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    HBV感染恢復期血清標志物與肝細胞HBV cccDNA檢測對照*

    2012-11-28 12:10:14宋閩寧黃文琪洪美珠范榮華吳衛(wèi)兵李偉杰
    中西醫(yī)結合肝病雜志 2012年6期
    關鍵詞:拷貝抗病毒肝細胞

    宋閩寧 黃文琪 閔 峰 洪美珠 范榮華 吳衛(wèi)兵 張 麗 李偉杰

    1.廈門大學附屬成功醫(yī)院感染科/中國人民解放軍第174醫(yī)院感染科 (福建廈門,361003)

    2.中國人民解放軍第302醫(yī)院

    慢性乙型肝炎 (CHB)抗病毒治療是目前的主要治療手段,作為主要抗HBV的核苷類由于有停藥時間不易確定的不利因素,臨床難以操作。為了解掌握理想的停藥時機,將CHB患者不同血清學狀況與肝組織HBV cccDNA進行檢測對照,報告如下。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料 39例患者均為2008年4月至2010年4月在廈門大學附屬成功醫(yī)院就診的住院及門診患者。女9例,男30例,年齡平均56.2歲。其中13例為既往HBV感染自然恢復者,13例為乙型肝炎肝硬化肝癌患者,13例為CHB患者。診斷符合2010年中華醫(yī)學會修訂的《慢性乙型肝炎防治指南》中的診斷標準[1],39例中的26例乙型肝炎肝硬化肝癌或CHB患者,正在接受抗病毒治療的9例,曾接受抗病毒治療3例,14例未接受抗病毒治療。

    1.2 方法

    1.2.1 檢測指標 住院患者于入院第二天收集患者血清標本做以下檢測:HBV DNA用熒光定量PCR方法檢測,試劑由達安公司提供。靈敏度為1000拷貝/ml。美國PE7000實時熒光擴增儀,低于1000拷貝/ml為檢測值陰性統(tǒng)計。HBV-M檢測試劑由新創(chuàng)公司提供。肝生化檢測用美國全自動生化檢測儀及配套試劑完成。CHB患者行肝臟穿刺組織活檢。HBV感染自然恢復者及乙型肝炎肝硬化肝癌患者肝組織取自手術標本。

    病理檢查由我院病理科完成。

    1.2.2 HBVcccDNA檢測方法:①石蠟包埋組織切片HBV DNA的提取:甲醛固定石蠟包埋 (FFPE)組織切片時,嚴格防止交叉污染。經二甲苯及梯度酒精脫蠟后,通過試劑盒提取DNA,操作嚴格按照說明書進行。提取DNA儲存于-20℃冰箱中備用。用試劑盒提取血清DNA儲存于-20℃冰箱中備用。②PSAD酶消化:按照說明所述該酶所需環(huán)境及溫度,設定反應體系為樣品 DNA8.3μl,PSAD酶0.2μl,ATP solution 0.5ul,buffer1ul。反應條件為37℃30分鐘,70℃滅酶活性30分鐘。③滾環(huán)擴增 (Rolling circular amplification,RCA)反應:根據我國常見的HBV基因型B,C基因組全序列,設計引物共四對。反應體系與循環(huán)條件參照文獻進行。跨缺口熒光定量PCR采用Taqman探針real-timePCR法,根據cccDNA結構特性,設計跨HBV缺口上下游引物Pup82,Pdown83和探針1,擴增長度為236bp,擴增產物為cccDNA。同時設計內參beta-actin的ta-up 3引物be,beta-down3和探針3,擴增內參 beta-actin基因。檢測所需模板用量為 3μl,dNTP5μl,MgCl2,3.5μl,PCR buffer 2.5μl,相 應 引 物 及 Taq 酶 各0.5μl,剩余體積用雙蒸水補足,總體系為25μl。反應時間僅1小時20分鐘。標準曲線由自行構建的已知濃度的質粒DNA梯度稀釋后建立。進行梯度稀釋鑒定該方法的靈敏度,并對該方法進行批內和批間重復性檢測。定量測出β-actin的量,除以6.667(單個肝細胞中所含有的β-actin量),最后得出每個肝細胞中所含有的HBV cccDNA拷貝數。以檢出單個肝細胞中所含有HBV cccDNA拷貝數為陽性。實驗由中國人民解放軍302醫(yī)院肝炎中心完成。

    1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 12.0統(tǒng)計軟件包分析,率的比較用卡方檢驗或Fisher's精確概率法;計量資料以表示,采用t檢驗。

    2 結果

    2.1 各組HBV血清標志物檢測結果與肝細胞HBVcccDNA結果對照 見表1。將乙型肝炎肝硬化肝癌、CHB及既往HBV感染各組HBV血清標志物 (HBV-M)相對照;結果顯示肝癌及CHB患者e抗體陽性分別為12/13例:9/13例,血HBV DNA陽性分別為6/13例:8/13例,但肝細胞HBVcccDNA均檢出陽性 (100%)。既往乙肝病毒感染13例中,HBsAg陰性,抗HBs及/或抗HBc陽性各7和6中,仍有3例 (23%)肝細胞中HBVcccDNA陽性。與另兩組對照,χ2等于5.5(P<0.01)。具顯著差異。

    表1 3組患者血清HBV-M與肝組織HBV cccDNA比較[%(n)]

    2.2 血清HBV-M與肝臟HBV cccDNA總量與細胞定量比較見表2。將既往HBV感染患者血清標志物存在狀況與肝組織HBV cccDNA定量對比,抗-HBs陽性組7例,肝組織HBV cccDNA總量102拷貝/ml,低于抗-HBe陽性及抗-HBs陽性組的106拷貝/ml和105拷貝/ml,t=3.7、3.3(P<0.05),有顯著差異???HBs陽性組肝細胞HBVcccDNA陰性,而抗-HBe陽性并有抗HBs陽性組分別為105拷貝/ml和103拷貝/ml,與前者比較,t=4.5、4.0(P<0.01),差異有非常顯著性意義。

    表2 血清HBV-M與肝組織HBV cccDNA總量與細胞定量比較(copies/ml,,μg/L)

    表2 血清HBV-M與肝組織HBV cccDNA總量與細胞定量比較(copies/ml,,μg/L)

    與抗-HBs陽性比較,*P<0.05(t=3.7、3.3),**P<0.01(t=4.5、4.0)

    2.3 HBV感染清除期血清標志物與CHB治療應答組肝組織HBV cccDNA比較 見表3。將既往HBV感染恢復期血清13例,HBsAg及HBV DNA均陰性,其中e抗體陽性6例,余為抗HBc陽性。肝組織HBV cccDNA陽性3例。CHB核苷類治療后應答,盡管HBV DNA陰性,e抗體陽性,肝組織HBV cccDNA仍均檢出陽性。

    表3 既往HBV感染與CAH治療應答血清標志物與肝組織HBVcccDNA對比[n(%)]

    3 討論

    我國慢性乙型肝炎人數眾多,抗病毒達到我國CHB防治指南建議的治療終點后停藥容易復發(fā),目前提倡長時間服藥,但核苷類長期用藥又難免發(fā)生耐藥。cccDNA是HBV前基因組RNA復制的原始合成模板,是HBV持續(xù)感染的關鍵因素。HBV感染宿主肝細胞后,其基因組進入肝細胞先生產HBV cccDNA,然后以HBV cccDNA為模板轉錄裝載成HBV rcDNA釋放入血。目前的抗病毒藥對其影響甚微。檢測肝組織HBV cccDNA對HBV的復制及感染狀態(tài)的建立具有十分重要的意義[1],可在一定程度上了解患者病情進展,對抗病毒藥物療效進行判斷,確定治療終點。

    應用石蠟包埋組織切片DNA及血清DNA的提取技術,敏感的滾環(huán)擴增反應結合實時PCR擴增技術[2],研究模版消亡時間與機制的關系,尋求預測血清學及組織復發(fā)及停藥指征。將CHB患者核苷類抗病毒治療前、應答后肝組織HBV cccDNA與HBeAg轉陰或轉換及HBV DNA的關系進行研究,結果顯示:既往HBV感染13例,抗-HBs及抗-HBc陽性各7和6例中,HBsAg陰性,仍有3例肝細胞中HBV cccDNA陽性。抗-HBs陽性組,肝細胞HBV cccDNA陰性,低于抗-HBe陽性及抗-HBs陽性組,χ2等于5.5(P<0.01),具有顯著差異???HBs陽性組肝組織HBV cccDNA總量,低于抗-HBe陽性及抗-HBs陽性組,t=3.7、3.3(P<0.05),有顯著差異。抗-HBs陽性組肝細胞HBV cccDNA檢測陰性,亦低于抗-HBe陽性及抗HBs陽性組,t=4.5、4.0(P<0.01),差異非常顯著。CHB核苷類治療后全應答,盡管HBV DNA陰性,抗-HBe陽性,肝組織HBV cccDNA仍均為陽性。HBsAg及HBV DNA均陰性的既往HBV感染者,肝組織HBV cccDNA陽性仍占23%。本研究的既往HBV感染組系自然恢復病例,CHB抗病毒治療應答病例目前難以達到類似臨床效果。

    本研究資料顯示:血清HBsAg與肝組織HBV cccDNA具良好相關性[3~4]。目前我國乙肝抗病毒治療主要以干擾素及核苷類兩種類型,國外多個慢性乙型肝炎治療指南已建議以HBsAg陰轉為治療終點。而我國實際國情是無論何種抗病毒藥HBsAg陰轉率均不高,因此,應長程抗病毒治療。不能達成HBsAg陰轉的病例,治療終點就無法界定[5~6],復發(fā)及耐藥在所難免。治療及復發(fā)交錯的總病程可能最終的結果是肝臟病理損害的逐漸加重。

    [1]LEVERERO,M POLLICINO T,PETERSEN J,et al.Control of cccDNA function in hepatitis B virus infection [J].J Hepatol,2009,51(5):581-592.

    [2]ZHONG Y,HAN J,ZOU Z,et al.Quantitation of HBV covalently closed circular DNA in micro formalin fixed paraffin-embedded liver tissue using rolling circle amplification in combination with real-time PCR[J].Clin Chim Acta,2011 Oct,9,412(21-22):1905-11.

    [3]TAKKENBERG RB, ZAAIJER HL, MOLENKAMP R, et al.Validation of a sensitive and specific real-time PCR for detection and quantitation of hepatitis B virus covalently closed circular DNA in plasma of chronic hepatitis B patients [J].J Med Virol,2009,81(6):988-995.

    [4]李瑩,韓濤,馬曉艷,等.原發(fā)性肝細胞癌患者乙型肝炎病毒表面抗原與肝組織HBV cccDNA水平的相關性 [J].中國病毒病雜志,2011,01:32-34.

    [5]LUTGEHETMANN M,VOLZ T,KOPKE A,et al.In Vivo Proliferation of Hepadnavirus Infected Hepatocytes Induces Loss of Covalently Closed Ciosed Circular DNA in Mice [J].Heoatology,2010,52(1):16-24.

    [6]KIM JW,LEE SH,PARK YS,et al.Replicative activity of hepatitis B virus is negatively associated with methylation of covalently closed circular DNA in advanced hepatitis B virus infection [J].Intervirology,2011,54(6):316-25.

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