不同反膠束體系后萃取花生蛋白質(zhì)的比較

高艷秀 陳復(fù)生 郭 珍 楊穎瑩 李潤(rùn)潔

(河南工業(yè)大學(xué)糧油食品學(xué)院，鄭州 450001)

花生是世界上主要的優(yōu)質(zhì)食用植物油料品種之一，花生籽仁的主要成分是蛋白質(zhì)、脂肪和碳水化合物，其含量分別為24%～36%、50%左右和10%～23%[1]?；ㄉ鞍撞粌H所含氨基酸種類比較齊全，而且所含人體必須氨基酸的比例較高[1]。目前，國(guó)內(nèi)外花生加工普遍基于油脂為中心，因此花生中蛋白的利用率較低。傳統(tǒng)的堿溶酸沉法生產(chǎn)的花生蛋白純度不高，且蛋白質(zhì)萃取率較低[2]。Luisi等[3]首次提出用反膠束萃取蛋白質(zhì)的概念；Leser[4]等利用AOT/異辛烷體系萃取分離大豆和向日葵中的油和蛋白質(zhì)。在國(guó)內(nèi)，孫秀平等[5]對(duì) AOT、SDS、CTAB和TritonX－100 4種表面活性劑所形成的反膠束體系萃取花生蛋白進(jìn)行了研究，結(jié)果表明:不同的表面活性劑，所形成的反膠束“水池”大小不同，蛋白質(zhì)萃取率也不同，表面活劑性的濃度對(duì)蛋白萃取率有直接的影響。

本試驗(yàn)研究AOT、SDS、DTAC 3種反膠束體系萃取花生蛋白質(zhì)的最佳后萃工藝條件，通過(guò)色差分析，從宏觀上比較不同花生蛋白產(chǎn)品色澤的差異，進(jìn)一步通過(guò)對(duì)比3種不同花生蛋白質(zhì)的掃描電鏡照片，分析其微觀結(jié)構(gòu)的差異，以期找到最適合萃取花生蛋白的反膠束體系，為工業(yè)化應(yīng)用提供數(shù)據(jù)支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

全脂花生粉(過(guò)60目篩):河南帝鑫食品有限公司，將花生仁經(jīng)過(guò)短時(shí)翻炒去紅衣(保證蛋白未變性的條件下)，然后粉碎。

二—(2－乙基己基)琥珀酸酯磺酸酯(AOT):上海海曲化工廠；十二烷基硫酸鈉(SDS)、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、氯化鉀:天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司；十二烷基三甲基氯化銨(DTAC):廈門市先端科技有限公司；卡爾費(fèi)休液:天津市科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心；異辛烷、正辛醇、正庚烷、正己醇:天津市博迪化工有限公司。

1.2 儀器和設(shè)備

GL－20L高速冷凍離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器有限公司；ZSD－2J自動(dòng)水分滴定儀:上海安亭電子儀器廠；pH211酸度計(jì):意大利HANNA；BS210S電子天平:Sartorius，German；THZ－82B氣浴恒溫振蕩器:江蘇省金壇市瑞華儀器廠；移液槍:Eppendof公司；UV－1901紫外分光光度計(jì):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司；KQ－250B超聲波清洗器:昆山市超聲儀器有限公司；90－2恒溫磁力攪拌器:上海亞榮生化儀器廠；LGJ－18冷凍干燥機(jī):北京四環(huán)科學(xué)儀器廠；CR－400色彩色差計(jì):日本柯尼卡美能達(dá)；JSM－5610掃描電鏡:日本電子株式會(huì)社。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 原料的主要成分分析

蛋白質(zhì)含量測(cè)定，GB/T 5009.5—2003；油脂含量測(cè)定，GB/T 5009.6—2003；水分含量測(cè)定，GB/T 5009.3—2003。

1.3.2 蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)，紫外分光光度計(jì)測(cè)定不同濃度標(biāo)準(zhǔn)蛋白液在280 nm處吸光值，以蛋白質(zhì)濃度為橫坐標(biāo)，對(duì)應(yīng)吸光值為縱坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.3.3 反膠束溶液的配制

AOT反膠束體系的配制:稱取一定量AOT，置于100 mL錐形瓶中，同時(shí)加入有機(jī)溶劑異辛烷，在磁力攪拌器上攪拌至AOT完全溶解，待溶液透明后，加入適量(0.02～0.20 mL/mL)含 0.2 mol/L KCl的KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液，搖床振蕩，室溫下靜置12 h，若溶液透明則為反膠束體系(溶液底部有少量水不影響[6])；反之則不是，需要重復(fù)上述步驟重新配制，直至溶液透明[7]。

SDS反膠束體系的配制:稱取一定量SDS，置于100 mL錐形瓶中，同時(shí)加入有機(jī)溶劑異辛烷/正辛醇(體積比4∶1)和適量(0.02～0.20 mL/mL)含 0.25 mol/L KCL的 KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液，超聲波振蕩至SDS完全溶解，溶液透明則為反膠束體系；反之則不是，需要重復(fù)上述步驟重新配制，直至溶液透明。

DTAC反膠束體系的配制:稱取一定量DTAC，置于100 mL的錐形瓶中，同時(shí)加入有機(jī)溶劑正庚烷/正己醇(體積比4∶1)和適量(0.02～0.20 mL/mL)含0.05 mol/L KC1的 KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液，超聲波振蕩至DTAC完全溶解，溶液透明則為反膠束體系；反之則不是，需要重復(fù)上述步驟重新配制，直至溶液透明。

1.3.4 Karl－fischer法測(cè)定反膠束體系的W0值

利用自動(dòng)水分滴定儀，在滴定瓶中加入適量的無(wú)水甲醇(甲醇液面要超過(guò)電極的鉑片，約20～30 mL)，用卡爾費(fèi)休氏溶液將甲醇中的水分滴去，然后再用微量進(jìn)樣器準(zhǔn)確向甲醇溶液中加入10μL蒸餾水，再用卡爾費(fèi)休氏溶液滴至終點(diǎn)，以標(biāo)定卡爾費(fèi)休氏溶液的滴定度，重復(fù)標(biāo)定3次以上。用微量注射器吸取待測(cè)反膠束溶液50μL，迅速加入到滴定瓶中，用卡爾費(fèi)休氏溶液滴定至終點(diǎn)，讀取反膠束溶液中所含水分的體積[8]。W0值為反膠束中的水分含量的摩爾數(shù)與表面活性劑的摩爾數(shù)之比。

式中:W0為反膠束溶液中增溶水和表面活性劑的摩爾比率。

1.3.5 前萃試驗(yàn)

取按1.3.3節(jié)配制好的反膠束溶液置于錐型瓶中，按照表1中的前萃條件，加入一定量花生粉(精確到0.000 1 g)，在一定的超聲溫度、超聲功率條件下，超聲一定時(shí)間，然后以約3 000 r/min的轉(zhuǎn)速離心分離10 min。萃取體系分為2層，上層為萃入蛋白質(zhì)的反膠束層，下層為殘?jiān)?，除去殘?jiān)?，所得上清液用UV－1901紫外分光光度計(jì)在280 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(以萃取前的反膠束溶液作為空白樣)，然后與蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，得出蛋白質(zhì)的濃度，計(jì)算出不同條件下的蛋白前萃率[8]，蛋白前萃率按式(2)計(jì)算。

3種反膠束體系的前萃最優(yōu)工藝條件見表1。

表1 3種反膠束體系的最優(yōu)前萃工藝條件

1.3.6 后萃試驗(yàn)

取一定體積前萃試驗(yàn)制備的前萃液，加入等體積、一定KCl濃度、pH值的 KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液。在一定的溫度、功率條件下，超聲一定時(shí)間，然后在5 000 r/min條件下離心10 min，用梨形分液漏斗分液，下層水相即為后萃液。用UV－1901紫外分光光度計(jì)在280 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(以緩沖溶液作為空白樣)。然后與蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線比對(duì)，得出蛋白質(zhì)的濃度。從而可計(jì)算出蛋白后萃率[8]。蛋白后萃率按式(3)計(jì)算。

1.3.7 花生蛋白樣品的制備

AOT反膠束體系制備花生蛋白:按照1.3.5和1.3.6的方法計(jì)算不同反膠束體系萃取花生蛋白的前萃率和后萃率，然后用1.3.6制得的后萃液，用透析袋在4℃的條件下，透析48 h以上，其間換水6～8次，然后將透析好的蛋白質(zhì)水溶液在冷凍干燥機(jī)上面冷凍干燥得到花生蛋白的產(chǎn)品。

SDS反膠束體系制備花生蛋白的步驟同AOT反膠束體系制備花生蛋白。

DTAC反膠束體系制備花生蛋白的步驟同AOT反膠束體系制備花生蛋白。

1.3.8 不同花生蛋白的色差分析

使用美能達(dá)色彩色差計(jì)CR－400測(cè)定蛋白樣品的色澤，以L*a*b*法表示蛋白的色澤。L*范圍為0～100(從黑到白，表示明度)，a*(從綠到紅，－a～＋a)，b* (從藍(lán)到黃，－b～＋b)。3個(gè)方向三維立體分別評(píng)價(jià)。每個(gè)樣品測(cè)定3次，測(cè)定L、a、b值，3次結(jié)果取平均值，并用SAS軟件進(jìn)行顯著性分析。

1.3.9 不同花生蛋白的掃描電鏡顯微結(jié)構(gòu)研究

采用掃描電子顯微鏡(SEM)方法觀察花生分離蛋白的微觀結(jié)構(gòu)，并對(duì)不同方法制備的花生分離蛋白進(jìn)行比較。直接取適量樣品，用雙面膠固定在載玻片上，在150Ao下噴金，通過(guò)JSM－5610掃描電鏡在20 KV觀察、照相。

2 結(jié)果與討論

2.1 原料主要成分測(cè)定結(jié)果

原料中主要成分及其含量見表2。

表2 原料主要成分及質(zhì)量分?jǐn)?shù)(%)

2.2 蛋白質(zhì)定量分析標(biāo)準(zhǔn)曲線

繪制蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線是為了得出蛋白質(zhì)的濃度，從而可計(jì)算出不同條件下的蛋白前萃率。蛋白質(zhì)定量分析標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。

圖1 蛋白質(zhì)定量分析標(biāo)準(zhǔn)曲線

2.3 緩沖溶液pH值對(duì)花生蛋白后萃率的影響規(guī)律研究

分別配制 pH為7、7.5、8、8.5、9、9.5的KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液，按照1.3.6進(jìn)行操作。其中，AOT反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:超聲時(shí)間為40 min、超聲溫度40℃、超聲功率240 W、KCl濃度1.5 mol/L；SDS反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:超聲時(shí)間40 min、超聲溫度45℃、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L；DTAC反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:超聲時(shí)間20 min、超聲溫度30℃、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L。試驗(yàn)結(jié)果如圖2所示。

圖2 緩沖溶液pH值對(duì)花生蛋白后萃率的影響

由圖2可以看出，隨著緩沖溶液pH值的增大，花生蛋白后萃率先逐漸增大，然后減小。AOT反膠束體系的最佳pH值為8.5，SDS和DTAC反膠束體系的最佳pH值都為9，此時(shí)蛋白后萃率達(dá)到最大。后萃取過(guò)程中，水相的pH值高于蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)(pI)，蛋白質(zhì)所帶的電荷與反膠束內(nèi)壁所帶的電荷性質(zhì)相同，由于靜電斥力，使溶入反膠束的蛋白質(zhì)反向萃取出來(lái)。且pH值越高蛋白質(zhì)分子表面所帶電荷的密度越大，斥力越強(qiáng)，蛋白質(zhì)從反膠束內(nèi)釋放的速率越快，因此后萃率就越高。但是當(dāng)pH值過(guò)高時(shí)，蛋白質(zhì)易變性，會(huì)使蛋白質(zhì)的萃取率降低。

2.4 超聲時(shí)間對(duì)花生蛋白后萃率的影響規(guī)律研究

將超聲時(shí)間分別設(shè)定為 10、20、30、40、50、60 min，按照1.3.6進(jìn)行操作。其中，AOT反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為8.5、超聲溫度40℃、超聲功率240 W、KCl濃度1.5 mol/L；SDS反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲溫度45℃、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L；DTAC反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲溫度30℃、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L。試驗(yàn)結(jié)果如圖3所示。

圖3 超聲時(shí)間對(duì)花生蛋白后萃率的影響

由圖3可以看出，隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng)，蛋白后萃率先逐漸增大，再迅速減小。兩種陰離子表面活性劑AOT和SDS形成的反膠束體系，最佳萃取時(shí)間為40 min，而陽(yáng)離子表面活性劑DTAC形成的反膠束體系，最佳萃取時(shí)間為20 min，此時(shí)，蛋白后萃率達(dá)到最大值。很明顯，陽(yáng)離子表面活性劑形成的反膠束最佳萃取時(shí)間低于陰離子的。這可能與表面活性劑本身的結(jié)構(gòu)差異有關(guān)。

2.5 超聲溫度對(duì)花生蛋白后萃率的影響規(guī)律研究

將超聲溫度分別設(shè)定為25、30、35、40、45、50℃，按照1.3.6進(jìn)行操作。其中，AOT反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為8.5、超聲時(shí)間40 min、超聲功率240 W、KCl濃度1.5 mol/L；SDS反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間40 min、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L；DTAC反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間20 min、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L。試驗(yàn)結(jié)果如圖4所示。

圖4 超聲溫度對(duì)花生蛋白后萃率的影響

由圖4可以看出，隨著萃取溫度的升高，蛋白后萃率先逐漸增大，達(dá)到某個(gè)特定溫度后，蛋白后萃率達(dá)到最大值，再繼續(xù)升高溫度，后萃率有所減小。其原因是溫度升高時(shí)，分子運(yùn)動(dòng)速率加快，反膠束與水相之間的分子運(yùn)動(dòng)也加快，傳質(zhì)推動(dòng)力增大，加快了蛋白質(zhì)的萃取，因此萃取率升高。當(dāng)溫度繼續(xù)升高，萃取率變化不大，此時(shí)萃取已經(jīng)達(dá)到平衡，另外，溫度過(guò)高會(huì)導(dǎo)致蛋白變性。

2.6 超聲功率對(duì)花生蛋白后萃率的影響

將超聲功率分別設(shè)定為 150、180、210、240、270、300 W，按照1.3.6進(jìn)行操作。其中，AOT反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為8.5、超聲時(shí)間40 min、超聲溫度40℃、KCl濃度1.5 mol/L；SDS反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間40 min、超聲溫度45℃、KCl濃度1.5 mol/L；DTAC反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間20 min、超聲溫度30℃、KCl濃度1.5 mol/L。試驗(yàn)結(jié)果如圖5所示。

圖5 超聲功率對(duì)花生蛋白后萃率的影響

由圖5可以看出，隨著超聲功率的增大，蛋白后萃率先逐漸增大然后減小。原因是在后萃過(guò)程中存在較大的界面阻力，使用超聲波可以起到強(qiáng)化作用，超聲波功率越大，空化作用和機(jī)械作用越強(qiáng)烈，分子擴(kuò)散速度也就越大[9]，同時(shí)空化所產(chǎn)生的微射流會(huì)促進(jìn)蛋白質(zhì)向反膠束的表面擴(kuò)散，降低了蛋白從反膠束中向水相中擴(kuò)散的阻力，因此可以促進(jìn)蛋白質(zhì)的浸出和傳質(zhì)，提高蛋白質(zhì)的萃取率。但是，當(dāng)超聲功率足夠大時(shí)，增加了全脂花生粉中油脂的運(yùn)動(dòng)，從而阻礙了蛋白質(zhì)的滲出。

2.7 KCl濃度對(duì)花生蛋白后萃率的影響

分別配制 KCl濃度為 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mol/L的 KH2PO4－Na2HPO4緩沖溶液，按照1.3.6進(jìn)行操作。其中，AOT反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為8.5、超聲時(shí)間40 min、超聲溫度40℃、超聲功率240 W；SDS反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間40 min、超聲溫度45℃、超聲功率270 W；DTAC反膠束體系的后萃工藝條件設(shè)定為:緩沖溶液pH值為9、超聲時(shí)間20 min、超聲溫度30℃、超聲功率270 W。試驗(yàn)結(jié)果如圖6所示。

圖6 KCl濃度對(duì)花生蛋白后萃率的影響

由圖6可以看出，當(dāng)KCl濃度逐漸增大的過(guò)程中，蛋白后萃率迅速增大，隨著KCl濃度繼續(xù)增大，蛋白后萃率逐漸減小，并趨于平穩(wěn)。3種體系的最佳離子濃度均為1.5mol/L。這是由于隨著離子濃度的增大，反膠束內(nèi)表面的雙電層變薄，靜電引力也就減弱；另一方面，減小了表面活性劑極性頭之間的排斥作用，導(dǎo)致反膠束變小[9]。這兩方面的效應(yīng)都會(huì)使蛋白質(zhì)在反膠束中的溶解性下降，更容易從反膠束中反萃出來(lái)，從而后萃率得到提高。但是KCl離子濃度越大，反膠束的W0值則會(huì)越小，使得反膠束極性核所包含的蛋白質(zhì)隨著減少的水分而被帶出，故后萃率開始減??；另外，鹽濃度過(guò)高時(shí)，對(duì)蛋白質(zhì)會(huì)產(chǎn)生鹽析作用，也會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)后萃率降低[10]。

2.8 驗(yàn)證試驗(yàn)

根據(jù)以上的研究可得到3種不同反膠束體系的后萃工藝條件，根據(jù)單因素試驗(yàn)研究，并根據(jù)實(shí)際情況做適當(dāng)調(diào)整，做重復(fù)驗(yàn)證試驗(yàn)。得到了3種反膠束體系萃取花生蛋白的最佳后萃工藝條件及后萃率，如表3所示。

表3 3種反膠束體系萃取花生蛋白的最佳后萃工藝條件

2.9 不同反膠束體系制備的花生蛋白樣品色差分析結(jié)果

如表4所示，不同花生蛋白的色差分析中，AOT反膠束體系制備的花生蛋白L值最大，a值最小，可見PPI2的色澤是最好的。不同反膠束體系制備的花生蛋白與堿溶酸沉法制備的相比，其L、a、b值都存在顯著性差異。通過(guò)表4中的數(shù)據(jù)可以看出，AOT反膠束制備的花生蛋白的色澤最好，而堿溶酸沉法制備的花生蛋白的色澤最差。

表4 不同花生蛋白的色差分析結(jié)果

2.10 不同反膠束體系制備的花生蛋白的掃描電鏡照片(SEM)結(jié)果

不同反膠束體系制備的花生蛋白樣品的掃描電境照片如圖7所示。通過(guò)掃描電鏡照片可以看出，4種花生蛋白從微觀結(jié)構(gòu)上有些差異。堿溶酸沉法提取的花生蛋白主要呈片狀，也有球狀結(jié)構(gòu)，而不同反膠束體系、不同萃取工藝所制備的花生蛋白結(jié)構(gòu)均不相同，這可能與反膠束溶液的pH值，W0，離子強(qiáng)度以及表面活性劑所帶的電荷種類有關(guān)。如在反膠束溶液的pH值條件下，反膠束與蛋白質(zhì)之間產(chǎn)生親水、疏水作用，而使部分蛋白結(jié)構(gòu)發(fā)生變化，導(dǎo)致蛋白質(zhì)粒度減?。籛0的大小也影響這反膠束萃取蛋白質(zhì)分子質(zhì)量的大小，蛋白質(zhì)分子質(zhì)量大，蛋白質(zhì)的體積就大，在傳遞增溶過(guò)程中產(chǎn)生的障礙也越大，因此反膠束所萃取的蛋白質(zhì)粒度也較小。總之，研究說(shuō)明了反膠束特殊的微環(huán)境條件下，表面活性劑所帶的電荷與蛋白質(zhì)分子所帶的電荷產(chǎn)生靜電作用，蛋白質(zhì)分子所帶的電荷產(chǎn)生靜電作用，離子強(qiáng)度與蛋白質(zhì)之間產(chǎn)生靜電作用，表面活性劑在有機(jī)相中所形成的反膠束數(shù)目及大小等都會(huì)使蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生改變，如有序結(jié)構(gòu)α－螺旋，β－折疊及β－轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)的減少，無(wú)序結(jié)構(gòu)的增加，以及氨基酸的分解等變化，從而導(dǎo)致反膠束相制備的蛋白粒度較堿溶酸沉法制備的蛋白小，從而溶解度就較好。進(jìn)一步說(shuō)明了反膠束制備的花生蛋白較堿溶酸沉制備的好。

圖7 不同PPI樣品的掃描電鏡顯微照片

3 結(jié)論

3.1 在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上進(jìn)行了驗(yàn)證試驗(yàn)，得到了3種反膠束體系后萃花生蛋白的最佳工藝條件。AOT反膠束體系后萃取花生蛋白的最佳工藝條件為:緩沖溶液pH值8.5、萃取時(shí)間40 min、萃取溫度40℃、超聲功率240 W、KCl濃度1.5 mol/L，此時(shí)蛋白后萃率為83.17%；SDS反膠束體系后萃取花生蛋白的最佳工藝條件為:緩沖溶液pH值9、萃取時(shí)間40 min、萃取溫度45℃、超聲功率270 W、KCl濃度1.5 mol/L，此時(shí)蛋白后萃率為82.62%；DTAC反膠束體系后萃取花生蛋白的最佳工藝條件為:緩沖溶液pH值9、萃取時(shí)間20 min、萃取溫度30℃、超聲功率270 W、KCl濃度 1.5 mol/L，此時(shí)蛋白后萃率為73.18%。結(jié)果表明，AOT反膠束體系后萃取花生蛋白的萃取率最大。

3.2 通過(guò)對(duì)不同反膠束體系制備的花生蛋白的色差進(jìn)行分析，并與堿溶酸沉法制備的花生蛋白相比較，發(fā)現(xiàn)不同花生蛋白樣品的L、a、b值都存在顯著性差異。得出AOT反膠束體系制備的花生蛋白色澤是最好的，而堿溶酸沉法制備的花生蛋白的色澤較差。

3.3 掃描電鏡照片的結(jié)果顯示，堿溶酸沉法制備的花生蛋白的微觀結(jié)構(gòu)主要呈片狀，部分呈球狀，而反膠束體系制備的花生蛋白，粒度都明顯減小。

3.4 最適合萃取花生蛋白的反膠束體系是AOT反膠束體系。

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