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      小鵝瘟病毒VP3基因的原核表達

      2012-11-23 06:16:20趙文婧黃京愛王暖成樸相哲
      中國獸醫(yī)雜志 2012年3期
      關(guān)鍵詞:小鵝條帶克隆

      趙文婧,魯 承,黃京愛,王暖成,樸相哲

      (1.延邊大學(xué)農(nóng)學(xué)院動物醫(yī)學(xué)系,吉林 延吉133000;2.吉林省延吉市畜牧防疫站,吉林 延吉133000;3.吉林省延吉市動物衛(wèi)生檢疫站,吉林 延吉133000)

      小鵝瘟是由小鵝瘟病毒(GPV)引起的主要侵害4~20日齡雛鵝的一種烈性傳染病,該病病程短,傳染性強,死亡率高,給養(yǎng)鵝業(yè)造成了嚴(yán)重的危害。是由我國學(xué)者方定一于1956年在江蘇揚州首次發(fā)現(xiàn)的[1]。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),VP3基因是小鵝瘟病毒核衣殼的主要成分,約占總蛋白含量的80%,具有較高的保守性,能夠誘導(dǎo)機體產(chǎn)生中和抗體,是GPV主要保護性抗原[2]。本試驗旨在克隆與表達小鵝瘟VP3基因,為進一步研制單克隆抗體和基因工程疫苗奠定一定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 病毒與菌種 GPV 為本實驗室從延邊某養(yǎng)鵝場發(fā)生小鵝瘟的病死鵝脾臟中分離。大腸埃希菌DH5α、BL-21、pGEX-4T-1菌株由本實驗室保存。

      1.2 主要試劑 限制性內(nèi)切酶BamHⅠ、XhoⅠ、DNA凝膠回收試劑盒、ExTaq,均購自寶生物工程(大連)有限公司,其他為國產(chǎn)分析純。

      1.3 引物的設(shè)計與合成 根據(jù)GenBank發(fā)表的小鵝瘟病毒(GPV)B株全基因序列,針對VP3基因保守區(qū),利用Oligo 6.0和Primer Premier 5.0軟件設(shè)計合成了1對引物,由寶生物工程(大連)有限公司合成,擴增片段長度為1 457bp,下劃線為BamHⅠ、XhoⅠ酶切位點,序列如下:

      1.4 DNA的提取 DNA的提取按文獻[3]方法進行。

      1.5 PCR擴增 反應(yīng)體系:ddH2O:12.3μL,10xPCR Buffer:2μL,dNTP:1μL,P1:1μL,P2:1μL,DNA:2.5μL,ExTaq:0.2μL。

      反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性5min,94℃變性1min,53℃退火45s,72℃延伸2min,進行35個循環(huán),最后于72℃再延伸5min。

      取5μL PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.6 克隆質(zhì)粒pMD-VP3的構(gòu)建及鑒定 用DNA凝膠回收試劑盒進行純化回收VP3基因片段并將該片段與克隆載體pMD-18Tsimple連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至DH5α感受態(tài)細胞。挑取陽性克隆子接種于Amp/LB中,220r/min 37℃過夜,提取重組質(zhì)粒后分別進行PCR及酶切鑒定。鑒定正確后送往上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進行序列測定。

      1.7 重組表達質(zhì)粒的pGEX-VP3的構(gòu)建及鑒定將鑒定正確的pMD-VP3經(jīng)BamHⅠ、XhoⅠ雙酶切后,將目的片段亞克隆至pGEX-4T-1中,構(gòu)建重組表達質(zhì)粒的pGEX-VP3。并將該質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入BL21感受態(tài)細胞中,經(jīng)PCR和雙酶切鑒定為陽性的重組質(zhì)粒送往上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進行測序鑒定。

      1.8 重組質(zhì)粒的誘導(dǎo)表達 將已經(jīng)鑒定為陽性的重組菌,用1mmol/L的IPTG進行誘導(dǎo)表達。分別在2、4、6、8h取樣,應(yīng)用SDS-PAGE電泳對蛋白的表達情況進行檢測。

      1.9 Western-blot分析 將表達的蛋白進行SDSPAGE后轉(zhuǎn)印至NC膜上,一抗為1∶200稀釋的小鵝瘟陽性兔血清,二抗為1∶2 000稀釋的HRP-羊抗兔IgG,進行 Western-blot分析。

      1.10 包涵體的鑒定 按每克濕菌加入3mL PBS,反復(fù)凍融3次。采用超聲裂解法,裂解后的菌液4℃12 000r/min 5min。上清、沉淀分別進行SDSPAGE電泳,檢測重組蛋白存在形式。

      2 結(jié)果

      2.1 PCR擴增 產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,在1 457bp處出現(xiàn)目的條帶,與預(yù)期片段大小相符(見圖1)。

      2.2 克隆質(zhì)粒的PCR鑒定 將提取的克隆質(zhì)粒進行PCR鑒定,在1 457bp處有一清晰的條帶,與預(yù)期片段大小一致(見圖2)。

      2.3 克隆質(zhì)粒的酶切鑒定 克隆質(zhì)粒經(jīng)BamHⅠ、XhoⅠ雙酶切得到兩條特異性基因片段,1條約為1 457bp,另1條約為2 700bp,所得結(jié)果與理論值相符(見圖3)。測序結(jié)果表明,克隆的目的片段與GenBank中的核苷酸序列同源性為96.8%,證明成功地克隆了小鵝瘟VP3基因。

      2.4 重組質(zhì)粒pGEX-VP3的PCR鑒定及酶切鑒定 用1.5%瓊脂糖凝膠分析PCR產(chǎn)物,結(jié)果擴增出一條1 457bp的目的條帶,將重組表達質(zhì)粒經(jīng)BamHⅠ和XhoⅠ酶切鑒定,得到了約4 900bp和1 457bp兩條條帶,得到的片段與預(yù)期片段相符(見圖4)。序列測定結(jié)果顯示,氨基酸序列與克隆序列結(jié)果一致。經(jīng)DNAMAN分析及BLAST進行同源性比較,氨基酸的同源性為96%。

      2.5 重組質(zhì)粒的誘導(dǎo)表達 經(jīng)12%的聚丙烯酰胺凝膠電泳分析,在81ku處有一條特異蛋白條帶,與預(yù)期的蛋白分子量大小一致。重組菌株37℃誘導(dǎo)表達8h的表達量最高(見圖5)。

      2.6 Western-blot分析 表達產(chǎn)物轉(zhuǎn)至NC膜上后,與小鵝瘟陽性血清反應(yīng),在81ku處出現(xiàn)1條陽性反應(yīng)帶。表明該蛋白為小鵝瘟特異性蛋白且具有很好的反應(yīng)原性。

      2.7 蛋白存在形式的鑒定 由圖6可見,重組蛋白大部分以包涵體的形式存在于沉淀中,上清液中較少。

      圖6 重組菌裂解后上清與沉淀的SDS-PAGE電泳

      3 討論

      GPV屬于細小病毒科、細小病毒屬成員,核酸為單鏈、線性DNA,約為5 000bp,其中VP3基因全長1 605bp,編碼534個氨基酸。通過對基因組的結(jié)構(gòu)分析表明具有高度的保守性,具有較好的免疫原性[4]。

      本試驗采用的原核表達系統(tǒng)異源蛋白具有細菌生長快、菌體密度高、成本相對低廉、操作方法簡便等優(yōu)點[5]。大腸桿菌的全部基因序列測定工作已完成,遺傳背景清楚,在多數(shù)科研工作中是蛋白表達的首選宿主[6-9]。本試驗為了提高外源基因表達的穩(wěn)定性和產(chǎn)量,采用了融合表達蛋白載體pGEX-4T-1。載體的SD(Shine-Dalgarno)序列及核糖體結(jié)合位點(RBS)對基因的轉(zhuǎn)錄和翻譯效率有很大的影響,而pGEX質(zhì)粒的多克隆位點位于GST基因之后,因此不會改變載體的SD序列及RBS。蛋白純化條件溫和,可以直接從細菌裂解液中用固定化谷胱甘肽將它吸附,無變性劑的加入,最大限度地保持了蛋白的天然構(gòu)象,有利于保持蛋白活性。小鵝瘟VP3基因重組蛋白主要是以包涵體形式存在,重組蛋白以包涵體形式表達??杀苊饧毎麅?nèi)蛋白水解酶的作用,增加了產(chǎn)物的穩(wěn)定性,有利于目的蛋白的富集和純化。

      目前本病的防治主要靠疫苗免疫和卵黃抗體、抗血清,其中疫苗免疫主要以弱毒疫苗為主,但在生產(chǎn)實踐中效果不夠理想,因此,研制新型疫苗具有廣闊的發(fā)展前景。本研究成功表達了小鵝瘟病毒主要保護性抗原VP3基因,為進一步研制單克隆抗體和基因工程疫苗奠定一定基礎(chǔ)。

      [1]方定一.小鵝瘟介紹[J].中國畜牧獸醫(yī)雜志,1962,8:19-20.

      [2]Richard E G.Diseases of poultry[M].11st ed.Ames:Iowa State University Press,2003:367-374.

      [3]薩姆布魯克J,拉塞爾D W.分子克隆實驗指南[M].3版.北京:科學(xué)出版社,2002.

      [4]邢明偉,王君偉,賀云霞.鵝細小病毒NS2基因的克隆與序列分析[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報,2003(3):9.

      [5]Kroos L,Maddock J R.Prokaryotic Development:Emerging Insights[J].J Bacteriol,2003,185(4):1128-1146.

      [6]Wal lner M,Gruber P,Radauer C,etal.Lab scale and medium scale production of recombinant al lergens in Escherichia coli[J].Methods,2004,32(3):219-226.

      [7]Balbas P.Understanding the art of producing protein and nonprotein molecules in Escherichia coli[J].Mol Biotechnol,2001,19(3):251-267.

      [8]Olins P O,Lee S C.Recent advances in heterologous gene expression in Escherichia coli[J].Curr Opin Biotechnol,1993,4(5):520-525.

      [9]Makrides S C.Strategies for achieving high-level expression of genes in Escherichia coli[J].Microbiol Rev,1996,60(3):512-538.

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