魯?shù)?,Azimova Bahtigul Jovliqizi,張國林,王 飛*
1中國科學(xué)院成都生物研究所,成都 610041;2中國科學(xué)院研究生院,北京 100049;3烏茲別克斯坦科學(xué)院生物化學(xué)研究所,塔什干 10012,烏茲別克斯坦
雌激素是人體內(nèi)一種重要的內(nèi)源性物質(zhì),介導(dǎo)了許多重要的生理功能。雌激素主要有三類,活性最高的是雌二醇(17β-estradiol,E2),其次是雌酮(estrone,E1),活性最低的為雌三醇(estriol,E3),其生物學(xué)效應(yīng)主要通過與雌激素受體(estrogen receptor α/β)相結(jié)合,激活其轉(zhuǎn)錄或非轉(zhuǎn)錄活性,在生殖、免疫、骨骼、心血管和中樞神經(jīng)統(tǒng)中發(fā)揮重要作用。雌激素缺乏常導(dǎo)致骨質(zhì)疏松、冠心病、阿爾茨海默癥、肥胖等常見疾病,而雌激素相對過量則是諸多腫瘤(如乳腺癌)發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移等的直接原因[1]。生物體內(nèi),膽固醇通過一系列酶促反應(yīng)合成雌激素,其限速步驟是由芳香化酶催化雄激素底物轉(zhuǎn)化為雌激素。芳香化酶在卵巢、脂肪組織及骨骼中均有表達,但在不同組織中使用不同啟動子,其調(diào)控機制也不一樣[2]。
在我國,隨著社會、經(jīng)濟的發(fā)展,近十年來,許多老年性疾病(如心腦血管疾病、骨質(zhì)疏松癥及乳腺癌)的發(fā)病率、死亡率和危險因素呈直線上升趨勢。例如,由骨質(zhì)疏松癥導(dǎo)致的脊柱或胯骨骨折是老年人發(fā)病和死亡的一個主要原因[3]。乳腺癌已經(jīng)是患病率最高的婦女惡性腫瘤,嚴重影響絕經(jīng)后婦女的生活質(zhì)量[4]。這些疾病的發(fā)生都與雌激素在機體內(nèi)的合成代謝紊亂和/或其介導(dǎo)的信號途徑失調(diào)有關(guān),因此發(fā)現(xiàn)新的雌激素合成調(diào)節(jié)劑對于這些重大疾病的治療具有重要意義。但目前受限于小分子化合物的檢測方法,針對雌激素合成的化合物篩選進展緩慢,嚴重限制了具有組織特異性的雌激素合成調(diào)節(jié)劑的發(fā)現(xiàn)。對于雌二醇的檢測分析,國內(nèi)外學(xué)者進行了大量研究工作,建立了諸如TLC、GC/MS、HPLC等理化分析方法[5]。但這些方法操作比較繁瑣,不適用于大量樣本的篩選工作[6]。目前常用方法是以同位素標記的睪酮或雄烯二酮為底物,使用人胎盤微粒體或人重組芳香化酶蛋白[7],或使用哺乳動物細胞系(如表達芳香化酶的人JEG-3或JAr細胞系),通過測量3H-水釋放量,從而確定芳香化酶活性[8]。同位素方法的優(yōu)點是所測結(jié)果可靠,檢測靈敏度高;缺點是操作復(fù)雜,需要專門的實驗設(shè)備和條件,成本高,難以做到高通量篩選。人卵巢顆粒細胞KGN細胞被發(fā)現(xiàn)表達較高水平的芳香化酶,由于缺乏17α-羥化酶,其本身并不產(chǎn)生睪酮或雌激素,且促卵泡激素(FSH)和福斯克林(Forskolin)可顯著促進細胞內(nèi)芳香化酶表達,是進行雌激素合成研究的良好細胞[9,10]。采用非放射性雌激素ELISA方法,能有效地檢測出KGN細胞芳香化酶活性變化[9,10],具有快速、簡便、靈敏、經(jīng)濟的特點,適合大批量樣品檢測[11]。但這種基于聚苯乙烯基質(zhì)的酶聯(lián)免疫法的抗體與聚苯乙烯材料是疏水性非特異性結(jié)合的,導(dǎo)致檢測靈敏度低,重復(fù)性不好。而磁微粒分離酶聯(lián)免疫法具有很多優(yōu)點,例如磁微粒尺寸小、表面積大,共價交聯(lián)結(jié)合抗體,增加了抗原-抗體反應(yīng)的效率,降低非特異性結(jié)合,檢測更快速,更精確[12,13]。
雖然磁微粒分離免疫法已用于檢測環(huán)境污染物中的雌激素[14,15],但該方法在基于細胞的雌激素活性評價和篩選方面的應(yīng)用尚有待進一步研究。本研究通過比較傳統(tǒng)的聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法和磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的檢測靈敏度和特異性差異,確定KGN細胞系的培養(yǎng)條件、底物睪酮處理濃度等因素,構(gòu)建雌激素活性檢測的篩選模型。
睪酮(T)、福美司坦(FOR)及福斯克林(FSK)買自 sigma化學(xué)公司(St.Louis,MO)。睪酮、福美司坦及福斯克林用DMSO溶解稀釋,配成終濃度為100 mmol/L的原始溶液,存放在-20℃?;衔锶芤河肈MSO依次梯度稀釋10倍。DMSO在培養(yǎng)基中的最終濃度為0.1%(v/v)。新生小牛血清、胎牛血清及活性炭/葡聚糖處理去除內(nèi)源性激素的新生小牛血清買自 GIBCO公司。有、無酚紅的DMEM/F-12培養(yǎng)基買自Invitrogen公司。青鏈霉素、PBS及含EDTA的胰酶買自成都哈里生物公司。BCA蛋白檢測試劑盒買自上海Bestbio公司。
基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的Ekozyme人雌二醇ELISA診斷試劑盒,北京,倍愛康生物技術(shù)有限公司。基于聚苯乙烯基質(zhì)酶聯(lián)免疫法的Cussabio人雌二醇ELISA試劑盒,武漢,華美生物技術(shù)有限公司。
KGN細胞系(解放軍總醫(yī)院,母義明教授提供,中國北京)在補充有5%(v/v)胎牛血清(GIBCO,Invitrogen),青霉素(100單位/mL)及鏈霉素(0.1 g/L)的 DMEM/F-12 培養(yǎng)基(Invitrogen,Carlsbad,CA),37℃,5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.4.1 芳香化酶活性檢測
根據(jù)文獻[10]并作適當(dāng)修改,3×104KGN細胞/ml接種在24孔組織培養(yǎng)板中培養(yǎng)24 h。培養(yǎng)基更換成不含血清的、DMEM/F-12培養(yǎng)基,加入不同濃度測試化合物,培養(yǎng)24 h。加入底物睪酮,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。吸取培養(yǎng)基及去除培養(yǎng)基后裂解細胞所得溶液存于-20℃。培養(yǎng)基13000 rpm,離心1 min,使培養(yǎng)基中細胞碎片等沉淀,獲得培養(yǎng)基上清液。用雌二醇檢測試劑盒定量培養(yǎng)基上清液中雌二醇量。所得結(jié)果經(jīng)蛋白校正,表示為對照DMSO的百分數(shù)。用BCA蛋白檢測試劑盒定量裂解細胞所得溶液的蛋白含量。
1.4.2 檢測方法
按各種試劑盒的使用說明書進行操作。用Thermo Scientific Verioskan Flash多功能讀數(shù)儀檢測吸光度。
以KGN細胞系為研究對象檢測雌二醇合成變化需要以睪酮為底物,而睪酮的化學(xué)結(jié)構(gòu)與雌二醇的化學(xué)結(jié)構(gòu)具有較高的相似性。因此,為了研究聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法與磁微粒分離酶聯(lián)免疫法在雌二醇檢測中的特異性,我們檢測了這兩種試劑盒與底物睪酮的交叉反應(yīng)。表1表明,這兩種酶聯(lián)免疫法的交叉反應(yīng)都較低,睪酮幾乎不影響雌二醇檢測。即,基于聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法的ELISA試劑盒與基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的ELISA試劑盒的特異性都較高。
表1 雌二醇檢測法的交叉反應(yīng)率Table 1 The cross-reactivity of polystyrene-and magnetic particle-based 17β-estradiol assay methods(%)
為了確定聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法與磁微粒分離酶聯(lián)免疫法雌二醇檢測靈敏度,使用這兩種ELISA檢測方法檢測DMSO、10 μmol/L福斯克林及50 μmol/L福美司坦處理KGN細胞系后芳香化酶活性變化情況[16-18]。圖1表明,同種處理條件,磁微粒分離酶聯(lián)免疫法檢測到更高的雌二醇量,芳香化酶活性變化更顯著。上述結(jié)果表明,與傳統(tǒng)的聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法相比,磁微粒分離酶聯(lián)免疫法靈敏度更高,更適合于雌二醇檢測。
圖1 雌二醇檢測方法比較Fig.1 The sensitivity comparison of polystyrene-and magnetic particle-based 17β-estradiol assay methods
培養(yǎng)基所含的酚紅用于指示培養(yǎng)基中CO2濃度變化,其顏色是粉紅色。為了確定酚紅顏色對檢測結(jié)果的影響,我們用聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法(OD450)和磁微粒分離酶聯(lián)免疫法(OD550)測量PBS溶液及酚紅溶液的吸光度值,圖2表明,兩種雌二醇檢測方法中,酚紅溶液在檢測波長處的吸光度值都顯著大于PBS在對應(yīng)波長處的吸光度值。上述結(jié)果表明,由于酚紅顏色干擾,導(dǎo)致檢測結(jié)果比真實結(jié)果更大。因此,應(yīng)用不含酚紅的DMEM/F-12培養(yǎng)基接種KGN細胞系。
圖2 酚紅對雌二醇檢測結(jié)果的影響Fig.2 The effect of phenol red in the culture medium on quantification of 17β-estradiol in polystyrene-and magnetic particle-based 17β-estradiol assay methods
為了優(yōu)化檢測體系的靈敏度,我們用基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的ELISA試劑盒檢測底物睪酮與產(chǎn)物雌二醇間的濃度關(guān)系。圖3表明,當(dāng)?shù)孜锊G酮終濃度為10 nmol/L時,與DMSO相比,50 μmol/L福美司坦抑制了22%的芳香化酶活性,而10 μmol/L福斯克林增加了300%的雌二醇量。而其它睪酮處理濃度條件下,福斯克林或福美司坦激活或抑制芳香化酶活性的能力不顯著。這可能因為,基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的雌二醇ELISA試劑盒測量范圍為0~11 nmol/L,底物睪酮處理終濃度過大,造成培養(yǎng)基中雌二醇量超過該方法的檢測極限。上述結(jié)果表明,底物睪酮處理終濃度為10 nmol/L時,基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的ELISA試劑盒具有最佳檢測靈敏度。
圖3 睪酮濃度對雌二醇合成檢測結(jié)果的影響Fig.3 The effect of testosterone concentration on quantification of 17β-estradiol in magnetic particle-based 17βestradiol assay methods
為了確定基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的檢測體系有效性,我們檢測底物睪酮終濃度為10 nmol/L時,不同濃度芳香化酶抑制劑及激動劑對KGN細胞系雌激素合成的影響。如圖4所示,與不加底物睪酮相比,加入睪酮使培養(yǎng)基中雌二醇量增加了9倍,表明KGN細胞系有內(nèi)源性芳香化酶蛋白表達。與加入睪酮處理的相比,加入不同濃度(1-10 μmol/L)陽性對照福斯克林,培養(yǎng)基中雌二醇生成量以濃度依賴方式增加,其中10 μmol/L福斯克林誘導(dǎo)培養(yǎng)基中雌二醇量增加了4.2倍左右。加入不同濃度(1~50 μmol/L)芳香化酶抑制劑福美司坦,雌二醇合成量以濃度依賴方式被抑制,其中50 μmol/L福美司坦抑制了30%左右的雌二醇合成量。以上結(jié)果表明我們成功建立雌激素篩選模型,可用于篩選雌激素合成調(diào)節(jié)劑。
圖4 KGN細胞系篩選模型有效性驗證Fig.4 The validation of the screen platform in human KGN cells
通過比較傳統(tǒng)基于聚苯乙烯基質(zhì)的酶聯(lián)免疫法及磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的檢測特異性及靈敏度,我們發(fā)現(xiàn),雖然聚苯乙烯酶聯(lián)免疫法與磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的檢測特異性差別不大,但磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的靈敏度更高,更適合于雌二醇檢測。通過進行酚紅對檢測結(jié)果影響及底物睪酮處理終濃度的研究發(fā)現(xiàn),酚紅顏色干擾導(dǎo)致磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的檢測結(jié)果變大,磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的最適底物睪酮處理終濃度為10 nmol/L。通過檢測篩選模型有效性確定所構(gòu)建的雌激素篩選模型,即在24孔組織培養(yǎng)板中,使用不含酚紅、含5%活性炭/葡聚糖處理去除內(nèi)源性激素的新生小牛血清的DMEM/F-12培養(yǎng)基接種3×104KGN細胞/ml,培養(yǎng)24 h。加測試物處理KGN細胞系前,培養(yǎng)基更換成不含酚紅、不含血清的DMEM/F-12培養(yǎng)基;24小時后,加入終濃度為10 nmol/L底物睪酮,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,用基于磁微粒分離酶聯(lián)免疫法的雌二醇ELISA試劑盒檢測培養(yǎng)基中雌二醇量。所建立的篩選模型避免采用放射性底物,環(huán)境友好,成本較低,適用于基于細胞的雌激素生物合成活性評價和高通量篩選,對篩選和發(fā)現(xiàn)具有組織特異性的雌激素合成調(diào)節(jié)劑具有重要意義。
1 Simpson ER,Misso M,Hewitt KN,et al.Estrogen-the good,the bad,and the unexpected.Endocrine Reviews,2005,26:322-330.
2 Timm GE.Final detailed review paper on aromatase.EPA,2005:1-93.
3 Nawata H,Tanaka S,Takayanagi R,et al.Aromatase in bone cell:association with osteoporosis in postmenopausal women.J Steroid Biochem mol biol,2005,53:165-174.
4 Yager JD,Davidson NE.Estrogen carcinogenesis in breast cancer.N Engl J Med,2006,354:270-282.
5 Sawaya NW,Lone KP,Husain A,et al.Screening for estrogenic steroids in sheep and chicken by the application of enzyme-linked immunosorbent assay and a comparison with analysis bygaschromatography-massspectrometry.Food Chemistry,1998,63:563-569.
6 Singh P,Ram BP,Sharkov N.Enzyme-immunoassay for screening of sulfamethazine in swine.Journal of Agricultural and Food Chemistry,1989,37:109-114.
7 Njar VCO,Grun G,Hartmann RW.Evaluation of 6,7-aziridinyl steroids and related compounds as inhibitors of aromatase(P-450arom).J Enzyme Inhibition,1995,9:195-202.
8 Lephart ED,Simpson ER.Assay of aromatase activity.Methods in Enzymology,1991,206:477-483.
9 Nishi Y,Yanase T,Mu YM,et al.Establishment and characterization of a steroidogenic human granulosa-like tumor cell line,KGN,that expresses functional follicle-stimulating hormone receptor.Endocrinology,2001,142:437-445.
10 Ohno K,Araki N,Yanase T,et al.A novel nonradioactive method for measuring aromatase activity using a human ovarian granulosa-like tumor cell line and an estrone ELISA.Toxicol Sci,2004,82:443-450.
11 Sheth HB,Sporns P.Development of a single ELISA for detection of sulfonamides.J Agric Food Chem,1991,39:1696-1700.
12 Foti AG,Herschman H,Cooper JF.A solid-phase radioimmunoassay for human prostatic acid phosphatase.Cancer Res,1975,35:2446-2452.
13 Kala M,Bajaj K,Sinha S.Magnetic bead enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA)detects antigen-specific binding by phage-displayed scFv antibodies that are not detected with conventional ELISA.Anal Biochem,1997,254:263-266.
14 Tanaka T,Takeda H,Ueki F,et al.Rapid and sensitive detection of 17β-estradiol in environmental water using automated immunoassay system with bacterial magnetic particles.J Biotech,2004,108:153-159.
15 Shelver WL,Parrotta CD,Slawecki R,et al.Development of a magnetic particle immunoassay for polybrominated diphenyl ethers and application to environmental and food matrices.Chemosphere,2008,73:18-23.
16 Sanderson JT,Hoedijk J,et al.Induction and inhibition of aromatase(CYP19)activity by natural and synthetic flavonoid compounds in H295R human adrenocortical carcinoma cells.Toxicol Sci,2004,82:70-79.
17 Canton RF,Sanderson JT,Letcher RJ,et al.Inhibition and induction of aromatase(CYP19)activity by brominated flame retardants in H295R human adrenocortical carcinoma cells.Toxicol Sci,,2005,88:447-455.
18 Brooks JD,Thompson LU.Mammalian lignans and genistein decrease the activities of aromatase and 17β-hydroxysteroid dehydrogenase in MCF-7 cells.J Steroid Biochem Mol Biol,,2005,94:461-467.