孫 哲,孫 瑤,王海寬
(工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457)
近年來(lái)我國(guó)心血管疾病的發(fā)病率大大增加,特別是腦血栓嚴(yán)重威脅我國(guó)人民的生命安全.因此如何防治,如何提高血栓病的防治水平,是醫(yī)藥學(xué)界亟需解決的問(wèn)題.目前溶栓治療方法主要有 3種:外科手術(shù)療法、器械療法、藥物療法[1–2].其中,外科手術(shù)見(jiàn)效快,可是手術(shù)操作復(fù)雜、費(fèi)用高、有創(chuàng)傷、術(shù)后復(fù)發(fā)率也高[3];器械療法受到一定的設(shè)備局限,其本身不影響血栓的凝血機(jī)制,并且作用時(shí)間短,所以需要與其他療法結(jié)合,一般不單獨(dú)使用;而藥物溶栓法是通過(guò)使用溶栓藥物,使血凝塊中的纖維蛋白降解成可溶物質(zhì)促使循環(huán)再通[4–5],它與外科手術(shù)相比費(fèi)用低,與保守療法相比死亡率低.因此,研究廉價(jià)、溶栓效果好且安全的溶栓藥物具有重大的現(xiàn)實(shí)意義.
溶栓藥物來(lái)源廣泛,動(dòng)物、植物、微生物都有產(chǎn)纖溶酶的相關(guān)報(bào)道.自1987年日本學(xué)者Sumi等[6]發(fā)現(xiàn)納豆激酶(Nattokinase,NK)以后,通過(guò)微生物發(fā)酵方式獲得廉價(jià)、高效纖溶酶的方法引起業(yè)內(nèi)人士的興趣.1996年 Kim 等[7]從韓國(guó)傳統(tǒng)食品豆醬中分離到有纖溶活性的蛋白酶,命名為枯草激酶(CK).杜連祥等[8]從南方小酒藥中發(fā)現(xiàn)具有纖溶酶活性的根霉(Rhizopus chiensis)12#,根霉纖溶酶僅作用于枯草桿菌蛋白酶和胰蛋白酶的底物,而不作用于凝血酶、尿激酶和胰蛋白酶的特異性合成底物,底物專一性好.2011年,Choi等[9]從蛹蟲(chóng)草中分離得到纖溶活性很強(qiáng)的溶栓酶,相對(duì)分子質(zhì)量為 3.4×104,能充分降解血纖維蛋白的 α、β和 γ–γ鏈.同年,Mander等[10]從鏈霉菌(Streptomyces sp. CS624)中分離得到一種纖溶酶,其相對(duì)分子質(zhì)量較小,為 1.8×104,N 端 15氨基酸序列為APNVDAIYLPQYRLS,與其他纖溶酶報(bào)道不同.2012年Rashad等[11]從生長(zhǎng)在葵花籽油蛋糕上的念珠菌中分離得到一種高相對(duì)分子質(zhì)量7.244×104的纖溶酶,被 Cu2+、Hg2+和碘乙酸完全抑制,但酶活力較強(qiáng),是一種有潛力的溶栓藥劑.
本實(shí)驗(yàn)室從酒曲中分離出一株可降解纖維蛋白菌株,經(jīng)鑒定為菊芋小孢根霉.前期實(shí)驗(yàn)工作已經(jīng)證明該菌株所產(chǎn)蛋白酶為纖溶酶[1,12].纖維蛋白平板實(shí)驗(yàn)證明具有很強(qiáng)纖溶活性,作為新一代溶栓抗凝藥物具有開(kāi)發(fā)潛能.由于菊芋小孢根霉在初始固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基上產(chǎn)酶量?jī)H為(83.46±8.34)U/g,產(chǎn)量低,因而本文對(duì)菊芋小孢根霉的固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)工藝進(jìn)行研究,旨在提高酶產(chǎn)量.
由本實(shí)驗(yàn)室從酒曲中分離得到菊芋小孢霉Rhizopus microspores var. tuberosus[1].
牛血纖維蛋白原、凝血酶和瓊脂糖,Sigma公司;其余試劑均為分析純或生化試劑.
斜面培養(yǎng)基:PDA培養(yǎng)基.保存菌種接入斜面培養(yǎng)基,29,℃恒溫培養(yǎng)5,d.
發(fā)酵培養(yǎng)基:麩皮 25,g,豆粕 25,g,加水 50,mL,121,℃滅菌 20,min.用無(wú)菌水將斜面上的孢子洗下,轉(zhuǎn)入裝有玻璃珠的無(wú)菌生理鹽水中,振蕩,計(jì)數(shù).用滅菌后的雙層紗布過(guò)濾得到孢子懸液,將其接入滅過(guò)菌的發(fā)酵培養(yǎng)基中(孢子濃度 106,g-1),29,℃恒溫培養(yǎng) 72,h.
發(fā)酵結(jié)束后,按 1∶5的比例向發(fā)酵物中加入無(wú)菌生理鹽水,充分振蕩,使發(fā)酵物均勻分散到生理鹽水中,4,℃浸提 5,h之后將浸提物在 8,000,r/min、4,℃條件下離心20,min,取上清液即為粗酶液.
纖維蛋白平板法,參考Astrup等[13]與Walton[14]方法,用尿激酶標(biāo)準(zhǔn)品作纖溶酶活性標(biāo)準(zhǔn)曲線,37,℃保溫 16,h,其回歸方程為 Y=1.624,X–1.666,R2=0.994,其中 Y為酶活力(U/mL)的常用對(duì)數(shù),X為溶圈最大與最小直徑乘積的常用對(duì)數(shù).取待測(cè)樣品10,μL點(diǎn)在血纖維蛋白平板上,37,℃保溫 16,h后測(cè)定溶圈最大與最小直徑,通過(guò)上述回歸方程計(jì)算待測(cè)樣品酶活力,再換算出每克干基酶活力(U/g).
2.1.1 碳源的選擇
分別取麩皮、玉米粉、大米粉、面粉25,g,與25,g豆粕配制成不同碳源的發(fā)酵培養(yǎng)基,加水 50,mL,拌勻,29,℃發(fā)酵 72,h.按 1.4方法測(cè)酶活力,結(jié)果見(jiàn)表1.結(jié)果表明,麩皮作為碳源時(shí)酶活力最高,其活力為(134.57±13.26)U/g.
2.1.2 氮源的選擇
分別取大豆粉、豆粕粉、花生餅粉、棉子餅粉25,g作為氮源,另加入 25,g麩皮配制成不同氮源的培養(yǎng)基,其他條件同上,測(cè)得酶活力見(jiàn)表 2.結(jié)果表明,豆粕粉作為氮源時(shí)酶活力最高,為(201.46±20.14)U/g.
2.1.3 碳氮比的確定
以麩皮為碳源,豆粕粉為氮源,按比例1∶1、1∶2、1∶3、2∶1、3∶1分別配制總量為 50,g的培養(yǎng)基,其他條件同上.不同碳氮比對(duì)產(chǎn)酶的影響如圖 1所示. 結(jié)果表明,當(dāng)碳氮比為2∶1時(shí)產(chǎn)酶量達(dá)到最大,其活力為(254.64±25.32)U/g.
表2 不同氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響Tab.2 Effect of nitrogen source on production of fibrinolytic enzyme
圖1 不同碳氮比對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.1 Effect of different carbon nitrogen ratio on production of fibrinolytic enzyme
2.1.4 培養(yǎng)基含水量對(duì)產(chǎn)酶的影響
水是生命生長(zhǎng)所必需的,菊芋小孢根霉發(fā)酵也不例外,尤其是好氧固態(tài)發(fā)酵對(duì)水量的要求相對(duì)更高,少量的水不能保證微生物體內(nèi)生化反應(yīng)的正常進(jìn)行,也就不能大量產(chǎn)酶;相反,水過(guò)量會(huì)使培養(yǎng)基黏稠,氧供應(yīng)困難,不利于菌體生長(zhǎng).為確定最適宜的水含量,本實(shí)驗(yàn)向每克干基中分別加水 0.5、0.75、1.00、1.25、1.5、1.75、2.00,mL,發(fā)酵后測(cè)其活力,結(jié)果如圖2所示.結(jié)果表明:培養(yǎng)基中加水 1,mL/g(干基)酶產(chǎn)量最高,最高活力為(289.76±28.98)U/g.
圖2 不同含水量對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.2 Effect of moisture of culture on production of fibrinolytic enzyme
2.1.5 培養(yǎng)基初始pH對(duì)產(chǎn)纖溶酶的影響
用HCl或者NaOH調(diào)節(jié)培養(yǎng)基,使pH在4~10范圍內(nèi),發(fā)酵后分別測(cè)酶活力,結(jié)果如圖 3所示.結(jié)果表明,當(dāng)發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH為5時(shí),酶活力最高,達(dá)到(302.46±15.12)U/g.由于原始培養(yǎng)基 pH 為5.3,與最適pH接近,所以pH不用調(diào)節(jié).
圖3 不同發(fā)酵初始pH對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.3 Effect of initial pH on production of fibrinolytic enzyme
2.1.6 無(wú)機(jī)鹽對(duì)產(chǎn)酶的影響
微生物在生長(zhǎng)和產(chǎn)酶的過(guò)程中需要某些無(wú)機(jī)鹽和微量元素作為各種酶的激活劑或輔助因子,這些物質(zhì)一般在較低且合適的濃度下才對(duì)產(chǎn)酶起促進(jìn)作用,而在較高濃度下將會(huì)抑制產(chǎn)酶,因而很有必要研究常見(jiàn)無(wú)機(jī)鹽對(duì)產(chǎn)酶的影響,且需要確定其最適濃度.
選擇 CaCl2、MnSO4、KCl、MgSO4、(NH4)2SO4、NaCl、CuSO4、FeSO4進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),考察這些無(wú)機(jī)鹽對(duì)菊芋小孢根霉產(chǎn)生纖溶酶的促進(jìn)作用.加入量為10,mmol/kg,結(jié)果見(jiàn)表3.
表3 無(wú)機(jī)鹽對(duì)產(chǎn)酶的影響Tab.3 Effect of inorganic salts on production of fibrinolytic enzyme
結(jié)果表明,MgSO4、(NH4)2SO4、FeSO4對(duì)產(chǎn)酶有很好的促進(jìn)作用,故選擇這3種無(wú)機(jī)鹽進(jìn)行正交優(yōu)化實(shí)驗(yàn),確定其最佳加入量.正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表 4,通過(guò)分析可知,最優(yōu)無(wú)機(jī)鹽配比為 MgSO410,mmol/kg,(NH4)2,SO4200,mmol/kg,F(xiàn)eSO43,mmol/g;觀察R值,可知(NH4)2SO4對(duì)產(chǎn)酶影響最大.
表4 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Tab.4 ,Orthogonal experiment results
在以上實(shí)驗(yàn)確定的最佳培養(yǎng)基(麩皮與豆粕比例 2∶1、初始 pH,5.0、含水量(干基)1,mL/g、MgSO410,mmol/kg、(NH4)2,SO4200,mmol/kg、FeSO43,mmol/kg)條件下進(jìn)行以下實(shí)驗(yàn).
2.2.1 接種量對(duì)產(chǎn)酶的影響
向每克培養(yǎng)基中分別接入 2×106、6×106、107個(gè)孢子,測(cè)定酶活力的結(jié)果分別為(386.48±19.33)U/g、(468.34±23.42)U/g 和(349.58±17.48)U/g,表明接種量為 6×106,g-1時(shí)酶活力最高,為(468.34±23.41)U/g.
2.2.2 發(fā)酵時(shí)間對(duì)產(chǎn)酶的影響
在以上最佳條件下,分別發(fā)酵 48、60、72、80,h,結(jié)果如圖4所示.結(jié)果表明:發(fā)酵時(shí)間達(dá)到72,h產(chǎn)酶量最大,為(588.54±29.42)U/g.
圖4 發(fā)酵時(shí)間對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.4 Effect of fermentation time on production of fibrinolytic enzyme
2.2.3 發(fā)酵溫度對(duì)產(chǎn)酶的影響
在以上最佳發(fā)酵條件下,將配好的發(fā)酵培養(yǎng)基分別放置在 24、29、33、37、42,℃恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行發(fā)酵,72,h后分別測(cè)酶活力,結(jié)果如圖 5所示.結(jié)果表明:最佳發(fā)酵溫度為 29,℃,最高酶活力為(654.19±32.71)U/g.
圖5 發(fā)酵溫度對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.5 Effect of temperature on production of fibrinolytic enzyme
2.2.4 培養(yǎng)基厚度對(duì)產(chǎn)酶的影響
在以上最佳條件下,配制厚度分別為 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0,cm 的固態(tài)培養(yǎng)基,考察培養(yǎng)基厚度對(duì)產(chǎn)酶的影響,結(jié)果如圖 6所示.結(jié)果表明:當(dāng)培養(yǎng)基厚度為 2,cm 時(shí)產(chǎn)酶量最大,達(dá)到(668.76±33.38)U/g.
圖6 培養(yǎng)基厚度對(duì)產(chǎn)酶的影響Fig.6 Effect of medium thickness on production of fibrinolytic enzyme
在以上實(shí)驗(yàn)確定的最佳培養(yǎng)基(麩皮與豆粕比例2∶1,初始 pH,5.0,含水量(干基)1,mL/g,MgSO410,mmol/kg,(NH4)2SO4,200,mmol/kg,F(xiàn)eSO4,3,mmol/kg)及最適培養(yǎng)條件(接種量 6×106,g-1,培養(yǎng)基厚度2,cm,29,℃恒溫發(fā)酵 72,h)下發(fā)酵菊芋小孢根霉,測(cè)得平均酶活力為(684.39±34.22)U/g,是未優(yōu)化條件下產(chǎn)酶量的8.2倍.
菊芋小孢根霉最適發(fā)酵培養(yǎng)基配料組成及培養(yǎng)條件:麩皮與豆粕的比例為 2∶1;含水量(干基)為1,mL/g;初始pH,5.0,由于與原始pH接近,故不用調(diào)節(jié);無(wú)機(jī)鹽加入量為 MgSO4,10,mmol/kg,(NH4)2SO4200,mmol/kg,F(xiàn)eSO43,mmol/kg,其中(NH4)2,SO4對(duì)產(chǎn)酶影響最大;孢子最佳接入量為 6×106,g-1,發(fā)酵時(shí)間為 72,h,發(fā)酵溫度 29,℃,培養(yǎng)基厚度 2,cm.在最佳條件產(chǎn)酶量大幅度提高,從開(kāi)始的(83.46±8.34)U/g提高到(684.39±34.22)U/g,效果顯著,為進(jìn)一步放大探索工業(yè)化產(chǎn)酶方法奠定了基礎(chǔ).
[1] 曹興南,王海寬,孫巖,等. 一株來(lái)源于酒曲的纖溶酶產(chǎn)生菌的鑒定及其酶學(xué)性質(zhì)[J]. 天津科技大學(xué)學(xué)報(bào),2011,26(5):13-18.
[2] 黃繼林. 腦血栓溶栓療法的現(xiàn)狀與進(jìn)展[J]. 血栓與止血學(xué),2001,22(5):214-216.
[3] Kinsara A J,Al-Bogami S. Prosthetic valve thrombosiscase report and literature review[J]. European Journal of Internal Medicine,2003,14(7):438-440.
[4] Khan I A,Gowda R M. Clinical perspectives and therapeutics of thrombolysis[J]. International Journal of Cardiology,2003,91(2/3):115-127.
[5] 李鶴,郝曉元,雷田香,等. 中藥抗血栓的實(shí)驗(yàn)研究進(jìn)展[J]. 湖南中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2006(3):63-64.
[6] Sumi H,Hamada H,Tsushima H,et al. A novel fibrinolytic enzyme(nattokinase)in the vegetable cheese Natto;a typical and popular soybean food in the Japanese diet[J]. Experientia,1987,43(10):1110-1111.
[7] Kim W,Choi K,Kim Y,et al. Purification and characterization of a fibrinolytic enzyme produced from Bacillus sp. strain CK 11-4 screened from Chungkook-Jang[J]. Applied and Environmental Microbiology ,1996,62(7):2482-2488.
[8] Liu Xiaolan,Du Lianxiang,Lu Fuping,et al. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme from Rhizopus chinensis 12[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2005,67(2):209-214.
[9] Choi D,Cha W S,Park N,et al. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme from fruiting bodies of Korean Cordyceps militaris[J].Bioresource Technology,2011,102(3):3279-3285.
[10] Mander P,Cho S S,Simkhada J R,et al. A low molecular weight chymotrypsin-like novel fibrinolytic enzyme from Streptomyces sp. CS624[J]. Process Biochemistry,2011,46(7):1449-1455.
[11] Rashad M M. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme by Candida Guilliermondii grown on dunflower oil cake[J]. Journal of Applied Sciences Research,2012,8:635-645.
[12] 曹興南. 菊芋小孢根霉產(chǎn)纖溶酶的發(fā)酵工藝和純化研究[D]. 天津:天津科技大學(xué),2012:37-42.
[13] Astrup T ,Müllertz S. The fibrin plate method for estimating fibrinolytic activity[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics,1952,40(2):346-351.
[14] Walton P L. An improved fibrin plate method for the assay of plasminogen activators[J]. Clinica Chimica Acta,1966,13(5):680-684.