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      柱后補償液相色譜與電霧式檢測器結合測定茶氨酸含量

      2013-09-06 11:04:06周曉紅劉綠葉
      食品工業(yè)科技 2013年1期
      關鍵詞:氨酸檢測器色譜法

      趙 粼,闕 斐,周曉紅,劉綠葉

      (1.浙江經貿職業(yè)技術學院應用工程系,浙江杭州310018;2.戴安中國有限公司上海實驗室,上海200210)

      茶氨酸(theanine,N-乙基-γ-L-谷氨酰胺)是茶葉中特有的非蛋白氨基酸,具有舒緩神經抗疲勞等作用,常作為功能性成分添加到食品飲料中[1]。自1950年日本學者酒戶彌二郎首次從綠茶中分離茶氨酸以來,對于茶氨酸的定性、定量方法,已出現(xiàn)了堿式碳酸銅沉淀法、強酸性陽離子交換樹脂法、薄層色譜法、氣相色譜法和柱前衍生反相高效液相色譜法、直接進樣蒸發(fā)光散射檢測法、高效液相色譜質譜法等[2-8]。茶氨酸屬于紫外區(qū)末端吸收,也無熒光發(fā)射特性,采用低波長紫外檢測時干擾較大,因此,為了提高分析檢測的靈敏度和分離的選擇性,一般將茶氨酸進行衍生化,朱松等[2]采用OPA進行了柱前衍生后紫外檢測器測定,但通常這種方法對衍生試劑的要求高,操作復雜,分析成本也大大增加。為了減少繁瑣的衍生操作,李銀花等[4]報道了采用蒸發(fā)光散射檢測器(ELSD)來直接分析茶氨酸,但該方法通常靈敏度較低,線性范圍較窄,重現(xiàn)性差。本文采用一種新型的高靈敏度通用型檢測器-電霧式檢測器直接進樣分析,消除了溶劑等的干擾,以及溫度變化等引起的基線漂移,采用梯度洗脫與柱后補償進行分析,改善了分離度,降低了檢測限,提高了重現(xiàn)性,能準確進行定量分析,且由于電霧式檢測器響應因子一致原理,可以已知標準品對其他未知成分進行半定量分析,該方法具有簡單、易操作等特點。

      1 材料與方法

      1.1 材料與儀器

      茶葉粗提物 共三批,由杭州茶葉研究院提供;茶氨酸標準品(純度>97%)美國Sepulco公司;乙腈 色譜級,美國Merck公司;三氟乙酸(HPLC級)美國Fluka公司;去離子水 美國Millipore公司;其它未特別注明試劑均為分析純。

      Ultimate DGP3600高效液相色譜儀(含雙三元梯度泵、自動進樣器、柱溫箱、Corona Ultra電霧式檢測器)美國Dionex公司;YB-630空氣壓縮機 上海勇霸有限公司。

      1.2 標準溶液配制及樣品前處理

      準溶液配制:稱取茶氨酸適量,用水超聲溶解,然后稀釋配制成不同濃度的標準工作溶液,4℃避光保存。最終工作溶液濃度為1.0、2.0、5.0、10、20、50μg/mL。

      樣品前處理:準確稱取茶葉粗提物2.0g,用水稀釋定容至10mL,過0.45μm濾膜后,待進樣分析。

      1.3 儀器分析條件

      色譜柱:Acclaim PA2 C18(5μm,4.6mm ×250mm,120?)。流動相(左泵):A:三氟乙酸∶乙腈 =0.1∶100(V/V),B:三氟乙酸∶水 =0.1∶100(V/V),洗脫梯度:0~11min,A 為 100%,11~15min,A 由 100% ~60%,保持5min,然后 A立即回到100%,流速為0.5mL/min;補償流動相(右泵),為100%乙腈,流速0.5mL/min,進樣體積:20μL,柱溫:25℃。

      電霧式檢測器參數(shù)設置:采集頻率:5Hz;過濾模式:None;霧化溫度35℃;霧化氣壓力35.0psi;氮氣流速約4L/min。

      2 結果與分析

      2.1 色譜條件選擇

      2.1.1 色譜柱與流動相的選擇[2-3]由于茶氨酸為強極性化合物,在普通C18反相柱上的保留時間較弱,在死時間處出峰,且普通C18柱通常都不能兼容100%水相,容易出現(xiàn)疏水塌陷。因此,本文選用戴安Acclaim PA2 C18極性官能團改性柱,可以兼容100%水相,同時,耐受較低的酸性環(huán)境。在本方法中,流動相中添加了0.1%三氟乙酸,增加了選擇性[3],使得茶氨酸與其他化合物達到了基線分離。

      2.1.2 采用柱后補償分析 由于電霧式檢測器同質譜儀等質量型檢測器一樣,也是基于霧化原理的檢測器,其響應值依賴于洗脫液的霧化效率,通過增加有機相比例,可以提高霧化效率,從而增加響應值,降低檢出限。同時,基于電霧式檢測器響應因子一致性的原理,在相同的有機相條件下,使得各化合物的響應更趨于一致,可以通過茶氨酸的含量對其他未知化合物進行半定量分析。因此,本方法中把DGP3600高效液相色譜儀左泵設置為分析泵,右泵設為補償泵,左邊的梯度洗脫程序為色譜分離條件,有機相從低到高;右泵為100%的乙腈,作為柱后補償流動相。

      2.1.3 電霧式檢測器參數(shù)優(yōu)化 由于電霧式檢測器的原理及智能化設計,無需對多種參數(shù)進行優(yōu)化,本實驗僅對霧化溫度和采集頻率進行了優(yōu)化。當霧化溫度分別為25、30、35℃,目標化合物響應值略有增加,但基線噪音也隨之增加(見表1),最后為了使霧化溫度與柱溫接近及綜合考慮,最后選擇30℃為霧化溫度;采集頻率分別使用2、5、10Hz進行實驗,同紫外檢測器一樣,采集頻率增加,基線噪音更明顯,同時,數(shù)據(jù)量也大大增加,最后在考慮了滿足峰形等要求下,選擇5Hz作為檢測器采集頻率。

      表1 不同霧化溫度對茶氨酸響應值影響Table 1 The response of Theanine under different nebulization temperature

      2.2 標準曲線與檢出限

      取所配制的系列標準工作溶液,按1.3色譜條件測定a,標準品譜圖(濃度為10μg/mL)見圖1,茶氨酸保留時間為8.247min。以茶氨酸峰面積Y(pA×min)與其對應的濃度X(μg/mL)進行線性回歸分析,結果表明:線性方程為Y=0.1412X-0.0614,相關系數(shù) r=0.9998,線性范圍為1.0~50μg/mL,方法最低檢出限為 0.50μg/mL(以 S/N=3計),定量限為1.50μg/mL(以S/N=10計)。

      圖1 對照品色譜圖Fig.1 The chromatogram of standard

      2.3 重現(xiàn)性與回收率實驗

      重現(xiàn)性實驗,用同一標準品(10μg/mL)分別測定5次,計算得保留時間差小于0.2min,峰面積相對標準偏差(RSD值)為0.62%(n=5),重現(xiàn)性較好。取3份空白樣品,分別添加 5.0、10.0、15.0μg/mL 標準工作溶液各1mL,按照“1.3”節(jié)分析測定條件,進行測定,結果見表 2,計算得回收率為 97.62%~112.13%,平均值為103.10%,RSD為0.48%~1.1%。

      表2 空白樣品加標回收實驗Table 2 Spiked recoveries of a blank sample

      2.4 樣品分析結果

      按照“1.3”節(jié)分析測定條件,對三批樣品分別進行了三次平行測定,結果見表3。樣品分析譜圖見圖2。

      表3 樣品檢測結果Table 3 The results of the sample

      圖2 樣品色譜圖Fig.2 The chromatogram of sample

      3 結論

      本文采用最新型通用型檢測器-電霧式檢測器(CAD)對茶葉粗提物中的茶氨酸進行了分析,同時結合智能雙三元液相色譜系統(tǒng)進行梯度洗脫與柱后補償,取得了較好的分析結果。該方法最低檢出限為0.50μg/mL(以 S/N=3計),定量限為1.50μg/mL(以S/N=10計);空白樣品加標回收率為97.62%~112.13%;重現(xiàn)性實驗表明(n=5),茶氨酸的保留時間差值小于0.2min,峰面積的相對標準偏差(RSD值)為0.62%。此方法大大提高了方法的靈敏度,取得了較好的重現(xiàn)性與回收率結果,同時也避免了對茶氨酸進行衍生等復雜操作。

      [1]肖偉濤,朱小蘭,陳波,等.制備高效液相色譜分離純化茶氨酸對照品[J].中草藥,2004,35(2):148-150.

      [2]朱松,王洪新.OPA柱前衍生高效液相色譜法測定茶氨酸的研究[J].分析檢測,2005,26(2):17-19.

      [3]劉小力,李想.茶葉中茶氨酸的含量方法測定研究[J].食品科學,2009,30(14):281-284.

      [4]李銀花,劉仲華,黃建安,等.高效液相色譜-蒸發(fā)光散射檢測器測定茶葉中茶氨酸[J].茶葉科學,2005,25(2):225-228.

      [5]郭升平.高效液相色譜法測定茶葉中茶氨酸的研究[J].色譜,1996,14(6):463-465.

      [6]朱小蘭,陳波,羅旭彪,等.高效液相色譜法測定茶葉中的茶氨酸[J].色譜,2003,21(4):400-402.

      [7]朱曙東,趙皓.氨基酸的高效液相色譜分析[J].色譜,1994,12(1):20-23.

      [8]Unno T,Suzuki Y,Kaduka T,et al.Metabolism of theanine,γ-glutamylethylamide in rats[J].Journal of Agriculture and Food Chemistry,1999,47(4):1593-1596.

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