劉麗慧,溫 峻,袁 鵬,史祺云,金琨琪,程 威,于 錄*,馮海華*
(1.吉林大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,吉林長春130062;2.吉林大學(xué)人獸共患病研究所人獸共患病研究教育部重點實驗室,吉林長春130062)
金黃色葡萄球菌(S.aureus)是人類常見的病原菌,感染后可以引起肺炎、心內(nèi)膜炎、骨髓炎甚至敗血癥[1]。由于抗生素濫用,S.aureus對多種抗生素產(chǎn)生了耐藥性[2]。特別是近年來出現(xiàn)的社區(qū)獲得性耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(CA-MRSA)[3-4],因其直接或間接的與健康醫(yī)療設(shè)施相關(guān),已成為最重要的公共衛(wèi)生問題之一[5]。
酚可溶性調(diào)控蛋白(Phenol-soluble modulin,PSM)是最新發(fā)現(xiàn)的一種細胞外分泌蛋白,它在不需受體介導(dǎo)的條件下即具有細胞裂解能力,是逃避中性粒細胞的重要毒力因子;PSM還具有趨化功能,并能夠誘導(dǎo)中性粒細胞釋放細胞因子,引發(fā)炎癥反應(yīng)[6-7]。PSM由核基因編碼并且基因成簇存在,可分為 α-肽(-20~25個氨基酸)和 β-肽(-45個氨基酸),具有兩親性 α-螺旋結(jié)構(gòu)。其中,α-肽包括PSM-α1、PSM-α2、PSM-α3和 PSM-α44種 亞 型 ,β-肽由β1和β2組成。David等研究表明,當(dāng)敲除PSM-α后,S.aureus的致病力明顯降低,而敲除PSM-β后未見致病力的明顯變化[8],表明PSM-α是S.aureus致病的主要毒力因子。本實驗串聯(lián)融合表達PSM-α蛋白,采用純化的蛋白刺激健康人的中性粒細胞,通過ELISA檢測IL-1β及IL-8的含量,鑒定其對中性粒細胞的影響,為制備抗體及為S.aureus感染的有效控制和臨床治療奠定基礎(chǔ)。
1.1 主要實驗材料 大腸桿菌BL21(DE3)及表達載體pGEX-4T-1均為本實驗室保存;限制性內(nèi)切酶SalⅠ、Bam HⅠ及T4連接酶均購自TaKaRa公司;質(zhì)粒提取試劑盒及DNA片段純化回收試劑盒購自Axygen;還原型谷胱甘肽(GSH)購自上海鼎國生物技術(shù)有限公司;人中性粒細胞分離液Polymorphprep購自AXIS-SHIELD PoC AS;純化柱及 Glutathione Sepharose 4B購自GE公司;凝血酶購自生工生物工程(上海)有限公司;CCK-8試劑盒購自日本同仁化學(xué)研究所;小鼠抗谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GST)抗體購自長春寶泰克生物科技公司;過氧化物酶標(biāo)記的羊抗小鼠抗體、Hepes緩沖液均購自武漢博士德生物工程有限公司;ELISA試劑盒購自e-Bioscience。
1.2 表達重組質(zhì)粒pGEX-PSM-α的構(gòu)建 根據(jù)GenBank中登錄的PSM-基因序列(BK006301.1),通過 linker將 PSM-α1、PSM-α2、PSM-α3、PSM-α44個基因(圖1)串聯(lián)于pUC-50T載體中(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成),SalⅠ及Bam HⅠ雙酶切目的片段,經(jīng)DNA純化回收試劑盒回收目的片段,連接表達載體pGEX-4T-1,轉(zhuǎn)化感受態(tài)BL21(DE3)。培養(yǎng)后,提取重組質(zhì)粒雙酶切鑒定并測序鑒定。
1.3 PSM-α蛋白表達條件優(yōu)化及鑒定 將重組菌37℃培養(yǎng)至OD600nm值為0.4~0.6,分別加入0.2mM~1mM IPTG,誘導(dǎo)溫度分別為16℃~37℃,轉(zhuǎn)數(shù)分別為180r/min~220r/m in,誘導(dǎo)時間分別為2h~12h,經(jīng)SDS-PAGE分析確定最佳誘導(dǎo)條件。以優(yōu)化條件大量誘導(dǎo)表達蛋白,收集菌體并超聲裂解,離心后將收集沉淀及上清分別進行SDS-PAGE及western blot鑒定。
1.4 PSM-α蛋白純化、酶切及SDS-PAGE鑒定按照Glutathione Sepharose 4B Affinity操作說明書純化表達蛋白、凝血酶酶切(切除GST標(biāo)簽),獲得的蛋白分別進行SDS-PAGE鑒定。
1.5 人中性粒細胞的分離 按照Polymorphprep說明書分離健康人外周靜脈血(EDTA-K2抗凝處理)中性粒細胞,重懸于RPM I-1640培養(yǎng)基中。
1.6 細胞毒性檢測 將分離的中性粒細胞按1×104cells/孔培養(yǎng)于96孔板中,實驗組中加入純化后酶切處理的重組蛋白,使其終濃度分別為10μg/m L、1μg/m L、100ng/m L、10ng/m L,同時設(shè)置空白孔及陰性對照孔,分別培養(yǎng) 2h、4h、6h,根據(jù)CCK-8操作說明書測定不同濃度蛋白對細胞存活率的影響,計算公式為:細胞存活率(%)=(實驗組A均值-空白孔A值)/(對照孔A值-空白孔A均值)×100%。
1.7 ELISA檢測 將分離的中性粒細胞按1.5×105cells/孔培養(yǎng)于96孔板中,實驗組加入純化后酶切處理蛋白,使其終濃度為10μg/m L,置于37℃5%CO2培養(yǎng)6h[9],收集上清,通過ELISA檢測IL-1β及 IL-8的含量(e-Bioscience)。
1.8 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS 13.0對實驗所得數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)分析。
2.1 pGEX-PSM-α表達重組質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定通過人工合成由linker連接編碼PSM-α4個基因(PSM-α1、PSM-α2、PSM-α3、PSM-α4)的串聯(lián)融合基因,并克隆于pGEX-4T-1載體中,構(gòu)建表達重組質(zhì)粒pGEX-PSM-α,經(jīng)SalⅠ及Bam HⅠ雙酶切后,得到306bp目的片段(圖2),測序結(jié)果與預(yù)期相符。
2.2 PSM-α 蛋白 SDS-PAGE及 western blot鑒定 用不同誘導(dǎo)條件誘導(dǎo)表達蛋白,超聲裂解離心后收集沉淀及上清,經(jīng)western blot試驗表明其具有免疫原性(圖 3)。以優(yōu)化條件 1mM IPTG,16℃220r/m in誘導(dǎo)12h,大量表達分子量為36ku的可溶性蛋白。
2.3 PSM-α蛋白純化及酶切結(jié)果 誘導(dǎo)表達后蛋白經(jīng)Glutathione Sepharose 4B親和層析柱純化得到36ku的蛋白,純化后蛋白經(jīng)凝血酶切除GST標(biāo)簽后得到10ku重組蛋白(圖4)。
2.4 細胞毒性檢測結(jié)果 用純化后酶切處理的PSM-α蛋白作用于分離的中性粒細胞,通過CCK-8試劑盒檢測不同蛋白濃度、不同作用時間對細胞存活率的影響(圖5),結(jié)果表明當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?0μg/m L、作用6h后,對細胞的毒性為10%(將該濃度作為該蛋白對細胞的基本無毒濃度)。
2.5 ELISA檢測結(jié)果 采用ELISA方法檢測IL-1β及IL-8,結(jié)果表明PSM-α蛋白刺激中性粒細胞后,空白組IL-8僅為74pg/m L,實驗組IL-8含量平均為918pg/m L,差異極顯著(p<0.01);對照組 IL-1β(16pg/m L)與實驗組(45pg/m L)相比差異不顯著。
PSM-α是CA-MRSA的毒力因子之一,已有報道表皮葡萄球菌能夠引起巨噬細胞系中一些細胞發(fā)生炎癥反應(yīng)[10]。有研究表明,CA-MRSA野生株與PSM-α敲除株相比,其毒力及致病性明顯降低[11]。本實驗從S.aureus致病的主要毒力因子入手,串聯(lián)融合表達了PSM-α。純化后的蛋白可以通過免疫動物獲得特異性抗體,為預(yù)防S.aureus感染提供依據(jù)。此外,研究PSM-α對中性粒細胞的作用,可以從根本上對S.aureus的感染進行控制及治療。
中性粒細胞是最先滲入組織中的白血球,它們通過趨化因子的梯度漸變而隨血流到達感染部位,是清除細菌最重要的吞噬細胞[11],也是天然免疫不可或缺的一部分。在炎癥及敗血型休克中,TNF-α、IL-1β以及IL-6是主要炎性因子,而TNF-α、IL-8是中性粒細胞強烈的化學(xué)引誘物[12]。有研究表明,PSM-α的致病機理是破壞白細胞,因此,在S.aureus逃避宿主天然免疫中PSM-α起到關(guān)鍵作用[6]。本研究通過PSM-α蛋白刺激人的中性粒細胞后,檢測兩種細胞因子的含量顯示,IL-8表達量升高,提示PSM-α是通過趨化中性粒細胞從血循環(huán)到感染或組織損傷部位而引發(fā)機體的炎癥反應(yīng)。
本研究結(jié)果表明,PSM-α能夠刺激中性粒細胞釋放炎性趨化因子,致使機體發(fā)生炎癥,該實驗為更好的控制S.aureus的感染和提高臨床治療效果提供一定的依據(jù)。
[1]Lowy F D.Staphylococcus aureus infections[J].N Engl Med,1998,339:520-532.
[2]Koziel J,Maciag-Gudowska A,M ikolajczyk T,et al.Phagocytosis of Staphylococcus aureus by macrophages exerts cytoprotective effects manifested by the upregulation of antiapoptotic factors[J].PLoSOne,2009,4:e5210.
[3]Adcock P,Pastor P,Medley F,et al.Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in two childcare centers[J].Infect Dis,1998,178:577-580.
[4]Baggett H,Hennessy T,Leman R,et al.An outbreak of community-onset methicillin-resistant Staphylococcus aureus skin infections in southwestern Alaska[J].Infect Control Hosp Epidem iol,2003,24:397-402.
[5]File T.Impact of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus in the hospital setting[J].Cleve Clin JMed,2007,74(Suppl 4):S6-11.
[6]Wang Rong,Braughton K R,Kretschmer D,et al.Identification of novel cytolytic peptides as key virulence determ inants for community-associated MRSA[J].Nat Med,2007,13:1510-1514.
[7]Otto M.Looking toward basic science for potential drug discovery targets against community-associated MRSA[J].Med Res Rev,2009,30:5.
[8]David M Z,Daum R S.Community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus:epidemiology and clinical consequences of an emerging epidem ic[J].Clin M icrobiol Rev,2010,23:616-687.
[9]Mehlin C,Headley C M,K lebanoff S J.An inflammatory polypeptide complex from Staphylococcus epiderm idis:isolation and characterization[J].JExp Med,1999,189:907-918.
[10]Mehlin C,Headley C M,K lebanoff S J.An inflammatory polypeptide complex from Staphylococcus epiderm idis:isolation and characterization[J].Exp Med,1999,189:907-918.
[11]Voyich JM,Braughton K R,Sturdevant D E,et al.Insights into mechanisms used by Staphylococcus aureus to avoid destruction by human neutrophils[J].Immunol,2005,175:3907-3919.
[12]Mantovani A,Sica A,Sozzani S,et al.The chemokine system in diverse forms of macrophage activation and polarization[J].Trends Immunol,2004,25:677-686.