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      生精沖劑對白消安致生精障礙大鼠恢復精子發(fā)生及其機理的研究

      2013-09-12 00:25:16王慶忠王東方劉慧蓮馮道俊王漢海郭祖寶
      天然產物研究與開發(fā) 2013年9期
      關鍵詞:精子發(fā)生沖劑生精

      王慶忠,王東方,劉慧蓮,馮道俊,王漢海,郭祖寶

      濰坊學院生物與農業(yè)工程學院山東省高校“生物化學與分子生物學”重點實驗室,濰坊 261061

      精子發(fā)生是指從原始生殖細胞(primordial germ cells,PGCSs)增殖、遷移、分化,一直到發(fā)育為成熟精子的整個過程[1,2]。這一過程受到遺傳、激素、生長因子和環(huán)境等多種因素的影響[3]。據(jù)統(tǒng)計,全球15%的不育人口中,男性不育占50%[4],70%不育男子的精子常有缺失、稀少、無活力、形態(tài)異常等缺陷,但關于引起這些異常的分子機理的研究還較少[5],導致治療男性不育的困難。白消安(busulfan)對精子發(fā)生有損害作用,導致無精子癥或少精子癥。利用白消安制備生精障礙模型動物,已有大量的報道[6]。研究顯示,在少精子癥的治療中,單純的西藥治療效果并不及一些中藥方劑[7,8]。在本研究中,我們根據(jù)報道的生精沖劑協(xié)定配方[8],研究其對生精障礙模型大鼠精子發(fā)生的影響和作用機理,以便更好的利用中藥資源。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 實驗動物

      SD大鼠購于北京維通利華實驗動物中心,合格證號:SCXK-京2002-0003。大鼠在本實驗室飼養(yǎng)適應后,取5~6周幼年雄性大鼠30只隨機分為正常組、藥物組和對照組,每組各10只,體重190±20 g。

      1.1.2 主要藥品及試劑

      L-谷胺酰胺、青霉素、鏈霉素、葡萄糖、碘化丙啶(propidium iodine,PI)、二甲基亞砜(dimethylsulfoxide,DMSO)、多聚甲醛、Tween-20、Triton X-100、DABCO是triethylendianine公司產品;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、白消安等購自 Sigma公司。無菌生理鹽水為北京雙鶴藥業(yè)股份有限公司產品。大鼠促卵泡激素(follicle-stimulating hormone,F(xiàn)SH)酶聯(lián)免疫吸附分析(enzyme-linked immunoadsordent assay,ELISA)試劑盒、大鼠黃體生成素(luteinizing hormone,LH)ELISA檢測試劑盒和大鼠睪酮(testosterone,T)ELISA檢測試劑盒是生研(上海)生物科技有限公司產品。限制性內切酶、T4連接酶購自Promega公司;TRIzol試劑購自 Gibco公司,superscriptTMIII逆轉錄酶是 Invitrogen公司產品,Tag DNA聚合酶為大連寶生物公司產品。生精沖劑協(xié)定處方中的中藥紫河車、黃芪、枸杞子、菟絲子、仙靈脾、龜甲、砂仁、丹參購于同仁堂藥店。中藥在常溫下清洗后,70℃下4 h烘干,混合研磨成粉,過200目篩,包裝后經Co60輻射滅菌。

      1.2 實驗方法

      1.2.1 動物處理

      正常組的大鼠常規(guī)飼養(yǎng)。藥物組和對照組大鼠先制備成生精障礙大鼠,每只大鼠腹腔注射40 mg/kg體重白消安(白消安先以DMSO溶解后,注射前加等量的蒸餾水配制成4.0 mg/mL的濃度,并加溫至35~40 ℃)[9],1 次/周 ×2。處理 4 ~5 周后,內源性精子發(fā)生已經基本消除。此后,藥物組的大鼠給予灌胃生精沖劑16 g/kg·d[8],對照組大鼠灌胃等量生理鹽水,連續(xù)30 d。

      1.2.2 性激素水平的ELISA測定

      停藥后次日,斷頭處死大鼠取血,1500 rpm離心血液分離血清,用ELISA試劑盒測血清中FSH、LH和T水平。測定過程按說明書進行,主要步驟為:①在酶標包埋板上,分別設空白孔(不加樣品和酶標試劑)、標準孔(加50 μL標準品)和樣品孔(加40 μL樣品稀釋液和10 μL待測樣品),用封板膜封閉后,37℃瘟育30 min;②去封板膜,棄液體,用1∶30稀釋的洗滌液30 s×5次,涼干;③加50 μL酶標試劑(空白孔除外),37℃瘟育30 min;④用1∶30稀釋的洗滌液30 s×5次,涼干;⑤加50 μL顯色劑A,再加50 μL顯色劑B,震蕩混勻,37℃避光顯色15 min;⑥加50 μL終止液,孵育15 min后,在酶標儀上于450 nm波長處測定各孔OD值;⑦以標準品的濃度為橫坐標,OD值為縱坐標,繪出標準曲線,通過樣品的OD值查出相應的濃度。

      1.2.3 睪丸組織切片與染色觀察

      隨機取各組大鼠左側睪丸5只,去睪丸白膜,用Bouin's固定液固定后石蠟包埋,切片,HE染色,光鏡下觀察生精小管形態(tài)和精子發(fā)生狀態(tài)。

      1.2.4 基因表達的半定量RT-PCR分析

      用TRIzol試劑按說明書提供的方法提取總RNA。用SuperscriptTMIII逆轉錄酶合成cDNA第一鏈,用Tag DNA聚合酶進行PCR擴增反應。所檢測基因是膠質細胞源神經營養(yǎng)因子(Glial cell-derived neurotrophic factor,GDNF),引物序列為:gdnf(s):5’-GTCGCTAGCATGGGATTCGGGCC-3’;gdnf(a):5’-GAGAAGCTT TCAGATACATCCACACCGTTT-3’(218bp)。G3PDH(甘油醛-3-磷酸脫氫酶)作為內參照,G3PDH(s):ACCACAGTCCATGCCCATCAC,G3PDH(a):TCCACCACCCTGTTGCTGTA(450bp)。引物由上海生物工程服務公司合成。

      1.2.5 統(tǒng)計分析

      實驗數(shù)據(jù)以平均數(shù)±S表示,數(shù)據(jù)用SPSS10.0軟件進行統(tǒng)計處理,以One-way ANOVA評價組間差異。P<0.05為差異顯著。

      2 實驗結果

      2.1 生精沖劑處理提高了大鼠血清FSH、LH和T水平

      ELISA測定結果表明,藥物組大鼠血清中FSH、LH和T水平與正常組相比略低,但無顯著差異(P>0.05),與對照組相比明顯升高,且差異顯著(P<0.05)(表 1)。

      2.2 睪丸組織切片顯示生精沖劑促進了精子發(fā)生過程

      在光鏡下觀察各組大鼠的睪丸組織切片,發(fā)現(xiàn)正常組大鼠的曲細精管完整,較厚,生精細胞層數(shù)多,排列規(guī)則,各級生精上皮細胞層次明顯,曲細精管管腔中有長形精子;藥物組大鼠的曲細精管壁較溥,細胞排列不規(guī)則,有分化的精原細胞,管腔中沒有長形精子;對照組大鼠的曲細精管不完整,生精細胞少,觀察不到明顯分化的精原細胞。

      表1 血清FSH、LH、T的ELISA測定結果(n=5,)Table 1 Results of levels of FSH,LH and T in rat serum detected by ELISA(n=5,)

      表1 血清FSH、LH、T的ELISA測定結果(n=5,)Table 1 Results of levels of FSH,LH and T in rat serum detected by ELISA(n=5,)

      注:與對照組相比,*表示差異顯著(P﹤0.05);#表示差異不顯著(P﹥0.05)。Note:Compare with control,*represents the difference was remarkable(P <0.05);#represents the difference was not remarkable(P >0.05).

      組別Group FSH level(pg/mL)LH level(pg/mL)T level(ng/mL)正常組 Normal Group 1682.76 ±13.37 1786.36 ±3.45 2.8.046 ±0.29 9 ±0.53藥物組 Drug Group 1676.28 ±11.71*# 1772.15 ±6.46*# 2.73 ±0.31*#對照組 Control Group 1392.94 ±21.58 1296.25 ±12.49 2

      圖1 睪丸組織切片的HE染色圖(×200)Fig.1 Tissue slice of the testis tissue by HE staining(×200)

      圖2 不同處理大鼠睪丸組織中的GDNF基因的表達Fig.2 The expressions of GNDF in different treatment rat testis analyzed by semi-qualitative RT-PCR

      2.3 RT-PCR結果表明生精沖劑促進了GDNF表達

      GDNF是促進精原干細胞自我更新、生精細胞增殖和睪丸支持細胞增殖的重要生長因子[9]。對正常組、藥物組和對照組的大鼠睪丸組織中的GDNF基因表達的半定量RT-PCR分析結繩表明,藥物組與正常組無明顯差異,與對照組相比差異顯著。在灌飼生精沖劑1個月后,睪丸支持細胞所分泌的GDNF水平與正常大鼠相近,而對照組的大鼠睪丸中的GDNF表達水平較弱(圖2)。

      3 結論與討論

      白消安(1,4-丁二醇二甲磺酸酯)主要用于治療慢性粒細胞白血病,還能引起精原干細胞和各級生精細胞的大量凋亡,抑制精原干細胞的自我更新,對睪丸支持細胞促凋亡作用相對較弱,從而造成精子發(fā)生障礙,常用于制備生精障礙動物。一般情況下,這種生精障礙在處理后60~90 d時自然恢復[4,6]。生精沖劑的協(xié)定配方以補腎填精壯陽為主,對少精無精子癥患者有一定療效。本研究結果表明,生精沖劑能提高血清中FSH、LH和T水平,促進精子發(fā)生過程,這種促進作用的可能的機制之一是促進了GDNF的表達。

      FSH主要作用于睪丸支持細胞,促進其增殖和分泌多種生長因子,這些生長因子是生精細胞增殖與分化所必需的。LH主要作用于睪丸間質細胞,促進其增殖和分泌睪酮等。睪酮是促進生精細胞分化的主要激素。在生精障礙模型大鼠睪丸中,由于絕大部分的精原干細胞和全部分化的生精細胞被去除,生精作用的恢復源于少量的精原干細胞。因此,睪丸支持細胞分泌的GDNF作用尤其重要。由于生精沖劑提高了FSH水平,促進了支持細胞的增殖和分泌活動,GDNF的表達量增加,從而促進了精原干細胞的增殖;LH水平的升高和T水平的升高是正相關的,也正是由天T的分泌增多,促進了精原干細胞的分化發(fā)育,導致精子發(fā)生過程的恢復加快。但是,睪丸支持細胞分泌的生長因子種類多,作用復雜,性激素水平的升高對其他生長因子的作用我們沒有涉及,還有待于進一步的研究。

      1 Maatouk DM,Resnick JL.Continuing primordial germ cell differentiation in the mouse embryo is a cell-intrinsic program sensitive to DNA methylation.Dev Biol,2003,258:201-208.

      2 Kanatsu-Shinohara M,Toyokuni S,Shinohara T.Genetic selection of mouse male germline stem cells in vitro:offspring from single stem cells.Biol Reprod,2005,72:236-240.

      3 Kubota H,Avarbock MR,Brinster RL.Culture conditions and single growth factors affect fate determination of mouse spermatogonial stem cells.Biol Reprod,2004,71:722-731.

      4 Poongothai J,Gopenath TS,Manonayaki S.Genetics of human male infertility.Singapore Med J,2009,50:336-347.

      5 Wise P.Male infertility update.West J Med,1991,155:635-636.

      6 Kim I,Lee KH,Choi Y,et al.Allogeneic stem cell transplantation for patients with advanced hematological malignancies:comparison of fludarabine-based reduced intensity conditioning versus myeloablative conditioning.J Korean Med Sci,2007,22:227-234.

      7 Xu L(徐磊),Wang L(王磊),Zhang WX(張衛(wèi)星),et al.Effects of soluble granule of Shengjing on spermatogenesis disturbance induced by cyclophosphamide in mice.J Zhengzhou Univ,Med Sci(鄭州大學學報,醫(yī)學版),2008,2:16-19.

      8 Wang R(王瑞),Xu L(徐磊),Zhang WX(張衛(wèi)星),et al.Shengjing granule:an effective Chinese medicine for spermatogenic disturbance in mice.Nat J Androl(中華男科學雜志),2008,11:23-27.

      9 Ryu BY,Kubota H,Avarbock MR,et al.Conservation of spermatogonial stem cell self-renewal signaling between mouse and rat.Proc Natl Acad Sci USA,2005,102:14302-14307.

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