin,相對分子質(zhì)量1962),菊粉Ino(Oligofructose powder,相對分子質(zhì)量666),菊粉Inh(High performance,相對分子質(zhì)量4069),實驗室自制。

      1.1.2 培養(yǎng)基

      基礎(chǔ)培養(yǎng)基(MRS-B):蛋白胨10g,牛肉膏10g,酵母膏5g,葡萄糖5g,無水乙酸鈉5g,檸檬酸三氨 2g,KH2PO42g,MgSO40.2g,MnSO4·H2O 0.05g,吐溫 80 1g,定容至1 000mL。

      改良培養(yǎng)基:MRS+菊粉(Ino,Ins,Inh)。

      益生培養(yǎng)基:以3種菊粉取代基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的葡萄糖,分別記為MNO、MNS、MNH。

      1.2 方 法

      1.2.1 菌種活化

      保藏菌種的平板上挑取單菌落,接種于100mL MRS液體培養(yǎng)基內(nèi),37℃培養(yǎng)24h。吸取200μL菌懸液于100mL MRS液體培養(yǎng)基內(nèi),37℃培養(yǎng)24h。經(jīng)兩次活化后,制成菌懸液。

      1.2.2 菊粉添加量的確定

      將2種菌懸液以3%接種量接入菊粉添加量為10、20、30和40g/L的改良培養(yǎng)基,37℃下靜置培養(yǎng)48h,取樣測定培養(yǎng)基的OD630和pH。

      1.2.3 3種菊粉對兩菌株的促生長作用

      將2種菌懸液以3%接種量接種于基礎(chǔ)培養(yǎng)基和3種改良培養(yǎng)基,37℃下?lián)u床培養(yǎng)48h,測定培養(yǎng)基的OD630和pH。

      1.2.4 2種菌株對3種不同菊粉的利用情況

      在3種益生培養(yǎng)基上進行2株乳酸桿菌的體外發(fā)酵實驗,研究48h內(nèi)兩菌株生長情況,以培養(yǎng)基的OD630,繪制生長曲線。

      測定培養(yǎng)基在發(fā)酵48h后波長630nm處的吸光度(A)。益生指標PI值按如下公式計算[3-4]:

      式中:APP0和APP48分別為碳源為菊粉時益生菌培養(yǎng)0和48h的吸光度,APG0和APG48分別為碳源為葡萄糖時益生菌培養(yǎng)0和48h的吸光度;APN0和APN48分別為益生菌在MRS無糖培養(yǎng)基(無碳源)培養(yǎng)0和48h的吸光度。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 菊粉添加量的影響

      由圖1可知,添加菊粉后菌體OD值均增加,說明菊粉的添加促進菌體生長。當添加質(zhì)量濃度為10g/L時促生長效果最好。由圖2可知,培養(yǎng)基pH在菊粉添加量為10g/L時降低最多。

      圖1 菊粉添加量對菌數(shù)的影響Fig.1 Effect of inulin amount on call number

      圖2 菊粉添加量對培養(yǎng)基pH的影響Fig.2 Effect of inulin amount on the pH of medium

      2.2 3種菊粉對兩菌株生長情況的影響

      按照方法“1.2.3”測定不同改良培養(yǎng)基48h后發(fā)酵液的OD值和pH,結(jié)果見圖3、4。由圖3可以看出,與MRS-B相比,3種改良培養(yǎng)基的OD值明顯地升高,表明3種不同分子質(zhì)量菊粉的添加促進了兩菌株的生長,可作為兩菌株的促生長因子。分子質(zhì)量最小的菊粉Ino對兩菌株的促生長作用最強。可能是菌體需要用糖苷酶將菊粉降解后方可利用。在其他條件相同時,分子質(zhì)量越小,糖苷酶越容易將其降解,越易于被菌體利用。

      圖3 兩菌株在不同MRS培養(yǎng)基下48h發(fā)酵液的OD值Fig.3 OD of two strains after fermentation 48hin improved MRS medium

      由圖4可以看出,菌的生長情況越好,對菊粉利用程度越高,并將其轉(zhuǎn)化為有機酸,使培養(yǎng)基pH降低。與MRS-B相比,3種改良培養(yǎng)基的pH明顯地降低,表明3種不同分子質(zhì)量菊粉的添加促進了兩菌株產(chǎn)酸,可作為兩菌株的促生長因子。MRS-Ino培養(yǎng)基經(jīng)培養(yǎng)兩菌株后呈現(xiàn)最小的pH,即在該培養(yǎng)基上兩菌株的生長情況最佳??赡苁窃谄渌麠l件相同時,分子質(zhì)量越小,糖苷酶越容易將其降解被菌體利用,產(chǎn)酸越多,pH降低越明顯。

      圖4 兩菌株在不同MRS培養(yǎng)基下48h發(fā)酵液的pHFig.4 pH of two strains after 48hfermentation in improved MRS medium

      2.3 兩菌株對3種菊粉的利用情況

      2.3.1 兩菌株利用3種菊粉的生長曲線

      按照“1.2.4”方法,研究兩菌株對3種不同分子質(zhì)量菊粉的利用情況,生長曲線如圖5所示。由圖5可知,在以3種不同分子質(zhì)量的菊粉為唯一碳源的益生培養(yǎng)基上兩菌株均呈現(xiàn)不同生長狀況。利用菊粉Ino和Ins時,生長期速率較大,達到穩(wěn)定期時間短;而利用菊粉Inh生長緩慢,達到穩(wěn)定期的時間較長。兩菌株對菊粉Ino的利用情況相近,對菊粉Ins的利用效果Lb強于La;而對于菊粉Inh,La的利用效果更好(與其利用菊粉Ins時相近)。

      圖5 兩菌株對3種菊粉利用情況Fig.5 Results of inulin fermented by two strains

      2.3.2 3種菊粉發(fā)酵兩菌株益生指標PI的測定

      兩菌株分別在3種益生培養(yǎng)基MNO、MNS、MNH培養(yǎng)基下發(fā)酵48h,發(fā)酵液的益生指標PI值如圖6所示。由圖6可看出,3種不同分子質(zhì)量的菊粉對兩菌株的益生效果均是菊粉Ino>菊粉Ins>菊粉Inh,表明分子質(zhì)量是決定菊粉益生效果的重要因素。兩菌株利用菊粉Ins和Ino的PI值達到0.6以上,益生作用良好。嗜酸乳桿菌發(fā)酵菊粉Inh的PI為0.4,效果最差。

      圖6 兩菌株培養(yǎng)48h后發(fā)酵液的PI值Fig.6 PI of two strains after 48hfermentation

      3 結(jié) 論

      通過研究不同分子質(zhì)量菊粉對兩株乳酸桿菌生長的影響,MRS培養(yǎng)基中菊粉添加量為10g/L時促生長效果最好,3種菊粉對嗜酸乳桿菌促生長作用強于保加利亞乳桿菌。以菊粉為唯一碳源的MRS培養(yǎng)基上,嗜酸乳桿菌利用菊粉Ino和Ins的效果比保加利亞乳桿菌好;而對于菊粉Inh,保加利亞乳桿菌比嗜酸乳桿菌效果好。3種菊粉均具有一定的促生長作用,且分子質(zhì)量越小,益生值越高,益生效果越強,為提高菊糖日安全攝入量并增強其益生效果進行了基礎(chǔ)研究,為菊粉作為益生元在食品中的安全應(yīng)用提供了依據(jù)。

      [1]趙艷平,李建喜,黃小紅,等.乳酸桿菌的研究進展及其在畜牧業(yè)上的應(yīng)用[J].廣東畜牧獸醫(yī)科技,2008,33(3):18-21.

      [2]STEWART M L,TIMM D A,SLAVIN J L.Fructooligosaccharides exhibit more rapid fermentation than long-chain inulin in an in vitro fermentation system[J].Nutrition Research,2008,28(5):329-334.

      [3]DEGAWA Y,SHIBANUMA K,BENNNO Y.The proliferation factors affecting the growth of intestinal bifidobacterium in the presence of corn-fiber components of containing hydrolyzed oligosaccharides[J].International Journal of Probiotics and Prebiotics,2006,1(3/4):203-212.

      [4]PALFRAMAN R,GIBSON G R,RASTALL R A.Development of a quantitative tool for the comparison of the prebiotic effect of dietary oligosaccharides[J].Letter in Applied Microbiology,2003,37(4):281-284.

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