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      海洋低溫β-半乳糖苷酶菌株篩選、鑒定及酶的分離純化

      2013-05-05 11:27:34崔愛萍遲乃玉張慶芳
      食品與發(fā)酵工業(yè) 2013年2期
      關(guān)鍵詞:半乳糖乳糖電泳

      崔愛萍,遲乃玉,張慶芳

      1(大連大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,遼寧大連,116622)2(遼寧省海洋微生物工程技術(shù)研究中心,遼寧大連,116622)

      β-半乳糖苷酶(β-galactosidase)常簡稱為乳糖酶,廣泛存在于植物、動(dòng)物和微生物中。此酶最初主要應(yīng)用于乳品工業(yè)中將轉(zhuǎn)化乳糖為單糖,生產(chǎn)低乳糖奶,以緩解乳糖不耐癥[1]。目前可以用于制備低聚半乳糖,在食品工業(yè)用于飲料、冰淇淋、糖果、奶粉、口服液等[2-4],還可以作為腸道內(nèi)雙歧桿菌的增殖因子[5-7],有效提高人體各項(xiàng)機(jī)能。

      在低溫條件下,低溫酶仍具有較高酶活,相較中高溫酶該低溫酶制劑可以降低生產(chǎn)成本,減少工藝流程,提高生產(chǎn)效率,增加經(jīng)濟(jì)效益,改善產(chǎn)品質(zhì)量。低溫β-半乳糖苷酶大多是由低溫微生物產(chǎn)生,它們主要分布在極端環(huán)境中并經(jīng)過長期馴化。目前已經(jīng)從南極[8-12]、日本北海道[13]等地分離到產(chǎn)低溫 β-半乳糖苷酶的菌株,研究發(fā)現(xiàn)大多數(shù)低溫β-半乳糖苷酶產(chǎn)生菌為假交替單胞菌和節(jié)桿菌屬的菌株。篩選得到的菌株為土生拉烏爾菌,目前還未見有關(guān)該菌產(chǎn)β-半乳糖苷酶的報(bào)道。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      樣品由國家海洋環(huán)境檢測中心采自黃海海域123.396°E,36.701 4°N,深度 6 ~50 m 海泥。

      ONPG(鄰硝基苯-β-D-半乳糖苷)、x-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D半乳糖苷)購自上海生工,其余均為國產(chǎn)分析純。

      富集培養(yǎng)基:乳糖 20 g,NaCl 5 g,蒸餾水 1 L,pH 7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌30 min。

      平板篩選培養(yǎng)基:乳糖10 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,瓊脂 20 g,蒸餾水 1 L,pH7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌30 min,暗處涂布濃度為20 mg/mL的 x-gal溶液[14]。

      平板活化培養(yǎng)基:乳糖20 g,蛋白胨10 g,NaCl g,蒸餾水1 L,pH 7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌30 min。

      種子培養(yǎng)基:乳糖20 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,蒸餾水 1L,pH 7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌 30 min。

      發(fā)酵培養(yǎng)基:乳糖20 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,蒸餾水 1L,pH 7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌 30 min。

      菌種保藏培養(yǎng)基:牛肉膏20 g,酵母膏10 g,NaCl 5 g,蒸餾水1L,pH 7.0;1 ×105Pa,121℃滅菌30 min。

      1.2 儀器與設(shè)備

      UV-1200型紫外可見分光光度計(jì)(配有寬波長高精度AD轉(zhuǎn)換器),上海美譜達(dá)儀器有限公司;JY98-3D超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)(配有不同功率變幅操作系統(tǒng)),寧波新芝生物科技有限公司;HD-4電腦核酸蛋白檢測儀(配有254、280 nm數(shù)顯和80 μL數(shù)顯),上海滬西分析儀器有限公司;CBS-B程控多功能自動(dòng)部份收集器(配有微處理器控制和多容量收集裝置),上海滬西分析儀器有限公司。

      1.3 方法

      1.3.1 菌株篩選

      10 g海泥,90 mL無菌水,加入乳糖作為唯一碳源,20℃低溫振蕩培養(yǎng)30 h,無菌水對(duì)富集上清液進(jìn)行梯度稀釋,均勻涂布到含有x-gal的平板篩選培養(yǎng)基上,20℃培養(yǎng)30 h。挑取顯藍(lán)色菌落(如無藍(lán)色顯示,4℃隔夜放置),在無x-gal的平板篩選培養(yǎng)基繼續(xù)劃線純化,分別挑取單菌落接種于液體培養(yǎng)基20℃振蕩培養(yǎng)30 h,測定β-半乳糖苷酶活性并篩選酶活最高的菌株。

      1.3.2 β-半乳糖苷酶粗酶液的制備

      取發(fā)酵液4℃離心(6 000 r/min)30 min,pH7.0磷酸緩沖液沖洗,離心,重復(fù)2次,離心,加pH7.0磷酸緩沖液至與發(fā)酵液相同體積,冰水浴超聲處理(500 W,工作 1 s,間歇2 s,10 min),4℃離心(8 000 r/min)30 min,得到上清液,即為β-半乳糖苷酶粗酶液。

      1.3.3 β-半乳糖苷酶酶活測定方法

      β-半乳糖苷酶粗酶液用pH 7.0磷酸緩沖液適當(dāng)稀釋,取0.5 mL稀釋粗酶液加入1.5 mL0.25%鄰硝基苯-β-D-半乳糖苷(oNPG),25℃反應(yīng)10 min,加入2 mL.1 mol/L NaCO3終止反應(yīng)。測420 nm處吸光值,計(jì)算酶活力。對(duì)照組為加入oNPG和NaCO3,最后加粗酶液。

      酶活力定義:按照β-半乳糖苷酶酶活力測定方法,每分鐘分解ONPG生成1 μmol oNP的酶量為1個(gè)酶活單位(U)。

      1.3.4 菌種鑒定方法

      1.3.4.1 形態(tài)學(xué)觀察

      在平板培養(yǎng)基上觀察菌落形狀、顏色、大小等形態(tài)學(xué)特征,通過不同染色方法在光學(xué)顯微鏡(10×100)下觀察菌體形態(tài)。

      1.3.4.2 生理生化鑒定方法

      參照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊》(2001年)相關(guān)內(nèi)容,對(duì)該菌種進(jìn)行苯丙氨酸脫氫實(shí)驗(yàn)、H2S實(shí)驗(yàn)、乳糖水解實(shí)驗(yàn)、檸檬酸鹽實(shí)驗(yàn)、吲哚試驗(yàn)、V-P實(shí)驗(yàn)、尿素水解實(shí)驗(yàn)、賴氨酸脫羧酶實(shí)驗(yàn)。

      1.3.4.3 分子生物學(xué)鑒定方法

      采用酚氯仿抽提法提取菌株DNA。應(yīng)用16S rDNA兩端保守區(qū)域設(shè)計(jì)引物:Forward primer P1(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和 Revese primer P2(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增。擴(kuò)增反應(yīng)體系 Ex Taq(5 U/μL)0.25 μL,Buffer 5.0 μL,dNTP mixture 5.0 μL,P1 primer 1.0 μL,P2 primer 1.0 μL,補(bǔ)加 ddH2O 至 50 μL。擴(kuò)增反應(yīng)條件為 94℃預(yù)變性5 min,1個(gè)循環(huán);94℃變性1 min,55℃復(fù)性1 min,72℃延伸1.5 min,進(jìn)行30個(gè)循環(huán);最后72℃延伸5 min,1個(gè)循環(huán)。PCR得到的擴(kuò)增產(chǎn)物送交大連寶生物工程有限公司測序。得到含有1 492 bp的16S rDNA核苷酸序列,登陸NCBI,輸入GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行blast比對(duì),獲取與其核酸序列相似度高的菌種。采用MEGA5軟件進(jìn)行多序列匹配比對(duì),計(jì)算相近序列之間的進(jìn)化距離,利用Neighbor-Joining構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

      1.3.5 酶分離純化

      1.3.5.1 (NH4)2SO4分級(jí)沉淀

      在粗酶液中加入飽和度為10%~80%的(NH4)2SO4溶液,4℃鹽析12 h,蛋白沉淀用 pH 7.0磷酸緩沖液溶解,分別測定每個(gè)梯度鹽析得到的沉淀酶活,最后收集含有酶活性的蛋白沉淀溶解進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

      1.3.5.2 透析和超濾

      (NH4)2SO4沉淀溶解得到的酶液裝入預(yù)先處理好的透析袋中,4℃透析,用硝酸鹽溶液檢測透析袋外液無沉淀產(chǎn)生除去NaCl,并同時(shí)除去小分子物質(zhì)和金屬離子。將透析完成的樣品轉(zhuǎn)入截留分子量為10 kDa,經(jīng)過預(yù)處理的超濾管超濾,4℃,5 000 r/min離心30 min,移液槍小心取出濃縮液,4℃保藏備用,取部分溶于磷酸緩沖液,計(jì)算回收率。

      1.3.5.3 Sephadex-G100柱層析

      利用具有多孔網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的凝膠顆粒的分子篩作用,根據(jù)分離樣品中分子質(zhì)量大小的差異進(jìn)行洗脫分離的一項(xiàng)技術(shù)。按照分子在層析凝膠中的保留時(shí)間長短逐步洗脫。

      取5 mL超濾后酶液加入預(yù)先用pH 7.0磷酸緩沖液平衡過的Sephadex G100凝膠柱(φ1.6 cm×50 cm),調(diào)節(jié)恒流泵洗脫速度控制在0.3 mL/min。調(diào)節(jié)自動(dòng)收集器,每管收集3 mL,根據(jù)顯示器的洗脫峰記錄試管號(hào),分別測定每管酶活。

      1.3.5.4 SDS-PAGE電泳

      采用SDS-PAGE鑒定酶的純化程度,用考馬斯亮藍(lán)染色法確定電泳條帶的位置。SDS蛋白質(zhì)復(fù)合物長度與其分子量成正比,電泳遷移率主要取決于分子量的大小。電泳結(jié)束后,染色、脫色,若得到單一條帶,即為純化的β-半乳糖苷酶。

      電泳指標(biāo):分離膠12%,濃縮膠5%,電壓100 V,1.5 mm梳,時(shí)間2 h,考馬斯亮藍(lán)R250染色。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 菌株篩選

      平板分離純化得到7株能分解x-gal使菌落顯藍(lán)色的菌株。由菌落表面特征初步判斷均為細(xì)菌,分別命名CD1~CD7。

      對(duì)CD1~CD7分別進(jìn)行液體搖瓶發(fā)酵20℃30 h,利用β-半乳糖苷酶酶活測定方法分別測定7菌株的酶活,篩選酶活最高的菌株CD6作為實(shí)驗(yàn)的出發(fā)菌種。酶活結(jié)果見表1。

      表1 菌株酶活比較Table 1 Enzymatic activity comparison of different strains

      2.2 菌種鑒定

      2.2.1 形態(tài)學(xué)特征

      由圖1、圖2可知,菌株CD6在平板培養(yǎng)基上菌落為圓形,邊緣整齊,乳白色,表面光滑,濕潤,半透明,鼻涕狀,黏稠,在培養(yǎng)基上易成片存在,用接種環(huán)易挑取。鏡檢革蘭氏染色陰性,桿狀,末端鈍圓,有莢膜無芽孢。

      圖1 菌株CD6菌落形態(tài)圖Fig.1 The colony morphology of strain CD6

      圖2 菌株CD6顯微形態(tài)特征Fig.2 The micro-morphology of strain CD6

      2.2.2 生理生化特征

      按照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊》(2001)關(guān)于革蘭氏陰性桿菌的相關(guān)檢索內(nèi)容,對(duì)菌株CD6的生理生化特征進(jìn)行檢驗(yàn)和測定,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。

      表2 菌株CD6生理生化特征Table 2 Traditional taxonomical properties of strain CD6

      2.2.3 菌株16S rDNA鑒定

      進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)過測序得到CD6菌株16S rDNA全序列,長1 492bp,其序列如下:

      5'-AATTTCACACAGGAGAGTTTGATCATGGCTCAGATTGAACGCTGGCGGCAGGCCTAACACATGCAAGTCGAGCGGTAGCACAGAGAGCTTGCTCTCGGGTGACGAGCGGCGGACGGGTGAGTAATGTCTGGGAAACTGCCTGATGGAGGGGGATAACTACTGGAAACGGTAGCTAATACCGCATAACGTCGCAAGACCAAAGTGGGGGACCTTCGGGCCTCATGCCATCAGATGTGCCCAGATGGGATTAGCTAGTAGGTGGGGTAATGGCTCACCTAGGCGACGATCCCTAGCTGGTCTGAGAGGATGACCAGCCACACTGGAACTGAGACACGGTCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATATTGCACAATGGGCGCAAGCCTGATGCAGCCATGCCGCGTGTATGAAGAAGGCCTTCGGGTTGTAAAGTACTTTCAGCGAGGAGGAAGGCGATAAGGTTAATAACCTTAGTGATTGACGTTACTCGCAGAAGAAGCACCGGCTAACTCCGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGGAGGGTGCAAGCGTTAATCGGAATTACTGGGCGTAAAGCGCACGCAGGCGGTCTGTCAAGTCGGATGTGAAATCCCCGGGCTCAACCTGGGAACTGCATCCGAAACTGGCAGGCTAGAGTCTTGTAGAGGGGGGTAGAATTCCAGGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGAGATCTGGAGGAATACCGGTGGCGAAGGCGGCCCCCTGGACAAAGACTGACGCTCAGGTGCGAAAGCGTGGGGAGCAAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCTGTAAACGATGTCGACTTGGAGGTTGTTCCCTTGAGGAGTGGCTTCCGGAGCTAACGCGTTAAGTCGACCGCCTGGGGAGTACGGCCGCAAGGTTAAAACTCAAATGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGATGCAACGCGAAGAACCTTACCTACTCTTGACATCCAGAGAACTTAGCAGAGATGCTTTGGTGCCTTCGGGAACTCTGAGACAGGTGCTGCATGGCTGTCGTCAGCTCGTGTTGTGAAATGTTGGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCTTATCCTTTGTTGCCAGCGGTTCGGTCGGGAACTCAAAGGAGACTGCCAGTGATAAACTGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAGTCATCATGGCCCTTACGAGTAGGGCTACACACGTGCTACAATGGCATATACAAAGAGAAGCGACCTCGCGAGAGCAAGCGGACCTCATAAAGTATGTCGTAGTCCGGATCGGAGTCTGCAACTCGACTCCGTGAAGTCGGAATCGCTAGTAATCGTGGATCAGAATGCCACGGTGAATACGTTCCCGGGCCTTGTACACACCGCCCGTCACACCATGGGAGTGGGTTGCAAAAGAAGTAGGTAGCTTAACCTTCGGGAGGGCGCTTACCACTTTGTGATTCATGACTGGG-3'

      將所得序列輸入GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行Blast同源性比對(duì),Raoultella terrigena(NR 037085.1)與CD6相似性達(dá)到99.59%。由上述形態(tài)學(xué)及生理生化特征實(shí)驗(yàn)將CD6初步確定為Raoultella terrigena。采用MEGA5軟件計(jì)算相似序列之間的系統(tǒng)進(jìn)化距離并構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖3),結(jié)果表明二者同源性可靠程度為95%,可以確定菌株 CD6為 Raoultella terrigena。如圖該菌種屬于拉烏爾菌屬,通過核酸測序、生理生化及DNA雜交技術(shù)于2001年建立的新屬。

      圖3 菌株CD6系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.3 Phylogenetic tree showing the relationships of CD6 with the sequence of relating type

      2.3 酶分離純化

      粗酶液經(jīng)(NH4)2SO4鹽析得到的蛋白沉淀均無活性,說明(NH4)2SO4分級(jí)沉淀對(duì)該酶影響很大,因此粗酶液直接進(jìn)行透析、超濾除雜濃縮。濃縮液經(jīng)Sephadex G100凝膠柱層析,結(jié)果如圖4所示。在整個(gè)洗脫過程共出現(xiàn)3個(gè)峰,分別測定各管酶活,發(fā)現(xiàn)β-半乳糖苷酶主要集中在第1個(gè)蛋白峰內(nèi)。說明經(jīng)過Sephadex G100凝膠柱層析除去了一部分小于其分子量的蛋白。

      圖4 Sephadex-G100凝膠柱層析洗脫結(jié)果Fig.4 The eluting result of sephadex-G100 column chromatography

      粗酶液經(jīng)過透析、超濾、Sephadex-G100層析處理后,由圖可知,低溫 β-半乳糖苷酶回收率達(dá)到了33.77%,比活力提高了近4倍。

      2.4 SDS-PAGE電泳結(jié)果

      經(jīng)過每一步分離純化處理的酶液進(jìn)行SDSPAGE電泳,得到的電泳結(jié)果如圖5所示。粗酶液經(jīng)過透析、超濾、Sephadex-G100層析處理后電泳得到了單一條帶,說明純化效果較好。根據(jù)相對(duì)遷移率分子量的關(guān)系,可以計(jì)算出該低溫β-半乳糖苷酶的分子量為30.8 kDa。

      表3 低溫β-半乳糖苷酶純化結(jié)果Table 3 The result of isolation and purification

      圖5 酶液SDS-PAGE電泳結(jié)果Fig.5 SDS-PAGE of enzyme solution at different stages of purification

      2.5 酶最適溫度確定

      由圖6可知,酶的最適作用溫度為20℃;30℃剩余相對(duì)酶活85%;超過35℃酶活力即迅速下降。

      圖6 反應(yīng)溫度對(duì)酶活的影響Fig.6 The effect of temperature on relative activity

      3 結(jié)論

      低溫微生物多來自極端低溫環(huán)境,但其產(chǎn)酶不一定為低溫酶。本文篩選的菌株CD6來自渤海海泥,經(jīng)鑒定為土生拉烏爾菌,目前沒有關(guān)于利用該菌生產(chǎn)β-半乳糖苷酶的報(bào)道。經(jīng)過透析、超濾、Sephadex-G100層析處理就可以完成低溫β-半乳糖苷酶的分離純化,分子量30.8kDa,純化效果良好。批次生產(chǎn)低乳糖制品多是在10℃以下完成乳糖水解,菌株CD6低溫條件下生長良好,產(chǎn)β-半乳糖苷酶的最適溫度為20℃,10℃下相對(duì)酶活39%,可用于低乳糖奶制品生產(chǎn)。

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