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      GMPase基因對煙草開花的調控研究

      2013-09-12 02:09:54彭彩娥
      浙江農業(yè)科學 2013年10期
      關鍵詞:抗逆性抗壞血酸轉基因

      沈 毅,趙 根,李 莉,彭彩娥

      (1.浙江大學農業(yè)與生物技術學院,浙江杭州 310058;2.湖州市農業(yè)科學研究院,浙江湖州 313000;3.浙江大學湖州市南太湖現(xiàn)代農業(yè)科技推廣中心,浙江湖州 313000)

      煙草 (Nicotiana tabacum)是茄科煙草屬一年生草本自花授粉植物,天然雜交率僅1%~3%,一般在花冠裂開前已完成授粉。利用基因調控和轉基因研究基因調控煙草開花的問題,不僅可縮短煙草開花時間,對煙草行業(yè)的發(fā)展也具有重要意義。

      GMPase是調控煙草中抗壞血酸 (AsA)的重要基因,其過量表達和抑制表達對煙草葉片中氧化型和還原型AsA具有較大影響,從而影響到煙草的花期。AsA又稱Vc,是含有內脂結構的多元醇類,其特點是具有可解離出H+的烯醇式羥基,因而其水溶液有較強的酸性。AsA在動植物體中具有重要的抗氧化功能和代謝功能,人體無法自身合成,新鮮蔬菜水果是人體攝入的重要來源[1]。

      AsA普遍存在于植物體組織中,是一種高豐度小分子抗氧化物質,可直接與超氧自由基(·)、過氧化氫(H2O2)和羥自由基(·OH)等發(fā)生活性氧反應,從而達到植物體抗氧化,在抗氧化脅迫中具有重要作用[2-5]。AsA除了參與植物抗氧化外,還具有其他許多特殊的功能:參與植物細胞壁的合成、伸長和交聯(lián);調節(jié)基因的轉錄翻譯;調節(jié)細胞氧化還原平衡,是一種重要的氧化還原緩沖劑;作為一些酶的輔酶,調節(jié)酶的活性;調節(jié)細胞的分裂和伸長。AsA的這些重要生理功能是與其氧化還原狀態(tài)以及生物合成、代謝、再生和轉運的相關酶類活性的變化密切相關的[2,6-7]。

      AsA通過參與植物細胞內的相關氧化還原反應,從而達到植物細胞的抗氧化作用。AsA在細胞內主要由抗壞血酸氧化酶 (ascorbate oxidase,AAO)和抗壞血酸過氧化物酶(ascorbate peroxidase,APX)催化。APX以AsA為電子供體,將H2O2還原為H2O,同時將AsA氧化為單脫氫抗壞血酸MDHA;MDHA以細胞色素b為電子供體,在MDHA還原酶 (MDHAR)的作用下還原為AsA,也可進一步生成脫氫抗壞血酸 DHA。而DHA在DHA還原酶的催化下,利用胱光甘肽為電子供體,通過抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)還原成AsA,并最終使 H2O2得以清除[3-4,8],氧化型谷胱甘肽在谷胱甘肽還原酶的催化下,用NADPH為電子供體得以還原。細胞壁內的AsA通過質膜運載體,以易化擴散方式與DHA交換而來,并在AO的作用下被氧化為MDHA,這樣產(chǎn)生的MDHA可能被質膜Cyt b系統(tǒng)還原;而細胞質內的AsA氧化所產(chǎn)生的MDHA有兩種途徑:進入胞質內的抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán),或者以NADH為電子供體被定位于質膜內側的MDHAR催化還原為AsA[9]。

      本試驗是建立在陳坤明等[5]對植物AsA的合成等研究的基礎上,先將野生煙草經(jīng)轉基因得到試驗用轉基因煙草,再將野生煙草和轉基因煙草同時播種生長,在相同環(huán)境下,測量其生長指標,并在特定階段,測定其葉片中過氧化物酶 (POD)和丙二醛 (MDA)含量,來研究GMPase基因對煙草開花的影響。

      1 材料與方法

      以野生煙草為對照,以轉基因T1-05和T1-15煙草為試驗煙草。播種培養(yǎng)后,測其株高、莖粗、葉面積、葉表面情況等生長指標。將野生型煙草和T1-05,T1-15轉基因型煙草經(jīng)4℃低溫和40℃高溫處理后,測定其POD含量的變化,及4℃低溫對MDA含量的影響。

      2 結果與分析

      2.1 生長

      3種試材播種后,置于人工氣候試驗室內培養(yǎng),每種煙草取16棵,每隔1周測量其生長指標1次,共5周,再取平均數(shù) (表1)。數(shù)據(jù)顯示,野生煙草在株高上比轉基因T1-05,T1-15煙草矮得多,而野生煙草幾乎沒有莖,葉片直接從底部生長,無法測量其莖粗,而在葉面積上明顯比轉基因T1-05,T1-15煙草大很多,葉表面野生無毛和褶皺。而T1-05和T1-15轉基因煙草在株高、莖粗和葉面積上差異不大,葉表面隨之開始有毛和褶皺。T1-05和T1-15轉基因煙草的節(jié)間顯著長于CK煙草,且葉片較薄而小,并出現(xiàn)早衰的現(xiàn)象。

      表1 野生煙草和轉基因煙草的表型差異

      2.2 POD含量

      以POD為代表的抗氧化酶系統(tǒng)和以AsA為代表的抗氧化劑組成的抗氧化系統(tǒng)對植物體內活性氧(ROS)水平起著精密的調控作用,從而將活性氧控制在細胞可忍耐的水平。

      野生型和T1-05,T1-15轉基因型煙草材料經(jīng)低溫和高溫處理后其POD含量發(fā)生明顯變化 (圖1-2)。

      圖1 低溫處理對煙草POD含量的影響

      圖2 高溫處理對煙草POD含量的影響

      由圖1可知,隨著低溫處理,野生型煙草的POD含量迅速下降,24 h后基本平穩(wěn);而T1-05和T1-15煙草的POD含量開始表現(xiàn)為下降,24 h后呈上升趨勢。說明野生型煙草在0,24 h低溫處理的抗逆性優(yōu)于T1-05和T1-15轉基因型煙草,但T1-05和T1-15在24 h后抗逆性開始反彈。

      由圖2可知,高溫處理破壞了酶活性,處理時間越長,破壞程度越高,POD含量越低。但總體而言,野生型煙草的POD含量比T1-05和T1-15轉基因的高,說明總體上野生型煙草抗高溫優(yōu)于T1-05和T1-15轉基因型煙草。

      2.3 MDA含量

      植物體在不利的生長環(huán)境下受到傷害或者衰老,都與活性氧積累誘發(fā)的膜脂過氧化作用密切相關。產(chǎn)物中的MDA是膜脂過氧化最重要的產(chǎn)物之一,可通過對其含量的測定來顯示植物膜脂過氧化的程度,間接測定膜系統(tǒng)受損情況及抗逆性。

      野生型和T1-05,T1-15轉基因型煙草經(jīng)4℃低溫處理后,其MDA含量發(fā)生明顯變化 (圖3)。

      圖3 低溫處理對煙草MDA含量的影響

      由圖3可知,處理24 h后,3種煙草抗逆性相當;12和48 h時,T1-05和T1-15轉基因煙草抗逆性優(yōu)于野生型煙草;36 h時,野生煙草抗逆性高于T1-05和T1-15。結果表明,隨著低溫處理時間的延長,膜系統(tǒng)受損一定程度后,就不再受破壞;野生型煙草的恢復能力和抗逆性優(yōu)于T1-05和T1-15轉基因煙草。

      3 小結與討論

      GMPase基因是植物合成AsA的首個關鍵酶基因,催化產(chǎn)物GDP-甘露糖可用于合成植物細胞壁的碳水化合物,在肽鏈合成的同時或合成后,還可用于糖鏈被接到肽鏈上特定的糖基化位點 (蛋白糖基化)。GMPase基因能提高體內AsA含量,可增強植物體的抗脅迫能力[10]。

      與野生型煙草相比,轉基因煙草葉片AsA含量降低了30%~40%,表現(xiàn)出與野生煙草不同的表型。轉基因煙草植株在組培過程中就開始開花,在7~8片葉時全部開花,而野生煙草生長至25~28片葉時才開始開花,轉基因煙草開花時間比野生煙草提前近1個月。在7~8片葉時,轉基因煙草的節(jié)間顯著長于野生煙草,葉片薄且小,并出現(xiàn)早衰現(xiàn)象。

      GMPase基因的抑制表達明顯降低了轉基因煙草的自身抗氧化能力,在4℃低溫和40℃高溫脅迫下,T1-05和 T1-15轉基因煙草葉片的 SOD、APX活性顯著低于野生煙草,而其葉片的MDA和H2O2含量大大超過野生煙草。上述結果證明了GMPase基因在植物體合成AsA過程中起關鍵作用,雖然GMPase不是清除活性氧的抗氧化酶,但GMPase基因的表達卻與植物的抗氧化能力密切相關[10]。

      通過對煙草的植株生理性狀、POD含量、MDA含量的測定表明,野生煙草在抗逆性方面優(yōu)于轉基因煙草,GMPase基因能有效地控制AsA的合成,從而實現(xiàn)對煙草花期的有效調控。

      [1]Radzio J A,Lorence A,Chevone B I,et al.L-gulono-1,4-lactone oxidase expression rescues vitamin C-deficientArabidopsis(vtc)mutants [J].Plant Mol Biol,2003,53(6):837-844.

      [2]Smirnoff N.The function andmetabolism of ascorbic acid in plants[J].Ann Bot,1996,78:661-669.

      [3]Noctor G,F(xiàn)oyer C H.Ascorbate and glutathione:Keeping active oxygen under control[J].Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,1998,49:249 -279.

      [4]Davey M W,Montagu M V,Inze D,et al.Plant L-ascorbic acid:chemistry,function,metabolism,bioavailability and effects of processing[J].J Sci Food Agric,2000,80:825-860.

      [5]陳坤明,宮海軍,王鎖民.植物抗壞血酸的生物合成、轉運及其生物學功能[J].西北植物學報,2004,24(2):329-336.

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      [10]王華森.番茄葉片GDP-甘露糖焦磷酸化酶基因 (GMPase)的cDNA克隆及功能分析 [D].泰安:山東農業(yè)大學,2007.

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