趙京禹 費(fèi) 翔 岳 琦 郭 徽 鄧城旗 郝建華
解放軍總醫(yī)院第一附屬醫(yī)院麻醉科,北京 100037
膿毒癥一般是由于重大外科手術(shù)或嚴(yán)重?zé)齻?、?chuàng)傷和缺血再灌注損傷引起的并發(fā)癥,具有極高的發(fā)病率和病死率,是重癥監(jiān)護(hù)室(intensive care unit,ICU)患者死亡的首要因素[1-2]。嚴(yán)重的膿毒癥可以導(dǎo)致多個器官的功能損傷,臨床表明肺一般最先受到影響導(dǎo)致急性肺損傷(acute lung injury,ALI)[3-4]。 據(jù)臨床調(diào)查統(tǒng)計,ICU膿毒癥患者一般有大于50%的可能發(fā)生急性肺損傷,其極高的發(fā)病率和病死率是ICU面臨的一個重大難點(diǎn)[5-6]。膿毒癥是由于感染引起的全身炎性反應(yīng)[7],雖然現(xiàn)代醫(yī)學(xué)技術(shù)急速發(fā)展和新型抗生素的不斷運(yùn)用,但是膿毒癥和其并發(fā)癥并沒有受到有效的遏制[8],其發(fā)病率高居不下[9]。急性肺損傷是由于肺部不受控制的炎性反應(yīng)導(dǎo)致急性發(fā)生的進(jìn)行性呼吸衰竭,目前并沒有有效的治療方法和途徑。因此,探討膿毒癥急性肺損傷的發(fā)病機(jī)制和追尋有效的治療藥物和手段是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)的重要的任務(wù)。
蛇床子素(Osthole)是從蛇床子中提取的,具有多種藥理活性,研究表明其對心血管系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)和內(nèi)分泌系統(tǒng)相關(guān)疾病都具有顯著的療效,同時還具有抑癌的功能[10]。近年來研究發(fā)現(xiàn),Osthole還具有抑菌消炎的作用,對金黃色葡萄桿菌和綠膿桿菌等有顯著的抑制作用并且能夠增強(qiáng)機(jī)體的免疫功能[11-12]。因此,本研究以膿毒癥急性肺損傷大鼠為模型來研究探討Osthole對急性肺損傷的作用效果,旨在為該病的預(yù)防和臨床治療提供一種新的研究思路。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 8周齡雄性SD大鼠(SPF級)購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動物技術(shù)有限公司,體重170~230 g,實(shí)驗(yàn)前12 h禁食,不禁水。
1.1.2 主要試劑 蛇床子素(成都曼思特生物科技有限公司);髓過氧化物酶(MPO)檢測試劑盒,超氧化物歧化酶(SOD)檢測試劑盒,丙二醛(MDA)檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所);戊巴比妥鈉(上?;瘜W(xué)試劑公司);二辛可寧酸(BCA)蛋白濃度測定試劑盒(上海生工);IL-6和TNF-α檢測試劑盒(北京四正柏生物科技有限公司);HRP-IgG (Sigma,USA);活性caspase-3 抗體和 β-actin 抗體(Santa Cluz,USA)。
1.2.1 動物模型構(gòu)建及分組 動物模型的構(gòu)建根據(jù)文獻(xiàn)報道過的盲腸結(jié)扎穿刺術(shù)[13]。SD大鼠實(shí)驗(yàn)術(shù)前適應(yīng)生存環(huán)境3 d,采用戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉。皮膚消毒后,在前腹正中線處切口,辨認(rèn)并小心取出盲腸,在距離盲端1.5 cm處用絲線結(jié)扎,然后用18號針頭在盲腸結(jié)扎處遠(yuǎn)端穿扎兩次,擠出腸內(nèi)少許糞便,然后歸位和關(guān)腹。術(shù)后采用腹腔注射生理鹽水(24 mg/kg)補(bǔ)充體液流失。實(shí)驗(yàn)分組:假手術(shù)組(Sham)進(jìn)行手術(shù)但不結(jié)扎;急性肺損傷模型組(ALI)盲腸結(jié)扎穿刺術(shù)處理;低劑量組(ALI+Osthole,100mg/kg);高劑量組(ALI+Osthole,200 mg/kg), 術(shù)后 2 h腹腔注射,12 h后注射第2次。第2次注射24 h后,麻醉處死大鼠,取材分析。
1.2.2 支氣管肺泡灌洗液的收集 大鼠麻醉處死,開腹取左肺葉采用磷酸鹽緩沖液進(jìn)行支氣管肺泡灌洗5次(0.5 mL/次),收集灌洗液,12 000 r/min 低溫 4℃離心15 min,小心吸取上清,-70℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 支氣管肺泡灌洗液蛋白含量 蛋白含量的測定按照BCA蛋白濃度測定試劑盒說明書操作。在565 nm波長處測定,結(jié)果用g/L表示。
1.2.4 肺組織MPO、MDA和SOD的測定 取大鼠肺組織稱重0.1 g左右,漂洗干凈,洗去血液,濾紙擦干,加入勻漿介質(zhì)進(jìn)行勻漿。勻漿液10000r/min,離心10min,取上清備用檢測。MPO測定按MPO測定試劑盒說明,樣品孔中加入0.1 mL樣品稀釋液,后加入肺組織勻漿上清液0.02 mL,同時做好空白孔、陰性對照孔、陽性對照孔;封住板孔,37°C放置30 min;反復(fù)洗滌板條5次。每個孔中各加入50 μL的酶聯(lián)物,封住板孔,37°C放置30 min;反復(fù)洗滌板條5次。每個孔內(nèi)各加入50 μL底物 A、B,封住板孔,37°C 放置 10 min,每個孔內(nèi)加入終止液50 μL,終止反應(yīng)。立即取出用分光光度計測定460 nm處OD值。MDA測定:將工作液、緩沖液、沉淀液和40 μL稀釋好的肺勻漿液按順序加進(jìn)測試管內(nèi);對照管中除不加肺勻漿液,余步驟相同;輕輕混勻,分別將試管口用保鮮膜扎緊,用針頭在保鮮膜上扎一個小孔,95℃水浴50 min;流水下冷卻至室溫,加1 mL蒸餾水和5 mL正丁醇吡啶抽提液,漩渦震蕩1 min,532 nm波長處測定OD值。SOD測定:樣品孔中加入0.1 mL樣品稀釋液,加入肺組織勻漿上清液0.02 mL,同時做好空白孔、陰性對照孔、陽性對照孔;封住板孔,37°C放置30 min,洗滌板條5次。每個孔中各加入50 μL的酶聯(lián)物,封住板孔,37℃放置30 min;洗滌板條,每個孔內(nèi)各加入50 μL底物A、B,封住板孔,37℃放置 10 min,加入終止液 50 μL,終止反應(yīng),500 nm波長處測定OD值。
1.2.5 支氣管肺泡灌洗液細(xì)胞因子水平測定 提前30 min從取出冰箱中試劑盒,溫度下降到室溫;濃縮洗滌液用雙蒸水稀釋(0.05%);凍干標(biāo)準(zhǔn)品用其稀釋液1 mL徹底溶解混勻,放置15 min。制備梯度濃度的標(biāo)準(zhǔn)品:從冰箱中取支氣管肺泡灌洗液(BAL)上清,自然升溫至室溫。根據(jù)先前預(yù)實(shí)驗(yàn)的情況稀釋成合適的濃度;濃縮的生物素抗體以及酶結(jié)合物均用其相應(yīng)的稀釋液進(jìn)行稀釋,分別在臨用前15 min配好。將準(zhǔn)備好的待測樣品和標(biāo)準(zhǔn)樣品分別加入各反應(yīng)孔中(0.1 mL/孔)。37℃孵育 90 min,洗滌 5 次。加入生物素化抗體(0.1 mL/孔),暗處 37℃孵育 30 min,洗滌5次。每孔加顯色劑 0.1 mL,37℃,15 min,避光顯色。加入100 μL終止液,終止顯色,450 nm測量OD值。
1.2.6 Western blot方法 提取肺組織蛋白,BCA法測蛋白的濃度。取蛋白樣品30 μg,進(jìn)行SDSPAGE電泳。電泳結(jié)束后,將凝膠上的蛋白通過點(diǎn)轉(zhuǎn)移轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜上,并用1%麗春紅染色檢測轉(zhuǎn)移效果。而后,將膜放在10 mL封閉液中(2%脫脂奶粉,TBS (Tris-buffered saline,150 mmol/L NaCl,10 mmol/L Tris-HCl,pH=7.5 配制)1 h; 加入一抗 (1∶1000),4℃過夜孵育;TBST(TBS 含 0.02%Tween)洗 3次,加入二抗 HRP-IgG(1∶10000)室溫孵育 2 h;TBST洗膜3次,TBS洗膜1次,暗處發(fā)色。發(fā)色液現(xiàn)用現(xiàn)配(1 mL 4-氯-1-萘酚(6 mg/mL 甲醇配制),9 mL TBS,6 μL H2O2)。
采用統(tǒng)計軟件SPSS 13.0對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,計量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
結(jié)果顯示,ALI 組蛋白總量 [(0.48±0.04)g/L]與Sham組相比急劇增加(P<0.01),當(dāng)用蛇床子素處理后,BAL蛋白含量顯著降低(P<0.05),而高劑量的蛇床子素(200 mg/kg)[(0.26±0.02)g/L]比低劑量的蛇床子素 (100 mg/kg)[(0.33±0.03)g/L]效果更加明顯(P < 0.05)。 見圖 1。
圖1 蛇床子素對BAL蛋白總量的影響
結(jié)果顯示,ALI組中SOD的水平顯著下降,而MDA和MPO的水平則顯著升高(P<0.05),說明氧化應(yīng)激反應(yīng)在ALI中顯著增加,當(dāng)用蛇床子素處理后,這些異常變化則被顯著抑制。見表1。
表1 蛇床子素對氧化應(yīng)激反應(yīng)的影響(±s)
表1 蛇床子素對氧化應(yīng)激反應(yīng)的影響(±s)
注:與 Sham 組比較,*P<0.05;與 ALI組比較,#P<0.05;Sham 組:假手術(shù)組;ALI:急性肺損傷模型組;ALI+Osthole:蛇床子素處理的急性肺損傷模型組;MPO:髓過氧化物酶;SOD:超氧化物歧化酶;MDA:丙二醛
Sham組ALI組ALI+Osthole組(200mg/kg)ALI+Osthole組(100mg/kg)22.934±3.257 9.657±1.237*14.679±1.035#17.639±1.893#5.634±0.860 15.568±2.987*9.345±1.979#11.336±1.236#7.534±1.812 15.651±1.137*10.884±1.811#9.012±0.896#組別 SOD(U/mg protein)MDA(nmol/mg protein)MPO(U/g wet tissues)
結(jié)果顯示,與Sham組相比ALI組中IL-6水平明顯升高(P<0.05),當(dāng)用蛇床子素處理時,IL-6水平明顯降低(P<0.05),而TNF-α的水平變化也是相同的趨勢(P<0.05),表明蛇床子素可以通過調(diào)控促炎因子的水平來抑制炎性反應(yīng)。見圖2。
圖2 蛇床子素對IL-6和TNF-α水平的影響
結(jié)果顯示,急性肺損傷導(dǎo)致活性caspase-3的水平急劇增加,而當(dāng)蛇床子素處理后,活性caspase-3的水平顯著下降,表明蛇床子素對肺組織細(xì)胞凋亡具有調(diào)控作用。見圖3。
圖3 蛇床子素對活性caspase-3水平的影響
膿毒癥是重ICU患者死亡的最首要的原因,常常導(dǎo)致各器官的損傷,特別是肺最先受到損傷,膿毒癥相關(guān)的急性肺損傷也是ICU發(fā)病率和致死率最高的一種臨床疾病[14-16]。急性肺損傷通常由于全身炎性反應(yīng)失控,導(dǎo)致劇烈的炎性反應(yīng),釋放大量的炎癥因子和介質(zhì)作用損傷肺泡上皮細(xì)胞和微血管內(nèi)皮細(xì)胞,引起血管內(nèi)蛋白質(zhì)大量滲出,產(chǎn)生肺泡性水腫和間質(zhì)性肺水腫,最終引起急性呼吸衰竭[17-18]。如何防治和治療膿毒癥相關(guān)的急性肺損傷,降低其發(fā)病率和病死率,是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)的所面臨的難點(diǎn)。中藥具有毒性低、安全高、藥源充足等特點(diǎn),因此在治療膿毒癥相關(guān)的急性肺損傷中具有潛在的前景。Osthole是從中草藥蛇床子中提取的一種成分,其全名為7-甲氧基-8-異戊烯基香豆素。近年來國內(nèi)外研究學(xué)者都對Osthole的藥理活性做了廣泛的研究,發(fā)現(xiàn)其具有抗氧化、抗癌、抗毒、抗菌和抗炎等多種藥效功能。本研究以大鼠為模型,主要探討了Osthole對急性肺損傷的保護(hù)相應(yīng)及其作用的初步機(jī)制。
急性肺損傷主要病理變化是肺泡上皮細(xì)胞和肺泡微血管通透性顯著增高,肺的炎癥損傷通常會導(dǎo)致肺泡上皮細(xì)胞功能受損,肺泡內(nèi)的蛋白質(zhì)滲出,對呼吸功能造成嚴(yán)重的障礙,導(dǎo)致蛋白質(zhì)的大量外滲。針對肺泡上皮細(xì)胞通透性的研究也是當(dāng)前的熱點(diǎn)。有報道稱阻斷熱休克蛋白HSP90的表達(dá),可以顯著降低肺泡上皮細(xì)胞和微細(xì)胞內(nèi)皮細(xì)胞的通透性提高膿毒癥大鼠模型的生存率[19-20]。Rac-1的活化可以穩(wěn)定血管的內(nèi)皮細(xì)胞,降低血管的通透性,對膿毒癥大鼠具有顯著的保護(hù)效應(yīng)。本實(shí)驗(yàn)也表明蛇床子素可以降低急性肺損傷引起的BAL蛋白含量升高的異常變化,對細(xì)胞通透性的改善具有顯著的效果。為了探究蛇床子素是否對肺泡蛋白質(zhì)滲出的作用,本研究檢測了各實(shí)驗(yàn)組BAL蛋白含量的變化情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn),急性肺損傷組蛋白總量與對照組相比急劇增加 (P<0.01),當(dāng)用蛇床子素處理后,BAL蛋白含量顯著降低 (P<0.05),而高劑量的蛇床子素(200 mg/kg)比低劑量的蛇床子素(100 mg/kg)效果更加明顯(P < 0.05)。
細(xì)菌感染通常會引起中性粒細(xì)胞的浸潤和活化,釋放大量炎癥介質(zhì),導(dǎo)致氧化應(yīng)激反應(yīng)?;钚匝醯倪^量積累導(dǎo)致基因突變和蛋白生活,對細(xì)胞功能和機(jī)體都造成極大的損害,造成嚴(yán)重的病理結(jié)果[21]。急性肺損傷中的氧化應(yīng)激反應(yīng)已有大量報道,活性氧的過量積累也是造成肺細(xì)胞通透性改變的主要原因[22]。MPO是中性粒細(xì)胞的重要標(biāo)志物,也是重要的過氧化物酶類,其水平與中性粒細(xì)胞的活化強(qiáng)度密切相關(guān)。因此,通過測定MPO的水平可以反映中性粒細(xì)胞的活化和浸潤程度。中性粒細(xì)胞和相關(guān)炎癥細(xì)胞的活化和浸潤,釋放大量的促炎癥因子例如IL-6和TNF-α,促炎因子通常經(jīng)過信號通路的轉(zhuǎn)導(dǎo)使炎性反應(yīng)級聯(lián)放大,不但加重肺損傷,而且損傷免疫系統(tǒng)[23]。IL-6和TNF-α是許多炎性反應(yīng)中重要的兩種促炎癥細(xì)胞因子,為了探討Osthole對促炎因子的影響,本研究檢測了BAL中這兩種細(xì)胞因子水平的變化。氧化應(yīng)激反應(yīng)是ALI的重要病理變化,過量的活性氧(ROS)通常會導(dǎo)致基因突變和蛋白。大量中性粒細(xì)胞的浸潤引起呼吸爆炸,會產(chǎn)生過多的過氧化物。為了探討Osthole對ALI中氧化應(yīng)激反應(yīng)的影響,本研究檢測了大鼠肺組織中SOD,脂質(zhì)氧化產(chǎn)物MDA以及中性粒細(xì)胞分泌的標(biāo)志物MPO。結(jié)果發(fā)現(xiàn),Osthole可以顯著抑制急性肺損傷引起MPO水平升高,即可以抑制中性粒細(xì)胞的活化和浸潤,從而可以緩解炎性反應(yīng)和氧化應(yīng)激反應(yīng)。抗氧化劑可以通過清除體內(nèi)的氧自由基來抑制膿毒性引起的炎性反應(yīng)[24],而SOD是體內(nèi)唯一可以清除氧自由基和過氧化物的抗氧化酶,其活性水平是機(jī)體抗氧化能力的主要標(biāo)志。MDA是體內(nèi)脂質(zhì)過氧化反應(yīng)的產(chǎn)物,其水平主要反映體內(nèi)細(xì)胞受到氧自由基攻擊的程度[25]。本試驗(yàn)中,還發(fā)現(xiàn)在急性肺損傷模型中,SOD水平顯著下降,而MDA水平明顯升高,表明急性肺損傷引起氧化應(yīng)激反應(yīng),機(jī)體的抗氧化能力下降。本結(jié)果表明Osthole可以有效的抑制氧化應(yīng)激反應(yīng),提高機(jī)體的抗氧化能力。
據(jù)報道,綠膿桿菌引起的肺部感染導(dǎo)致內(nèi)皮細(xì)胞的凋亡,是肺部細(xì)胞通透性改變的重要原因[26],肺炎癥損傷也涉及到細(xì)胞凋亡[14],為了進(jìn)一步探討Osthole是否對細(xì)胞凋亡也有調(diào)控作用,本研究檢測了肺組織中活性caspase-3的水平變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)急性肺損傷中肺部組織活性caspase-3的水平明顯升高,表明急性肺損傷中細(xì)胞凋亡途徑被活化[27-30]。Osthole可以抑制活性caspase-3的水平,表明Osthole可以通過調(diào)控細(xì)胞凋亡來改善急性肺損傷。
綜上所述,本研究以急性肺損傷大鼠為模型,探討研究Osthole對其作用效果。結(jié)果發(fā)現(xiàn)Osthole可以抑制炎性反應(yīng),緩解肺組織的氧化應(yīng)激反應(yīng),降低肺部細(xì)胞的凋亡,從而減輕肺組織的損傷和通透性的變化,對急性肺損傷大鼠有顯著的保護(hù)效應(yīng)。因此,Osthole對急性肺損傷的作用值得進(jìn)一步的研究,其作用機(jī)制也有待深入的探討。
[1]Bohannon J,Guo Y, Sherwood ER.The role of natural killer cells in the pathogenesis of sepsis:the ongoingenigma[J].Crit Care,2012,16(6):185.
[2]Riedemann NC,Guo RF,Ward PA.The enigma of sepsis[J].J Clin Invest,2003,112(4):460-467.
[3]Marshall JC.Inflammation, coagulopathy, and the pathogenesis of multiple organ dysfunction syndrome [J].Crit Care Med,2001,29(7):99-106.
[4]Papathanassoglou ED,Bozas E,Giannakopoulou MD.Multiple organ dysfunction syndrome pathogenesis and care:a complex systems'theory perspective [J].Nurs Crit Care,2008,13(5):249-259.
[5]Rubenfeld GD,Caldwell E,Peabody E,et al.Incidence and outcomes of acute lung injury [J].N Engl J Med,2005,353(16):1685-1693.
[6]Zimmerman JJ,Akhtar SR,Caldwell E,et al.Incidence and outcomes of pediatric acute lung injury [J].Pediatrics,2009,124(1):87-95.
[7]Werdan K,Schmidt H,Ebelt H,et al.Impaired regulation of cardiac function in sepsis, SIRS, and MODS [J].Can J Physiol Pharmacol,2009,87(4):266-274.
[8]Andrews P,Azoulay E,Antonelli M,et al.Year in review in intensive care medicine, 2005.Ⅱ.Infection and sepsis, ventilator-associated pneumonia, ethics, haematology and haemostasis, ICU organisation and scoring, brain injury[J].Intensive Care Med,2006,32(3):380-390.
[9]Cheng B,Xie G,Yao S,et al.Epidemiology of severe sepsis in critically ill surgical patients in ten university hospitals in China[J].Crit Care Med,2007,35(11):2538-2546.
[10]孫小兵,葉吉琴.蛇床子素研究進(jìn)展[J].大眾科技,2009(2):132-133.
[11]劉樺,蔣韻,韓英.蛇床子素對小鼠免疫藥理作用的研究[J].中草藥,1997,28(9):543-545.
[12]楊小紅,馬福廣,梁佩紅.復(fù)方蛇床子水劑對金黃色葡萄球菌凝固酶活性的影響[J].新中醫(yī),2000,32(3):37-38.
[13]Zingarelli B,Sheehan M,Hake PW,et al.Peroxisome proliferator activator receptor-gamma ligands,15-deoxy-Delta(12,14)-prostaglandin J2 and ciglitazone, reduce systemic inflammation in polymicrobial sepsis by modulation of signal transduction pathways[J].J Immunol,2003,171(12):6827-6837.
[14]Petrache I,Verin AD,Crow MT,et al.Differential effect of MLC kinase in TNF-alpha-induced endothelial cell apoptosis and barrier dysfunction [J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2001,280(6):1168-1178.
[15]Martin GS,Mannino DM,Eaton S,et al.The epidemiology of sepsis in the United States from 1979 through 2000[J].N Engl J Med,2003,348(16):1546-1554.
[16]Schlichting D,McCollam JS.Recognizing and managing severe sepsis: a common and deadly threat[J].South Med J,2007,100(6):594-600.
[17]Narasaraju T, Yang E, Samy RP, et al.Excessive neutrophils and neutrophil extracellular traps contribute to acute lung injury of influenza pneumonitis [J].Am J Pathol,2011,179(1):199-210.
[18]Perl M, Lomas-Neira J, Venet F, et al.Pathogenesis of indirect (secondary) acute lung injury [J].Expert Rev Respir Med,2011,5(1):115-126.
[19]Antonov A,Snead C,Gorshkov B,et al.Heat shock protein 90 inhibitors protect and restore pulmonary endothelial barrier function [J].Am J Respir Cell Mol Biol,2008,39(5):551-559.
[20]Chatterjee A,Dimitropoulou C,Drakopanayiotakis F,et al.Heat shock protein 90 inhibitors prolong survival,attenuate inflammation,and reduce lung injury in murine sepsis[J].Am J Respir Crit Care Med,2007,176(7):667-675.
[21]Bhattacharyya J, Biswas S, Datta AG.Mode of action of endotoxin:role of free radicals and antioxidants[J].Curr Med Chem,2004,11(3):359-368.
[22]Ward PA.Oxidative stress:acute and progressive lung injury[J].Ann N Y Acad Sci,2010,1203:53-59.
[23]Grommes J,Soehnlein O.Contribution of neutrophils to acute lung injury[J].Mol Med,2011,17(3-4):293-307.
[24]Suntres ZE,Shek PN.Prophylaxis against lipopolysaccharide-induced acute lung injury by alpha-tocopherol liposomes[J].Crit Care Med,1998,26(4):723-729.
[25]McCord JM,Edeas MA.SOD,oxidative stress and human pathologies:a brief history and a future vision [J].Biomed Pharmacother,2005,59(4):139-142.
[26]Childs EW, Tharakan B, Hunter FA,et al.Apoptotic signaling induceshyperpermeability following hemorrhagic shock [J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,292(6):3179-3189.
[27]沈顏紅,張建新.異丙酚對油酸性急性肺損傷模型大鼠肺組織細(xì)胞凋亡的影響[J].中國藥房,2009,20(1):30-32.
[28]馬忠偉,王秋玲,魏培玉.關(guān)龍膽乙醇提取物在急性肺損傷中的作用研究[J].中國藥房,2010,21(11):983-985.
[29]楊愛東,李文雯,王利霞,等.急性肺損傷大鼠肺組織TOLL樣受體4及CD14mRNA的表達(dá) [J].中國實(shí)驗(yàn)動物學(xué)報,2011,19(3):216-219,278.
[30]申東翔,賴添順,郭振輝,等.大潮氣量致急性肺損傷犬呼吸機(jī)相關(guān)性肺損傷模型的構(gòu)建 [J].中國實(shí)驗(yàn)動物學(xué)報,2009,17(4):292-295.