• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      應(yīng)用DIBA快速檢測番茄黃化曲葉病毒

      2013-04-18 05:10:45季英華周曉偉周益軍
      關(guān)鍵詞:黃化原液單抗

      季英華, 周曉偉, 張 暉, 周益軍

      (江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,江蘇 南京 210014)

      番茄黃化曲葉病毒(Tomato yellow leaf curl virus,TYLCV)是番茄上一種毀滅性的病毒,分類上屬于雙生病毒科(Geminiviridae)菜豆金色花葉病毒屬(Begomovirus),主要傳播介體為煙粉虱(Bemisia tobaci)。該病毒早在1964年以色列就有發(fā)生危害報(bào)道[1],近年來,隨著全球氣候變暖和耕作制度的改變以及國際間貿(mào)易的增加,TYLCV在全球范圍傳播,給番茄等作物的生產(chǎn)造成了嚴(yán)重危害[2-3]。2006年TYLCV在上海和浙江等地陸續(xù)出現(xiàn)危害,隨后幾年迅速擴(kuò)展至江蘇、安徽、山東、河南、河北、北京等地[4-8]。據(jù)各地植保部門的不完全統(tǒng)計(jì),2009年中國番茄黃化曲葉病的年發(fā)生面積超過2.0×105hm2,遭受嚴(yán)重?fù)p失的面積在6.6×104hm2以上,經(jīng)濟(jì)損失超過5.0×109元。

      在TYLCV檢測上,比較常用的方法是基于PCR的分子檢測[9-10],該方法具有靈敏度高,檢測時(shí)間相對較短等優(yōu)勢,但存在設(shè)備要求高、操作繁瑣、成本較高等問題,很難應(yīng)用于基層和大批量樣品的檢測,而病害的調(diào)查和預(yù)測預(yù)報(bào)往往需要檢測大量樣本,因此建立一種快捷、簡便、高效而又成本較低的檢測方法是一項(xiàng)迫在眉睫的任務(wù)。本研究擬建立一種基于DIBA(斑點(diǎn)免疫結(jié)合分析法)的TYLCV快速檢測方法,旨在為病害的預(yù)測預(yù)報(bào)及病害調(diào)查提供支持。

      1 材料與方法

      1.1 供試材料

      供試番茄病樣為室內(nèi)接種獲得的TYLCV病株,健康番茄材料為實(shí)驗(yàn)室內(nèi)培育的不含TYLCV番茄苗,田間樣品于2011年采自江蘇南京。

      1.2 抗體和試劑

      TYLCV單克隆抗體[11]由浙江大學(xué)周雪平老師提供;堿性磷酸酯酶(AP)標(biāo)記的羊抗鼠IgG購自SIGMA;硝酸纖維素膜購自PALL;dNTP、Taq酶購自TaKaRa;顯色底物BCIP/NBT購自上海生工生物工程有限公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。

      1.3 DIBA 檢測方法[12]

      (1)在硝酸纖維素膜上劃0.5 cm×0.5 cm方格,根據(jù)試驗(yàn)樣品數(shù)裁剪,1個樣品用1個方格。(2)取植物樣品0.1 g,加1 ml碳酸鹽包被液,充分研磨;(3)低速離心3~5 min,取上清3~5 μl點(diǎn)膜,室溫晾干;(4)用含3%脫脂奶粉的PBST緩沖液37℃封閉45 min;(5)將膜浸入含有單抗的PBST緩沖液(含3%脫脂奶粉)中37℃孵育1.5 h;(6)PBST洗膜3~4次,每次5 min;(7)加入AP標(biāo)記羊抗鼠IgG(含3%脫脂奶粉的PBST緩沖液1∶6 000稀釋),37℃孵育1.5 h;(8)PBST洗膜3~4次,每次5 min;(9)將膜浸入顯色底物BCIP/NBT中充分顯色;(10)加雙蒸水終止反應(yīng),觀察記錄結(jié)果。

      1.4 單抗作用濃度的優(yōu)化

      單抗按1∶3 000、1∶5 000、1∶8 000、1∶15 000、1∶20 000、1∶40 000、1∶80 000及1∶160 000稀釋構(gòu)建濃度梯度,DIBA檢測后,根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果選擇最佳單抗?jié)舛取?/p>

      1.5 靈敏度檢測

      將植物樣品研磨勻漿后得到的原液[鮮重(g)∶包被液(ml)=0.1∶1.0]按1∶50、1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1 600、1∶ 3 200、1∶6 400、1∶ 12 800、1∶ 25 600 及1∶51 200稀釋構(gòu)建濃度梯度,方法參照方法1.3,單抗?jié)舛葏⒄辗椒?.4,測定建立的DIBA方法檢測樣品的靈敏度,設(shè)3次重復(fù)。

      1.6 準(zhǔn)確性檢測

      對實(shí)驗(yàn)室內(nèi)保存的確認(rèn)感染TYLCV的番茄樣品和健康番茄樣品共抽選10份,分別用PCR方法[6]和DIBA檢測,單抗?jié)舛葏⒄辗椒?.4,每個樣品重復(fù)2次。根據(jù)兩種方法的檢測結(jié)果來評估建立的DIBA檢測方法的準(zhǔn)確性。

      1.7 穩(wěn)定性檢測

      利用已建立的DIBA檢測方法,對同一批番茄樣品(同時(shí)含有陽性和陰性)進(jìn)行3次重復(fù)檢測試驗(yàn),每次重復(fù)中,每個樣品研磨后在膜上重復(fù)點(diǎn)膜3次,根據(jù)3×3次重復(fù)的結(jié)果來判定檢測方法的穩(wěn)定性。

      1.8 田間樣品檢測

      大田隨機(jī)采樣,利用建立的DIBA方法對采集樣品進(jìn)行檢測,根據(jù)檢測結(jié)果來檢驗(yàn)建立的DIBA方法對田間樣品的檢測能力。

      2 結(jié)果

      2.1 最適單抗?jié)舛葍?yōu)化

      在其他條件不變的前提下,對單抗進(jìn)行稀釋,發(fā)現(xiàn)當(dāng)單抗稀釋度在1∶3 000~1∶20 000時(shí),利用DIBA方法可以很明顯地區(qū)分樣品,只是稀釋度在1∶3 000時(shí),陰性樣品有少許顯色。當(dāng)單抗稀釋到1∶40 000及以上時(shí),陽性樣品雖然也有顯色,但是顯色不明顯。因此理論上單抗的稀釋范圍可以為1∶3 000~1∶20 000,推薦使用 1∶5 000~1∶15 000,本研究后續(xù)試驗(yàn)單抗稀釋度采用1∶8 000。

      2.2 靈敏度檢測

      將植物樣品處理后的原液(鮮重(g)∶包被液(ml)=0.1∶1.0)進(jìn)行稀釋,對稀釋樣品進(jìn)行檢測,結(jié)果顯示:在3次重復(fù)中,原液稀釋到1∶800時(shí),陽性樣品還可以看到非常淡的顯色,稀釋到1∶1 600時(shí)基本上看不見顯色,所以推測單抗檢測植物樣品的極限是1∶800,在檢測樣品時(shí)推薦采用原液或者原液稀釋50倍。

      2.3 準(zhǔn)確性檢測

      對實(shí)驗(yàn)室內(nèi)保存的感染TYLCV的番茄樣品和健康番茄樣品進(jìn)行抽樣檢測,PCR檢測結(jié)果顯示10份樣品中有6份樣品為陽性;利用DIBA也檢測到了6份,并且與PCR檢測結(jié)果完全一致,說明建立的DIBA方法可以較準(zhǔn)確地檢測TYLCV。

      2.4 穩(wěn)定性檢測

      從實(shí)驗(yàn)室內(nèi)保存的感染TYLCV的番茄樣品和健康番茄樣品中抽選8份進(jìn)行DIBA檢測,結(jié)果同一樣品3次重復(fù)檢測試驗(yàn)顯色一致,同一樣品研磨后3次重復(fù)點(diǎn)膜顯色也一致,說明建立的DIBA方法檢測TYLCV具有較好的穩(wěn)定性。

      2.5 田間樣品檢測

      對2011年采自江蘇南京日光溫室的30份番茄樣品進(jìn)行檢測,結(jié)果也表明建立的DIBA檢測方法可以對田間樣品進(jìn)行有效檢測。

      3 討論

      對于TYLCV的檢測方法,前人有很多報(bào)道,包括血清學(xué)、PCR 檢測、核酸雜交檢測等[9,13-16],但是 DIBA 檢測方法對于檢測大批量樣品有其無可比擬的優(yōu)勢。

      在利用DIBA檢測樣品時(shí),若直接采用原液(不稀釋),有時(shí)會有色素或雜質(zhì)影響,建議在對粗樣低速離心時(shí)適當(dāng)延長離心時(shí)間或者選擇相對較高的離心速度,這樣可以較好地減少色素或雜質(zhì)的影響。雖然本試驗(yàn)結(jié)果表明單抗稀釋度在1∶3 000~1∶20 000時(shí)也能顯色,但是在檢測大量樣品時(shí)推薦使用1∶5 000或者 1∶8 000稀釋度,這樣能較好地兼顧穩(wěn)定性和靈敏度。很多研究結(jié)果顯示大多數(shù)雙生病毒的增殖部位局限于植物韌皮部組織[17-19],我們在利用單抗對番茄不同部位的TYLCV進(jìn)行Western-blot分析時(shí)也發(fā)現(xiàn):韌皮部病毒的含量最高,推測檢測時(shí)取樣的最佳部位應(yīng)該是韌皮部,但是韌皮部在檢測時(shí)候會存在一些問題,比如采樣不方便、樣品處理較費(fèi)時(shí),因此本方法還是采用番茄葉片作為取樣部位進(jìn)行檢測,該方法也同樣適用于韌皮部組織的樣品檢測,而且可能會有更高的靈敏度。在檢測大量樣品時(shí),比較DIBA與PCR的檢測結(jié)果,有時(shí)會發(fā)現(xiàn)它們存在一些差異,這可能與二者的檢測靈敏度、特異性等因素相關(guān),但從目前我們對江蘇及周邊地區(qū)的樣品檢測結(jié)果來看,二者還是基本一致的。

      在菜豆金色花葉病毒屬中,與TYLCV序列接近的病毒有多種,利用單抗進(jìn)行檢測時(shí)也可能會檢測到一些近緣的病毒,因此,田間調(diào)查時(shí)建議采用兩步法:第一步,先DIBA檢測;第二步,抽選DIBA檢測結(jié)果中的陽性樣品進(jìn)行PCR檢測。這樣既提高了樣品的檢測量,又保障了樣品檢測的準(zhǔn)確性。對于目前只有TYLCV發(fā)生地區(qū),如江蘇、安徽、山東等地,只用DIBA檢測方法來檢測TYLCV是可行的,同時(shí)也建議抽樣進(jìn)行PCR檢測,以防有新病毒傳入。

      致謝: 本研究所用TYLCV單克隆抗體由浙江大學(xué)周雪平老師提供,在此表示衷心感謝!

      [1]COHEN S,HARPAZ I.Periodic,rather than continual acquisition of the new tomato virus by its vector,the tobacco whitefly(Bemisia tabaci Gennadius)[J].Entomologia Experimentalis et Applicata,1964,7(2):155-166.

      [2]MOFFAT A S.Geminiviruses emerge as serious crop threat[J].Science,1999,286:1835.

      [3]MORIONES E,NAVAS-CASTILLO J.Tomato yellow leaf curl virus,an emerging virus complex causing epidemics worldwide[J].Virus Research,2000,71(1-2):123-134.

      [4]WU J B,DAI F M,ZHOU X P.First report of tomato yellow leaf curl virus in China[J].Plant Disease,2006,90(10):1359.

      [5]MUGIIRA R B,LIU S S,ZHOU X.Tomato yellow leaf curl virus and tomato leaf curl Taiwan virus invade south-east coast of China[J].J Phytopathology,2008,156(4):217-221.

      [6]季英華,熊如意,程兆榜,等.江蘇省番茄黃化曲葉病的病原分子診斷[J].園藝學(xué)報(bào),2008,35(12):1815-1818.

      [7]李明遠(yuǎn).黃化曲葉病毒病傳入北京,番茄生產(chǎn)面臨威脅[J].植物保護(hù),2009,35(6):179-180.

      [8]余文貴,趙統(tǒng)敏,楊瑪麗,等.山東、安徽兩省栽培番茄煙粉虱傳雙生病毒的PCR檢測及序列分析[J].江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2009,25(4):747-751.

      [9]DI MARTINO M T,ALBANESE G,DI SILVESTRO I,et al.Rapid detection of tomato yellow leaf curl virus in plants by polymerase chain reaction[J].Rivista di Patologia Vegetale,1993,3(2):35-40.

      [10]ATZMON G,VAN OSS H,CZOSNEK H.PCR-amplification of tomato yellow leaf curl virus(TYLCV)DNA from squashes of plants and whitefly vectors:Application to the study of TYLCV acquisition and transmission[J].European Journal of Plant Pathology,1998,104(2):189-194.

      [11]WU J,SHANG H,XIE Y,et al.Monoclonal antibodies against the whitefly-transmitted tomato yellow leaf curl virus and their application in virus detection[J].Journal of Integrative Agriculture,2012,11(2):263-268.

      [12]周益軍,劉海建,王貴珍,等.灰飛虱攜帶的水稻條紋病毒免疫檢測[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2004(1):50-51.

      [13]CRESPI S,ACCOTTO G P,CACIAGLI P,et al.Use of digoxigenin-labelled probes for detection and host-range studies of tomato yellow leaf curl geminivirus[J].Research in Virology,1991,142(4):283-288.

      [14]FARGETTE D,LESLIE M,HARRISON B D.Serological studies on the accumulation and localisation of three tomato leaf curl geminiviruses in resistant and susceptible Lycopersicon species and tomato cultivars[J].Annals of Applied Biology,1996,128(2):317-328.

      [15]KASHINA B D,MABAGALA R B,MPUNAMI A A.Serological detection and variability of tomato yellow leaf curl virus isolates from Tanzania[J].Journal of Plant Protection Research,2007,47(4):367-373.

      [16]SEDEGUI M,NAKHLA M K,EVANS T A,et al.Detection of tomato yellow leaf curl virus and tomato yellow leaf curl sardinia virus with a general probe and species specific probes in tomato samples from Agadir,Morocco[J].Phytopathology,2002,92(Supp):74.

      [17]RUSSO M,COHEN S,MARTELLI G P.Virus-like particles in tomato plants affected by the yellow leaf curl disease[J].Journal of General Virology,1980,49(1):209-213.

      [18]CZOSNEK H,BER R,NAVOT N,et al.Detection of tomato yellow leaf curl virus in lysates of plants and insects by hybridization with a viral-DNA probe[J].Plant Disease,1988,72(11):949-951.

      [19]ROM M,ANTIGNUS Y,GIDONI D,et al.Accumulation of tomato yellow leaf curl virus-DNA in tolerant and susceptible tomato lines[J].Plant Disease,1993,77(3):253-257.

      猜你喜歡
      黃化原液單抗
      Efficacy and safety of Revlimid combined with Rituximab in the treatment of follicular lymphoma: A meta-analysis
      司庫奇尤單抗注射液
      應(yīng)用前景廣闊的原液著色纖維
      2020春夏原液著色纖維色彩流行趨勢
      黃化安全性保障
      超細(xì)、原液著色聚酰亞胺纖維實(shí)現(xiàn)量產(chǎn)
      高品質(zhì)原液著色纖維項(xiàng)目“年審”
      嶺石葉面鐵肥 缺鐵黃化
      淺析溫室番茄黃化曲葉病毒病的防治
      中國果菜(2016年9期)2016-03-01 01:28:47
      使用抗CD41單抗制備ITP小鼠的研究
      北海市| 香港 | 盐津县| 周口市| 张掖市| 高阳县| 封丘县| 肥城市| 石泉县| 舒兰市| 新蔡县| 葫芦岛市| 嘉祥县| 柳林县| 河南省| 梁平县| 安多县| 正宁县| 连南| 迁安市| 大宁县| 万全县| 河曲县| 锡林浩特市| 安仁县| 冷水江市| 电白县| 竹山县| 永新县| 波密县| 新丰县| 凌海市| 彭水| 攀枝花市| 金川县| 梅州市| 南京市| 固安县| 绥江县| 奉新县| 长治市|