高 旭 ,鄭永杰 ,譚陽陽,郭 巖
(1.齊齊哈爾大學 化學與化學工程學院,黑龍江 齊齊哈爾 161006;2.齊齊哈爾市質(zhì)量檢測中心,黑龍江 齊齊哈爾 161006;3.牡丹江出入境檢驗檢疫局,黑龍江 牡丹江 157021;4.哈爾濱工業(yè)大學 理學院,黑龍江 哈爾濱 150001)
免疫球蛋白(IgG)是一種具有抗體活性的球蛋白。IgG不易被胰蛋白酶水解,可以直接滲透腸壁進入血液,因此,IgG對嬰兒的胃腸道具有保護作用[1-3]。國內(nèi)外IgG的檢測方法有:酶聯(lián)免疫吸附法、高效液相色譜法、免疫膠體金法、免疫擴散法、免疫比濁法、免疫電泳法、毛細管電泳法、聚丙烯酰胺凝膠電泳法等。其中高效液相色譜法具有靈敏度高,分析速度快,檢出限低等特點。本實驗是對高效液相色譜測定嬰幼兒乳制品中免疫球蛋白IgG含量的方法進行優(yōu)化。分別對流速、柱溫、流動相的pH值、檢測波長等因素進行優(yōu)化,確定最佳的IgG的液相色譜條件。
KH2PO4、K2HPO4、甘氨酸、HCl、H3PO4、NaOH、乙腈(色譜純)、乙醇(色譜純)、嬰幼兒乳制品、IgG標準品(美國Sigma公司)。
高效液相色譜儀HP1100(美國安捷倫公司);Hi-Trap protein GHP色譜柱(1 mL美國安捷倫公司);Venusil XBP-NH2氨基柱(5μm,100?,4.6×250mm日本島津GL公司);Hjchrom Wonbasil C18柱(5μm,4.6×250mm美國安捷倫公司)。
1.2.1 標準溶液配制 IgG標準儲備液:精確稱取25mg IgG標準品,用0.05mol·L-1磷酸鹽緩沖溶液(pH值為6.5)稀釋到25mL,得到的IgG標準儲備液濃度為1.0mg·mL-1。并用0.05mol·L-1磷酸鹽緩沖溶液(pH值為6.5) 將其稀釋成0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mg·mL-1的標準溶液。
1.2.2 樣品前處理 稱取嬰兒配方奶粉2g,用0.05 mol·L-1磷酸鹽緩沖液溶解,渦旋5min,8000r·min-1、4℃下離心30min去除脂肪,取脫脂乳,用乳酸調(diào)pH值至4.6,超聲后8000r·min-1、4℃下離心40min,去除剩余的油脂和蛋白,取上清液,過0.45μm微孔濾膜待測。
1.2.3 色譜條件 本實驗分別使用 C18柱、XBP-NH2氨基柱和Hi-Trap protein GHP1mL色譜柱對IgG進行分析。Hjchrom Wonbasil C18柱和Venusil XBP-NH2氨基柱所用流動相為0.05mol·L-1、pH值6.5的磷酸鹽緩沖溶液(PBS)和乙腈(95:5);流速1.0mL·min-1;檢測波長280nm;進樣量20μL;柱溫25℃。使用Hi-Trap protein GHP1mL色譜柱分析時,流動相A:0.05mol·L-1磷酸鹽緩沖溶液(pH值6.7),流動相B:0.05mol·L-1甘氨酸鹽緩沖液(pH值2.7);流速0.4mL·min-1;檢測波長280nm;進樣量20μL;柱溫25℃,按表1的梯度條件進行梯度洗脫。
表1 梯度洗脫條件Tab.1 Gradient elution conditions
使用二級管在200~400nm波長范圍內(nèi)對IgG標準品進行全光譜掃描,如圖1所示,免疫球蛋白IgG標準品在220nm和280nm處均有強吸收峰,一般物質(zhì)在220nm處都有吸收,干擾較大。因此,確定其檢測波長為280nm。
圖1 IgG 標準品掃描光譜圖Fig.1 Scan spectrum diagram of IgG standard product
分別用Hjchrom Wonbasil C18柱、Venusil XBPNH2氨基柱及Hi-Trap protein GHP 1mL色譜柱對IgG標準品進行定性定量分析,通過判斷其響應值的大小及分離效果,確定最終檢測所用的分離柱。
用Hjchrom Wonbasil C18柱對免疫球蛋白IgG標準系列進行檢測時,沒有找到IgG的目標峰;用Venusil XBP-NH2氨基柱對免疫球蛋白IgG標準系列進行檢測,雖確定了IgG的目標峰,但響應值極小,當進樣濃度為1.0mg·mL-1時,其響應值不足10mAU,并且分離效果也非常不好;而用Hi-Trap protein GHP 1mL色譜柱對免疫球蛋白IgG標準系列進行檢測時,其分離效果、色譜峰形及響應值均可達到滿意效果,在此色譜條件下的IgG標樣色譜圖見圖2,圖中保留時間tR=11.352的峰為IgG目標峰。因此,選擇Hi-Trap protein GHP 1mL色譜柱為檢測嬰幼兒乳制品中免疫球蛋白IgG含量的分離柱。
圖2 IgG 標準品色譜圖Fig.2 HPLC of IgG standard product
在流速為0.2、0.4、0.6mL·min-1條件下分別對0.2mg·mL-1IgG標準液進行檢測,流速對峰面積影響見表2。
表2 流速選擇對峰面積影響Tab.2 Influence of the flow rate selection for peak area
從表2中得出,流速對峰面積的影響較小,隨著流速的增大峰面積稍有減小的趨勢,流速從0.2 mL·min-1變到0.6mL·min-1,峰面積僅減小3.9 mAU。但在色譜分析中,在不超過柱壓和滿足分離要求的同時,應盡量選擇稍大的流速。此柱所能承受的柱壓上限10bar,當流速為0.6mL·min-1時超過此柱柱壓上限。因此,選擇0.4mL·min-1作為Hi-Trap protein GHP1mL色譜柱檢測時的最佳流速。
在柱溫為25、30、35、45℃條件下分別對0.2mg·mL-1IgG標準液進行檢測,柱溫對峰面積影響見表3。
表3 柱溫選擇對峰面積影響Tab.3 Influence of the column temperature selection for peak area
從表3中得出,當柱溫在25~35℃范圍內(nèi),峰面積隨柱溫的升高稍有增加,但當超過35℃以后,峰面積呈減小趨勢。主要原因是:當溫度超過35℃以后,純度較高的免疫球蛋白IgG的熱穩(wěn)定性將會降低,將有少量IgG會失活,最終導致峰面積減小。在室溫條件下操作就能得到響應值較大目標峰峰值。因此,選擇25℃作為Hi-Trap protein GHP 1mL色譜柱檢測時的最佳柱溫。
Hi-Trap protein G HP 1mL色譜柱的填料為蛋白GSepharose HP,首先固定洗脫液B(0.05mol·L-1甘氨酸鹽緩沖液)pH值,依次調(diào)結(jié)合液A(0.05mol·L-1磷酸鹽緩沖液)pH值為6.1、6.3、6.5、6.7、6.9,然后固定結(jié)合液A的pH值,依次調(diào)洗脫液B的pH值為2.1、2.3、2.5、2.7、2.9,分別在設定條件下對1.0mg·mL-1IgG標準液進行檢測。結(jié)合液pH值與其峰面積的關(guān)系見表4。洗脫液pH值與其峰面積的關(guān)系見表5。
表4 結(jié)合液pH 值選擇對峰面積影響Tab.4 Influence of the pH of combined liquid selection for peak area
由表4得出,在pH值為6.7時,IgG目標峰峰面積最大,說明其結(jié)合能力最強。主要原因是:當洗脫能力相同時,結(jié)合力越強,結(jié)合的IgG量越多,則洗脫下來的IgG量就越多,響應值越大。因此,選擇pH值為6.7的0.05mol·L-1的磷酸鹽緩沖液為Hi-Trap protein GHP1mL色譜柱的結(jié)合液。
表5 洗脫液pH 值選擇對峰面積影響Tab.5 Influence of the pH of eluent liquid selection for peak area
由表5得出,在pH值為2.7時,IgG目標峰峰面積最大,說明其洗脫能力最強。主要原因是:當結(jié)合能力相同時,結(jié)合的IgG量相同,洗脫力越強,洗脫的IgG量越多,響應值越大。因此,選擇pH值為2.7的0.05 mol·L-1甘氨酸鹽緩沖液為Hi-Trap protein GHP1 mL色譜柱的洗脫液。
本實驗主要對免疫球蛋白IgG的高效液相色譜法進行了優(yōu)化,并建立了嬰幼兒乳制品中的IgG提取的前處理方法。實驗對色譜條件中所用的分離柱進行了對比選擇,對所選用的分離柱的流速、柱溫及流動相pH值進行了優(yōu)化。最終確定最佳色譜條件為:Hi-Trap protein GHP 1mL色譜柱,檢測波長280 nm,流速0.4mL·min-1,柱溫25℃,結(jié)合液A為pH值為6.7的0.05mol·L-1的磷酸鹽緩沖液,洗脫液B為pH值為2.7的0.05mol·L-1的甘氨酸鹽緩沖液。
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