趙山山,張秋香,劉小鳴,郝光飛,趙建新,陳永泉,張 灝,陳 衛(wèi)
(江南大學(xué)食品學(xué)院,食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無(wú)錫214122)
乳桿菌長(zhǎng)期以來(lái)被用于食品發(fā)酵工業(yè)中,乳桿菌屬包括超過50個(gè)不同的種,是乳酸菌中最大的屬之一[1-2]。在發(fā)酵過程,如發(fā)酵干酪[3]、香腸[4]、魚[5]、醬油[6]、蔬菜[7]以及食品保藏中乳桿菌經(jīng)常會(huì)遇到高鹽環(huán)境,高鹽濃度引起的高滲透壓會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞在結(jié)構(gòu)和生理上的損傷[8-9],因此乳桿菌在高滲環(huán)境中存活、生長(zhǎng)、代謝的能力對(duì)于工業(yè)生產(chǎn)至關(guān)重要。分離自泡菜中的商業(yè)化菌株植物乳桿菌 ST-Ⅲ(Lactobacillus plantarum ST-Ⅲ)[10],具有很強(qiáng)的耐鹽能力,甚至可以在含鹽量高達(dá)8%的環(huán)境中生長(zhǎng)。通過對(duì)植物乳桿菌ST-Ⅲ的全基因組測(cè)序和基因注釋發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌ST-Ⅲ的基因組中存在多個(gè)與相容性溶質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)體[11],在其獨(dú)有的質(zhì)粒上發(fā)現(xiàn)了基因簇proU[12],proU 含有 3 個(gè)開放閱讀框,分別為 proX(LPST_P0028)、proW(LPST_P0029)及 proV(LPST_P0030)。Kanstantsin等人[13]發(fā)現(xiàn)大腸桿菌的基因簇proU編碼的蛋白通過向細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)運(yùn)甘氨酸甜菜堿、脯氨酸甜菜堿來(lái)應(yīng)對(duì)外界滲透壓的升高。由此推測(cè),植物乳桿菌ST-Ⅲ所具有的較為突出的耐鹽能力可能與其特有的質(zhì)粒上的基因簇proU及其包含的3個(gè)基因有關(guān)。
乳酸乳球菌乳脂亞種比乳酸亞種對(duì)滲透壓力更敏感[14],乳酸亞種可以在鹽濃度為4%(w/v)的環(huán)境下生長(zhǎng),而多數(shù)乳酸乳球菌乳脂亞種只能在鹽濃度為2%及以下的環(huán)境中生長(zhǎng)。為了研究基因簇proU在植物乳桿菌ST-Ⅲ耐鹽中的作用,將其整個(gè)基因簇及其包含單個(gè)基因分別克隆到了耐鹽能力較低的乳酸乳球菌NZ9000(Lactococcus lactis subsp.cremoris NZ9000)中,對(duì)基因簇proU進(jìn)行功能驗(yàn)證。研究與乳桿菌耐鹽能力相關(guān)的基因,為挖掘其益生功能奠定了基礎(chǔ),對(duì)乳桿菌的工業(yè)應(yīng)用具有重要的意義。
表1 引物序列Table 1 Primers sequences
植物乳桿菌ST-Ⅲ、乳酸乳球菌NZ9000及載體pNZ8148 本實(shí)驗(yàn)室保存;KOD plus高保真DNA聚合酶、dNTP Takara公司產(chǎn)品;T4 DNA連接酶和限制性內(nèi)切酶NcoI、BspHI、SacI NEB公司產(chǎn)品;甜菜堿、Nisin Sigma公司產(chǎn)品;氯霉素 上海生物工程有限公司產(chǎn)品;Trizol試劑 Invitrogen公司產(chǎn)品;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒(MiniBEST Bacterial Genomic DNA Extraction Kit Ver.2.0)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(PrimeScript RT reagent kit)Takara公司產(chǎn)品;質(zhì)粒小提取試劑盒 Solarbio公司產(chǎn)品;熒光定量PCR(RT-PCR)試劑盒(Power SYBR Green PCR Master Mix)Applied Biosystems公司產(chǎn)品。
Electropotator 2510型電轉(zhuǎn)化儀、1mm電擊轉(zhuǎn)化杯 Eppendorf公司;ABI-Prism 7300sequence detection system型熒光定量PCR儀 Applied Biosystems公司;UV-2450型分光光度儀 Shimadzu公司。
1.2.1 培養(yǎng)基及生長(zhǎng)條件 植物乳桿菌ST-Ⅲ于MRS培養(yǎng)基中,37℃靜置培養(yǎng) 12h;乳酸乳球菌NZ9000于GM17培養(yǎng)基(M17培養(yǎng)基,0.5%葡萄糖)中,30℃靜置培養(yǎng)12h。耐鹽實(shí)驗(yàn)中重組菌株在化學(xué)成分確定培養(yǎng)基(CDM)[15]中30℃靜置培養(yǎng)22.5h。
1.2.2 基因進(jìn)化分析 通過BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)軟件將 proX(GI:308183779)、proW(GI:308183780)、proV(GI:308183781)序列與GenBank中的序列進(jìn)行比對(duì),并選取相似性較高的序列用ClustalX V2.0進(jìn)行分析,用MEGA3.1進(jìn)行核酸序列同源性分析,NJ法(neighbor joining)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.2.3 質(zhì)粒的構(gòu)建 根據(jù)目的基因proX、proW、proV及proU的序列設(shè)計(jì)引物(表1),以植物乳桿菌ST-Ⅲ的基因組DNA為模板擴(kuò)增得到基因proX、proW和proV,基因的大小分別約為 918、804、1200bp,純化擴(kuò)增產(chǎn)物。質(zhì)粒pNZ8148與proX、proW分別用NcoI和SacI進(jìn)行雙酶切,proU,proV用BspHI和SacI進(jìn)行雙酶切,酶切產(chǎn)物進(jìn)行膠回收后在16℃下過夜進(jìn)行連接反應(yīng)。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至乳酸乳球菌NZ9000,電擊條件為電容25μF,電阻200Ω,電壓2000V,電機(jī)時(shí)間2.5~3.0ms。轉(zhuǎn)化菌液涂布于含有氯霉素的GM17平板,30℃過夜培養(yǎng)。隨機(jī)挑取選轉(zhuǎn)化子,提取質(zhì)粒DNA為模板擴(kuò)增目的基因進(jìn)行驗(yàn)證。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)過純化后,送至上海生物工程有限公司進(jìn)行測(cè)序。
1.2.4 重組菌的誘導(dǎo)表達(dá)及驗(yàn)證 挑取測(cè)序正確的轉(zhuǎn)化子接種到氯霉素終濃為10μg/mL的GM17液體培養(yǎng)基中,30°C靜置培養(yǎng)過夜。按照2%(v/v)接種量轉(zhuǎn)接于含有氯霉素的GM17培養(yǎng)基中,當(dāng)OD600達(dá)到0.5~0.6時(shí),以終濃度為10ng/mL的nisin在30℃誘導(dǎo)6h后[16],5000r/min離心5min收集菌體。液氮研磨菌體后用Trizol試劑提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA后,分別以proX、proW、proV和16S rDNA基因設(shè)計(jì)的RT-PCR引物(表1)進(jìn)行擴(kuò)增。反應(yīng)體系為20μL:SYBR Green PCR 混合液 10μL,正、反向引物各0.5μL,cDNA 或無(wú)菌水(陰性對(duì)照)1μL,無(wú)菌水8μL。RT-PCR 程序?yàn)?50℃ 2min,95℃ 10min,進(jìn)行40個(gè)循環(huán)后95℃ 15s,60℃ 30s。選擇16S rDNA基因?yàn)閮?nèi)參,實(shí)驗(yàn)進(jìn)行3個(gè)生物學(xué)重復(fù),每個(gè)基因分別做3個(gè)平行。
1.2.5 重組菌株耐鹽能力的測(cè)定 重組菌株在10μg/mL氯霉素的CDM液體培養(yǎng)基中,30℃靜置培養(yǎng)。經(jīng)nisin誘導(dǎo)表達(dá)后以2%的接種量分別接入新鮮的含有3%NaCl(w/v)及10ng/mL nisin的CDM培養(yǎng)基,CDM中添加終濃度為1mmol/L的甜菜堿,同時(shí)以不添加甜菜堿的為對(duì)照。每2.5h測(cè)定菌液的吸光值,繪制生長(zhǎng)曲線。
根據(jù)NJ發(fā)構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果見圖1。植物乳桿菌ST-Ⅲ的基因簇proU包含的3個(gè)基因proX、proW、proV均與戊糖乳桿菌 IG1(Lactobacillus peutosus IG1)相似性最高,達(dá)到100%。Ricciardi等人研究[17]發(fā)現(xiàn)戊糖乳桿菌有較高的耐鹽能力,鑒于植物乳桿菌ST-Ⅲ的基因簇proU包含的這3個(gè)基因與戊糖乳桿菌IG1的對(duì)應(yīng)基因發(fā)育地位相近,由此推測(cè)植物乳桿菌ST-Ⅲ的基因簇proU及其包含的3個(gè)基因proX、proW、proV可能是與其耐鹽能力相關(guān)的基因。
圖1 基于目的序列proX、proW、proV的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.1 Neighbour joining phylogenetic tree showing the phylogenetic position of proX,proW,proV
將PCR擴(kuò)增得到的基因proX、proW、proV及proU分別克隆至質(zhì)粒pNZ8148中的多克隆位點(diǎn)上,構(gòu)建得到4個(gè)重組質(zhì)粒:pNZ8148-proX、pNZ8148-proW、pNZ8148-proV及pNZ8148-proU。電擊轉(zhuǎn)化法將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到乳酸乳球菌NZ9000中,在含有氯霉素的GM17抗性平板上隨機(jī)挑選轉(zhuǎn)化子單克隆菌落,抽提質(zhì)粒DNA并進(jìn)行PCR鑒定(圖2)。擴(kuò)增得到的proU基因大小約為3022bp,proX、proW和 proV基因的大小分別約為918、804、1200bp,均與基因?qū)嶋H大小相符合。進(jìn)一步將轉(zhuǎn)化子進(jìn)行測(cè)序,結(jié)果符合預(yù)期(結(jié)果未列出),表明乳酸乳球菌重組表達(dá)質(zhì)粒pNZ8148-proX、pNZ8148-proW、pNZ8148-proV 及pNZ8148-proU構(gòu)建成功。
圖2 重組質(zhì)粒PCR驗(yàn)證Fig.2 PCR identification of recombination plasmids
為了驗(yàn)證插入基因是否在重組菌中表達(dá),以插入空質(zhì)粒的乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)為對(duì)照菌株,利用RT-PCR技術(shù)檢測(cè)proX、proW、proV在乳酸乳球菌中的表達(dá)量。如圖3所示,基因proX、proW、proV在乳酸乳球菌中經(jīng)nisin誘導(dǎo)后的表達(dá)量與對(duì)照菌株相比分別提高了197、106、170倍。而將整個(gè)proU基因簇克隆表達(dá)到乳酸菌球菌NZ9000中,表達(dá)量與對(duì)照菌株的表達(dá)量相比提高了113倍。由此說明,經(jīng)過nisin誘導(dǎo),基因proX、proW、proV及proU在乳酸乳球菌中成功表達(dá)。
為驗(yàn)證基因簇proU在耐鹽中的作用,在鹽濃度為3%的CDM中測(cè)定重組菌株的生長(zhǎng)曲線。由圖4可以看出:原始菌株乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)無(wú)論在是否含有甜菜堿的CDM中均不生長(zhǎng);在不含有甜菜堿的CDM中培養(yǎng)的重組菌株的生長(zhǎng)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于在含有甜菜堿的CDM中培養(yǎng)的重組菌株;在甜菜堿存在下培養(yǎng)的重組菌株乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148-proU)、乳酸乳球菌 NZ9000(pNZ8148-proX)、乳酸乳球菌 NZ9000(pNZ8148-proW)、乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148-proV)它們的耐鹽能力均比乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)的耐鹽能力強(qiáng)。由此可見,誘導(dǎo)表達(dá)與甜菜堿轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)的基因簇proU及其包含的基因,均提高了重組菌株的耐鹽能力,使原本不能在鹽濃度為3%的CDM培養(yǎng)基中生長(zhǎng)的乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)可以在3%鹽濃度下生長(zhǎng),并且重組菌株通過轉(zhuǎn)運(yùn)甜菜堿提高了菌株的耐鹽能力。
圖3 qRT-PCR分析重組菌株誘導(dǎo)后proX、proW、proV、proU基因的相對(duì)表達(dá)量Fig.3 qRT-PCR analysis of proX、proW、proV、proU genes transcription
圖4 重組菌株耐鹽生長(zhǎng)曲線。Fig.4 Growth curve of recombinant strain in CDM with salt
插入基因簇proU及其包含的3個(gè)基因proX,proW,proV的重組菌株乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148-proU)、NZ9000(pNZ8148-proX)、NZ9000(pNZ8148-proW)及NZ9000(pNZ8148-proV)的耐鹽能力均優(yōu)于對(duì)照菌株乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148),均能夠在含有甜菜堿的鹽濃度為3%的環(huán)境下生長(zhǎng);且插入完整基因簇proU的重組菌株耐鹽能力最強(qiáng),說明整個(gè)基因簇包含的3個(gè)基因同時(shí)存在時(shí)更有利于提高對(duì)乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148)的耐鹽能力。插入基因proW和proV的重組菌株耐鹽能力次之,插入基因proX的重組菌株耐鹽能力最弱,但均優(yōu)于對(duì)照菌株乳酸乳球菌NZ9000(pNZ8148),說明插入基因簇proU包含的單個(gè)基因也可提高乳酸乳球菌NZ9000的耐鹽能力。綜上所述,本研究結(jié)果表明來(lái)源于植物乳桿菌ST-Ⅲ特有質(zhì)粒上的基因簇proU及其包含的3個(gè)基因是與耐鹽相關(guān)的基因。
[1]Tannock G W.A special fondness for lactobacilli[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70:3189-3194.
[2]Stiles M E,Holzapfel W H.Lactic acid bacteria of foods and their currenttaxonomy[J].International Journal of Food Microbiology,1997,36:1-29.
[3]Ercolini D,Hill P J,Dodd C E.Bacterial community structure and location in Stilton cheese[J].Applied and Environmental Microbiology,2003,69:3540-3548.
[4]Tran K,May B K,Smooker P M,et al.Distribution and genetic diversity of lactic acid bacteria from traditional fermented sausage[J].Food Research International,2011,44:338-344.
[5]Noonpakdee W,Jumriangrit P,Wittayakom K,et al.Twopeptide bacteriocin from Lactobacillus plantarum PMU 33 strain isolated from som-fak,a Thai low salt fermented fish product[J].Asia Pacific Journal of Molecular Biology and Biotechnology,2009,17:19-25.
[6]Tanaka Y,Watanabe J,Mogi Y.Monitoring of the microbial communities involved in the soy sauce manufacturing process by PCR-denaturing gradientgelelectrophoresis[J].Food Microbiology,2012,31:100-106.
[7]Pérez- Díaz I,McFeeters R.Preparation of a Lactobacillus plantarum starter culture for cucumber fermentations that can meet kosher guidelines[J].Journal of Food Science,2011,76:M120-M123.
[8]Prasad J,McJarrow P,Gopal P.Heat and osmotic stress responses of probiotic Lactobacillus rhamnosus HN001(DR20)in relation to viability after drying[J].Applied and environmental microbiology,2003,69:917-925.
[9]Zhang Y H,Zhang Y P,Zhu Y,et al.Proteomic Analyses To Reveal the Protective Role of Glutathione in Resistance of Lactococcuslactis to Osmotic Stress[J] .Applied and Environmental Microbiology,2010,76:3177-3186.
[10]張灝,華偉,郭本恒,等.乳桿菌耐膽汁,降解結(jié)合膽鹽和同化膽固醇能力的研究[J].工業(yè)微生物,2003,33:23-25.
[11]Wang Y,Chen C,Ai L,et al.Complete genome sequence of the probiotic Lactobacillus plantarum ST - III[J].Journal of Bacteriology,2011,193:313-314.
[12]Chen C,Ai L,Zhou F,et al.Complete nucleotide sequence of plasmid pST-III from Lactobacillus plantarum ST-III[J].Plasmid,2012,67:236-244.
[13]Kavalchuk K,Madhusudan S,Schnetz K.RNase III initiates rapid degradation of proU mRNA upon hypo-osmotic stress in Escherichia coli[J].RNA Biology,2012,9:98-109.
[14]Obis D,Guillot A,Mistou M Y.Tolerance to high osmolality of Lactococcus lactis subsp lactis and cremoris is related to the activity of a betaine transport system[J].Fems Microbiol Lett,2001,202:39-44.
[15]Robert H,Le Marrec C,Blanco C,et al.Glycine betaine,carnitine,and choline enhance salinity tolerance and prevent the accumulation of sodium to a levelinhibiting growth of Tetragenococcus halophila[J].Applied and Environmental Microbiology,2000,66:509-517.
[16]Pavan S,Hols P,Delcour J,et al.Adaptation of the nisincontrolled expression system in Lactobacillus plantarum:a tool to study in vivo biological effects[J].Applied and Environmental Microbiology,2000,66:4427-4432.
[17]Ricciardi A,Parente E,Guidone A,et al.Genotypic diversity of stress response in Lactobacillusplantarum,Lactobacillus paraplantarum and Lactobacillus pentosus[J].International Journal of Food Microbiology,2012,157:278-285.