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    甲床細胞體外培養(yǎng)的實驗研究

    2012-12-09 15:39:40陳世玖張麗杰倪少俊
    醫(yī)學(xué)綜述 2012年16期
    關(guān)鍵詞:甲床角蛋白角化

    高 峰,陳世玖,張麗杰,倪少俊,楊 軍,李 智

    (遵義醫(yī)學(xué)院第五附屬(珠海)醫(yī)院手外、整形科,廣東珠海519100)

    指甲再生來源于甲根和甲弧影下方的甲床,此處的甲床稱為甲母質(zhì)。甲床提供指甲向遠端生長的滑面,當(dāng)甲床受損后,新生的指甲會出現(xiàn)不整齊現(xiàn)象而影響美觀。因此,臨床工作者們不懈地努力研究,不同類型的甲床損傷采用何種方式修復(fù),術(shù)后能達到理想的效果。隨著顯微技術(shù)的發(fā)展,可根據(jù)情況選擇不同的方法,完善了甲床損傷的治療,如游離甲床移植術(shù)、皮瓣修復(fù)術(shù)、游離甲瓣修復(fù)術(shù)等。近些年,對甲床基礎(chǔ)的研究相對較少,本實驗旨在為深入研究甲床細胞奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 甲床上皮細胞組織塊

    培養(yǎng) 收集一名臨床志愿者因經(jīng)??漆t(yī)師檢查及超聲波檢查后發(fā)現(xiàn)胎兒死在宮內(nèi),進行立即引產(chǎn),取得胎兒手指(經(jīng)本人和家屬知情同意)。將20周以上胎兒手指放入70%乙醇中浸泡5 min,取出后用磷酸鹽緩沖液沖洗3遍。超凈工作臺內(nèi)4倍手術(shù)放大鏡下,切取甲床,放入含雙抗的磷酸鹽緩沖液中備用。將切取的甲床組織在培養(yǎng)皿內(nèi)用眼科剪將其剪切成1 mm2的小塊,均勻地平鋪于25 cm2培養(yǎng)瓶底部,組織塊與組織塊之間保持0.5 cm左右的距離,加入無血清角化細胞培養(yǎng)基,于37℃ CO2培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)3~4 h,待組織塊黏著牢固時,加入0.001~0.002 L培養(yǎng)液,然后翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,使培養(yǎng)液慢慢浸潤組織塊,再輕輕且緩慢翻轉(zhuǎn)正置培養(yǎng)瓶,使培養(yǎng)基剛好浸過組織塊平面,以不令組織塊漂起為標準。再于37℃ CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。24~48 h后補加培養(yǎng)液0.002~0.003 L,培養(yǎng)的前2 d應(yīng)避免過多觀察和晃動培養(yǎng)瓶,以防組織塊脫壁。以后每天觀察組織塊的變化,21 d仍無細胞生長者予以淘汰。

    1.2 甲床成纖維細胞組織塊培養(yǎng) 收集、獲得組織塊及培養(yǎng)方法同1.1段所述。采用含10%血清的DMEM培養(yǎng)基。

    1.3 細胞鑒定 甲床上皮細胞檢測角蛋白17,免疫組織化學(xué)染色法,按試劑盒操作說明進行。成纖維細胞免疫熒光顯微鏡檢測波形蛋白表達方法按公司產(chǎn)品說明書并按參考文獻[1]進行。

    2 結(jié)果

    2.1 甲床細胞生長情況

    2.1.1 甲床上皮細胞 倒置顯微鏡觀察,2~3 d左右從組織塊中游出,并在組織塊周圍形成生長暈,能游出細胞的組織塊占貼附組織塊的比例約1/3,13 d左右細胞生長密度可達瓶底的70%~80%,扁圓形或多角形細胞,呈鋪路石樣排列,其數(shù)目可達1×1010~1 ×1011個/L。

    2.1.2 甲床成纖維細胞 2 d可見組織塊周圍有的細胞游離出來,呈放射狀,3 d觀察可見組織塊周圍有許多生長的細胞,呈圓梭形、長梭形、多角形等成纖維細胞的特征,胞體豐富,胞質(zhì)均勻,細胞核清晰可見,11 d左右細胞生長密度可達瓶底的70%~80%。其數(shù)目可達1×1010~1×1011個/L。

    2.2 甲床細胞的免疫細胞化學(xué)鑒定 培養(yǎng)的甲床上皮細胞70%以上特異性角蛋白17抗體染色陽性,證明培養(yǎng)的細胞為甲床上皮細胞;培養(yǎng)的甲床成纖維細胞抗波形蛋白抗體染色陽性,說明培養(yǎng)的細胞為成纖維細胞。

    3 討論

    指(趾)甲和甲床作為皮膚的附屬組織,具有與皮膚不同的組織結(jié)構(gòu),并由此具有特殊的功能,如對指功能和美容作用等。指(趾)甲由外胚層分化而來。第13周時,發(fā)育中的甲單位的上皮能夠分成四層:基底層、棘細胞層、顆粒層和角質(zhì)層,被稱為甲床上皮。在20周時甲板完全覆蓋甲床,并且甲床上皮完全失去顆粒層,此時,胎兒的甲與成人的甲基本相似。所以,本研究選擇此時期胎兒甲床作為標本。甲床兩種主要功能細胞,分別為上皮細胞和成纖維細胞,它對甲床的再生及形態(tài)的維持,起重要作用。

    原代細胞的獲取,有組織塊培養(yǎng)法及消化法兩種。由于大多數(shù)情況下難以獲得大量的甲床標本,可以根據(jù)標本的大小來決定培養(yǎng)方法[2]。如果獲得的標本較大,應(yīng)用胰酶消化法;在獲得的標本較小的情況下,則應(yīng)用組織塊法培養(yǎng)。甲床上皮細胞屬于角化細胞,貼壁生長相對困難,為了促進角化細胞貼壁,不同學(xué)者采用過不同的方法。Nagae等[2]應(yīng)用無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)甲床細胞成功,證明角化細胞培養(yǎng)液是甲床細胞的良好培養(yǎng)基。劉東昕等[3]采用胰酶消化法及應(yīng)用無血清角化細胞培養(yǎng)基培養(yǎng)甲床上皮細胞,獲得成功。De Berker等[4]證實了甲基質(zhì)部位上皮細胞增殖旺盛,是甲板的主要來源。

    細胞角蛋白只在上皮細胞或外胚層起源的細胞中表達,在不同細胞中有不同亞型表達[5]。角蛋白是上皮細胞主要的結(jié)構(gòu)蛋白和分化的標志產(chǎn)物。角蛋白分為兩大類,即皮膚型角蛋白和毛發(fā)角蛋白。皮膚型角蛋白主要表達于皮膚等部位,毛發(fā)型角蛋白主要表達于毛發(fā)、指甲等部位。Berker等[6]的實驗表明,在甲床的上皮細胞中表達K17蛋白??筀17免疫組織化學(xué)染色,證實甲床上皮細胞,同時也說明甲床上皮細胞在體外培養(yǎng)條件下,蛋白的表達沒有明顯改變。劉東昕等[3]也通過實驗研究應(yīng)用抗K17免疫組織化學(xué)染色,證實甲床上皮細胞。

    本實驗應(yīng)用組織塊培養(yǎng)法成功地培養(yǎng)出甲床上皮細胞及甲床成纖維細胞,也證實了甲床上皮細胞在無血清角化細胞培養(yǎng)液中生長良好。雖與酶消化法相比,獲取細胞時間上相多較長,但組織塊法為傳統(tǒng)的細胞培養(yǎng)方法,容易操作,成功率高。而酶消化法的濃度及消化時間難以掌握,不易獲取,實驗成功率低。組織塊培養(yǎng)時應(yīng)注意以下幾點:①實驗材料要新鮮,從活體分離材料后要低溫保存,并盡快進行細胞分離實驗;②遵守細胞培養(yǎng)的無菌操作;③分離細胞時,注意動作要輕柔,不要傷到細胞組織,組織塊邊緣盡量平整有利于細胞游離;④培養(yǎng)過程中避免組織塊干燥脫水;⑤2 d內(nèi)避免過多觀察和晃動培養(yǎng)瓶,以防組織塊脫壁。

    甲床缺損是常見的手外傷類型,隨著顯微外科的發(fā)展,臨床工作者在不斷尋求甲床修復(fù)的最佳方法。雖然現(xiàn)在甲床修復(fù)方式較多,仍存較多缺點,如游離指(趾)甲床移植再造手指甲床,成活后指甲形態(tài)較美觀,卻會失去另一個相對次要的指(趾)甲;游離甲瓣修復(fù)術(shù),可使傷指再生指甲、恢復(fù)手指感覺,卻需要一個足趾付出較大的代價。所以不管采用何種修復(fù)方法,均存在一定弊端。如果體外構(gòu)建組織工程甲床成功,將會避免以損害其他組織為代價。本研究體外培養(yǎng)甲床細胞成功,為進一步構(gòu)建組織工程甲床奠定了基礎(chǔ)。

    [1] Aicher A,Heeschen C,Mohanpt M,et al.Nicotine strongly activatesdendritic cell-mediated adaptive immunity-potential role for progressionof atherosclerotic lesions[J].Circulation,2003,107 (4):604-611.

    [2] Nagae H,Nakanishi H,Urano Y,et al.Serial cultivation of human nail matrix cells under serum-free conditions[J].J Dermatol,1995,22(8):500-566.

    [3] 劉東昕,路來金,王虎.胰酶分次消化及無血清角化細胞培養(yǎng)基培養(yǎng)甲床上皮細胞的體外實驗[J].中國臨床康復(fù),2006,10 (5):40-41.

    [4] De Berker D,Angus B.Proliferative compartments in the normal nail unit[J].Br J Dermatol,1996,135(4):555-559.

    [5] Carmona FD,Ou J,Jiménez R,et al.Development of the cornea of truemoles morphogenesis and expressionof PAX6 and cytokeratins[J].J Anatomy,2010,217(5):488-500.

    [6] De Berker D,Wojnarowska F,Sviland L,et al.Keratin expression in the normalnail unit:markers of regional differentiation[J].Br J Dermatol,2000,142(1):89-96.

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