孫 旭,邊云飛,劉改珍,孫亞麗,肖傳實
血管重構(gòu)(vascular remodeling,VR)是一個動態(tài)過程,包括細(xì)胞的增殖、遷移、凋亡以及胞外基質(zhì)的合成、降解、重排;是血管對刺激復(fù)雜的動態(tài)反應(yīng)過程,包括信號的感受、傳導(dǎo)和調(diào)節(jié)因子的合成釋放,最終使血管產(chǎn)生結(jié)構(gòu)的變化[1]。P-選擇素(P-selectin)是由血小板和內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)的選擇素家族成員之一,主要介導(dǎo)白細(xì)胞在血管內(nèi)皮上的滾動和黏附[2],發(fā)揮致炎作用。炎癥在高血壓血管重構(gòu)中起重要作用,包括血管壁通透性的改變,白細(xì)胞的滲出等[3]。因此,本研究以P-selectin基因敲除鼠為基礎(chǔ),探討P-selectin在血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)灌注致血管重構(gòu)中的作用及機制。
1.1 主要材料和試劑 C57BL/6品系P-選擇素基因敲除小鼠(P-selectin-/-)由首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京安貞醫(yī)院心肺血管疾病研究所惠贈,微量泵采用Alzet model 1007D,AngⅡ購自美國Sigma公司,小鼠血壓測定使用Visitech BP2000 Blood Pressure Analysis System(美國)。兔抗轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)、Smad2/3多克隆抗體購自武漢博士德生物技術(shù)有限公司,二步法免疫組化試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,TGF-β1、Smad3引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
1.2 方法
1.2.1 實驗動物分組 分別選取體重適合的18 g~20 g野生C57BL/6小鼠(Wild Type,WT)和C57BL/6遺傳背景相同的P-選擇素基因敲除小鼠,隨機分為WT+PBS(陰性對照組)、P-selectin-/-+PBS(空 白 對 照 組)、WT+AngⅡ[1 5 0 0 ng/(min·kg),7 d,陽 性 對照 組]、P-selectin-/-+AngⅡ[1 500 ng/(min·kg),7 d,實驗組],每組各6只。
1.2.2 動物模型制備 采用血管緊張素Ⅱ微量泵灌注(7 d)構(gòu)建小鼠高血壓模型,術(shù)后第4天~7天測血壓,以確定血管緊張素Ⅱ灌注成功[4]。術(shù)后第7天,1%戊巴比妥麻醉小鼠,用肝素生理鹽水灌注動物,取胸主動脈,4%多聚甲醛固定。
1.2.3 免疫組織化學(xué)染色 觀察蛋白在血管中的表達(dá),并做定量分析用TGF-β1、Smad2/3一抗和HRP標(biāo)記的相應(yīng)二抗,結(jié)合DAB顯色觀察蛋白在組織中的表達(dá)。6張切片每張采圖3張,BI-2000醫(yī)學(xué)圖像分析系統(tǒng)測定其灰度值,并取平均值,定量分析各組間差異。
1.2.4 RT-PCR檢測 TGF-β1、Smad3 m RNA的表達(dá) 水 平用RNAiso Plus提取胸主動脈總RNA,微量分光光度計測定RNA量,調(diào)整RNA濃度使吸光度值(A260/280)在1.8~2.0。目的基因引物序列β-actin:上游5′-GTCAGGTCATCACTATCGGCAAT-3′,下 游5′-AGAGGTCTTT ACGG ATGTCA ACGT-3′,184bp。TGF-β1:上 游 5′-CGCAACAACGCCATCTAT-3′,下 游 5′-CCAAGGTAACG CCAGGAAT-3′,203bp。Smad3:上游5′-ACTA CAGCCATTCC ATTCC-3′,下游 5′-TCTCCAT CTTCACTCAGGTA-3′,106bp。將 RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,行PCR擴增,條件:94℃預(yù)變性1 min,94℃變性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸1 min,共30個循環(huán)。凝膠成像儀保存圖像,用Quantity one分析測定灰度值,目的基因PCR產(chǎn)物相對表達(dá)含量為目的基因條帶灰度值/β-actin條帶灰度值。
1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS17.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)處理,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,采用單因素方差分析One-Way ANOVA,方差齊使用LSD法,方差不齊使用Tamhane’s T2法,P<0.05為有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 各組小鼠尾動脈收縮壓(SBP)變化 微量泵灌注后7 d測量各組小鼠尾動脈SBP,每只小鼠測量10次~20次取平均值。詳見圖1。
圖1 AngⅡ灌注7 d后各組小鼠收縮壓的變化
2.2 免疫組織化學(xué)染色 各組小鼠胸主動脈中膜TGF-β1、Smad2/3的表達(dá) TGF-β1、Smad2/3均定位于中膜層平滑肌細(xì)胞胞漿,在血管的內(nèi)皮細(xì)胞層亦有表達(dá),陽性信號為棕黃色,結(jié)果以平均灰度值(MOD)表示,MOD值越低,蛋白含量越高。詳見表1。
表1 各組小鼠胸主動脈中膜TGF-β1、Smad2/3的表達(dá)±s)
表1 各組小鼠胸主動脈中膜TGF-β1、Smad2/3的表達(dá)±s)
組別 n TGF-β1 Smad2/3 WT+PBS組 6 166.19±4.861) 126.77±4.331)KO+PBS組 6 170.76±1.192) 132.45±4.372)WT+AngⅡ組 6 102.88±5.17 101.72±7.60 KO+AngⅡ組 6 167.98±3.651) 127.47±6.031)與WT+AngⅡ組比較,1)P<0.001;與 WT+PBS組比較,2)P<0.05
2.3 RT-PCR檢測(見圖2~圖4)
圖2 RT-PCR檢測血管TGF-β1、Smad3 mRNA表達(dá)電泳圖
圖3 RT-PCR檢測血管TGF-β1 mRNA表達(dá)
圖4 RT-PCR檢測血管Smad3 mRNA表達(dá)
炎癥是血管重構(gòu)和纖維化的早期事件。在血小板表面表達(dá)有P-選擇素糖蛋白配體-1(PSGL-1),P-選擇素可通過與PSGL-1的結(jié)合,介導(dǎo)炎癥細(xì)胞與血小板、內(nèi)皮細(xì)胞之間的相互作用[5],主要是白細(xì)胞在血管內(nèi)皮上的滾動和黏附過程[6]。
在高血壓進程中,血管緊張素Ⅱ的激活所介導(dǎo)的炎癥反應(yīng),對血管重構(gòu)有非常重要的作用。AngⅡ通過其ATⅠ受體來激活細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶1/2和p38絲裂原活化蛋白激酶,進一步促進平滑肌細(xì)胞增殖和Ⅰ型膠原的合成[1],亦可直接參與誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等多種炎癥細(xì)胞的浸潤,誘導(dǎo)多種細(xì)胞因子(TGF-β)的釋放,刺激成纖維細(xì)胞分化,合成大量膠原等導(dǎo)致胞外基質(zhì)的沉積[7]。
研究表明,TGF-β1/Smads信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路與心血管疾病密切相關(guān),在高血壓病、動脈粥樣硬化(AS)等疾病的發(fā)病過程中起重要作用[8]。TGF-β1是已知的最重要的致纖維化細(xì)胞因子之一[9],而Smads是TGF-β1下游的一組重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白。TGF-β1與其受體結(jié)合激活Smad2、3進入核內(nèi),發(fā)揮正反饋作用[10]。TGF-β的作用有多重性,有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn) TGF-β是細(xì)胞間質(zhì)蛋白合成的強刺激因子,TGF-β1/Smads信號通路活化能促進高血壓主動脈的重構(gòu),且與ERK1/2、PARP、ET-1的上調(diào)等多種信號通路有關(guān)[11],并能促進血管新生[12]。但也有研究稱TGF-β1/Smad3通道活化能抑制內(nèi)皮細(xì)胞炎癥蛋白表達(dá)[13],抑制TGF-β表達(dá)可提高表面黏附分子的表達(dá),增強白細(xì)胞的黏附作用[14],對心血管系統(tǒng)起保護作用。
本實驗結(jié)果顯示,胸主動脈中膜TGF-β1、Smad2/3的表達(dá),WT(PBS)較P-selectin-/-(PBS)組升高明顯,WT(AngⅡ)較Pselectin(Ang Ⅱ)組 升 高 更 加 明 顯,而 P-selectin-/-(PBS)與P-selectin-/-(AngⅡ)組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,RT-PCR示TGF-β1、Smad3 mRNA與蛋白的表達(dá)趨勢基本一致。綜上推斷:P-選擇素和能夠上調(diào) TGF-β1、Smad3蛋白和mRNA的表達(dá),主要通過加強TGF-β1/Smads信號通路的正反饋路徑促進血管的重構(gòu),血管緊張素Ⅱ與P-選擇素在TGF-β1/Smads通路的正反饋路徑上有協(xié)同作用。
[1] Chen H,Hong HS.Vascular remodeling and carotid artery remodeling under hypertension[J].Journal of Clinical Rehabilitative Tissue Engineering Research,2007,11(14):2724-2728.
[2] Dole VS,Bergmeier W,Mitchell HA,et al.Activated platelets induce Weibel-Palade-body secretion and leukocyte rolling in vivo:Role of P-selectin[J].Blood,2005,106(7):2334-2339.
[3] Yang Y,Chen C,Huang SA.Progress of study on relations between renin angiotensin system and vascular remodeling of hypertension[J].Medical Recapitulate,2008,14(13):1941-1943.
[4] Ma F,Li Y,Jia L,et al.Macrophage-stimulate cardiac fibroblast production of IL-6 is essential for TGFβ/Smad activation and cardiac fibrosis induced by angiotensinⅡ[J].PLoS One,2012,7(5):e35144.
[5] Spertini C,Baisse B,Spertini O.Ezrin-radixin-moesin-binding sequence of PSGL-1 glycoprotein regulates leukocyte rolling on selectins and activation of extracellular signal-regulated kinases[J].Biol Chem,2012,287(13):10693-10702.
[6] Abdulla A,Awla D,Hartman H,et al.Platelets regulate P-selectin expression and leukocyte[J].Arterioscler,2012,20(3):203-206.
[7] Chiara M,Pierre P,Ernesto L.Schiffrin Role of the renin-angiotensin system in vascular inflammation[J].Trends Pharmacol Sci,2008,29(7):367-374.
[8] Gao LR,Teerlink J,Karliner J.Dysregulation of the transforming growth factor beta smads signaling pathway in rats with chronic heart failure[J].Chin J Cardiol,2001,29(3):177-180.
[9] Gresner AM,Weiskircben R.Role of TGF-beta in hepatic-fibrosis[J].Front Bio Sci,2002,7:793-807.
[10] Inman GJ.Linking Smads and transcriptional activation[J].Biochem J,2005,386(Pt 1):1-3.
[11] Olave N,Nicola T,Zhang W,et al.Transforming growth factor-β regulates endothelin-1 signaling in the newborn mouse lung during hypoxia exposure[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2012,302(9):857-865.
[12] Evrard SM,d’Audigier C,Mauge L,et al.The profibrotic cytokine transforming growth factor-β1increases endothelial progenitor cell angiogenic properties[J].J Thromb Haemost,2012,10(4):670-679.
[13] Wang WD,Chen BD,Qi RM,et al.TGF-β1/Smad3 regulation of inflammatory protein expression induced by oxidized low density lipoprotein in human umbilical vein endothelial cells[J].Chin J Arterioscler,2012,20(3):203-206.
[14] Walshe TE,Dole VS,Maharaj AS,et al.Inhibition of VEGF or TGF-βsignaling activates endothelium and increases leukocyte rolling[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2009,29(8):1185-1192.