馬 雯,尹壽偉,唐傳核,楊曉泉
(華南理工大學(xué)輕工與食品學(xué)院,廣東廣州510640)
?;瘜κ|豆分離蛋白熱學(xué)特性的影響研究
馬 雯,尹壽偉*,唐傳核,楊曉泉
(華南理工大學(xué)輕工與食品學(xué)院,廣東廣州510640)
從參與?;磻?yīng)基團的視角,運用熱分析(DSC)技術(shù),研究了不同?;A段蕓豆分離蛋白熱學(xué)性質(zhì)的變化規(guī)律。蕓豆分離蛋白(KPI)的?;^程存在兩個主要的?;A段,酸酐-蛋白比為0~0.1(乙?;┖?~0.2(琥珀酰化)g/g,為ε-氨基(Lys)?;A段(N-酰化);再增加酸酐與蛋白比,ε-氨基?;就瓿?,反應(yīng)進入羥基(Thr,Ser)?;A段(O-酰化)。在N-酰化階段,琥珀酰化誘導(dǎo)KPI的熱穩(wěn)定性增加,而焓變(ΔH)略有降低,乙?;挥绊慘PI的熱穩(wěn)定性和焓變(ΔH);羥基?;A段,?;瘜?dǎo)致KPI變性溫度(Td)降低,伴隨焓變(ΔH)急劇下降。
蕓豆分離蛋白,酰化,熱學(xué)特性
Phaseolus屬豆類是一類豐富而優(yōu)質(zhì)的植物蛋白資源,具有相對均一的蛋白組成,獨特的結(jié)構(gòu)特點,日益引起國內(nèi)外食品工作者的關(guān)注。蕓豆是Phaseolus屬豆類中具有代表性的蛋白資源,其產(chǎn)量僅次于大豆蛋白。蕓豆籽粒富含的蛋白質(zhì)(20%~30%干基),氨基酸組成相對較均衡[1]。清蛋白(11.5%~31%)和球蛋白(46%~81%)是蕓豆籽粒的主要貯藏蛋白,其中蕓豆球蛋白(Phaseolin)占總球蛋白的76%以上;另一種球蛋白是植物凝集素[2]。蕓豆球蛋白具有良好的功能特性,而分離蛋白(KPI)功能特性相對較差,這源于分離蛋白制備過程中的酸堿誘導(dǎo)的蛋白構(gòu)象改變。分離蛋白是豆類蛋白資源(如大豆)的主要利用形式[2],蕓豆分離蛋白較差的功能特性在一定程度上限制其在食品加工中的應(yīng)用,因而對蕓豆分離蛋白改性可以增進蛋白資源的利用。此外,較低的消化性能也是制約蕓豆蛋白資源利用的重要因素(Invitrodigestibility)[3]。本研究小組采用?;纳屏耸|豆分離蛋白功能特性和體外消化性能[3]。?;揎椖茱@著改善食物蛋白的功能性,如王月等采用四元二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計實驗法優(yōu)化出琥珀酰化大豆分離蛋白溶解性的最佳工藝條件[4];王喜波等采用超聲輔助琥珀酰化技術(shù)有效提高大豆蛋白的乳化活性[5]。?;纳剖|豆蛋白功能性和消化性能的同時,可能造成蛋白結(jié)構(gòu)構(gòu)象的改變。琥珀酰化引入帶負電荷的親水性基團,乙酰化過程中引入的是中性的疏水性基團,會導(dǎo)致蛋白分子間/分子內(nèi)側(cè)鏈基團之間的相互作用發(fā)生改變,從而影響到蛋白的熱穩(wěn)定性和有序結(jié)構(gòu)。DSC技術(shù)是一種重要的研究蛋白構(gòu)象穩(wěn)定性和變性程度的技術(shù)手段。程序升溫過程中,破壞氫鍵會產(chǎn)生吸熱峰,破壞疏水性相互力或蛋白發(fā)生聚集產(chǎn)生放熱峰[6]。在蛋白的DSC圖譜中,變性溫度(Td)反映蛋白的熱穩(wěn)定性,焓變(ΔH)是指吸熱峰的面積,代表未變性蛋白的比例,與蛋白的有序結(jié)構(gòu)相關(guān)[7]。本研究從參與?;磻?yīng)的基團角度入手,通過探討酸酐與蛋白比對酰化蕓豆分離蛋白熱學(xué)特性的影響,建立酰化與蛋白熱穩(wěn)定性(Td)和焓變(ΔH)之間的關(guān)聯(lián)性,從而為這一類蛋白資源的利用打下理論基礎(chǔ)。
蕓豆分離蛋白 自制;琥珀酸酐、乙酸酐 購自Sigma公司;其他化學(xué)試劑 均為分析純。
Q100 DSC 美國TA Instruments公司;2501PC紫外-可見分光光度計 日本島津;CR22G高速冷凍離心機 日本日立;Alphal-4冷凍干燥機 德國Christ公司。
1.2.1 蕓豆分離蛋白制備工藝流程 稱取100g脫脂蕓豆粉分散于2L去離子水(1∶20,w/v),用2mol/L NaOH溶液調(diào)分散液的pH至8.0,間歇添加NaOH溶液以維持溶液的pH,室溫下攪拌2h后,于20℃離心(12000×g,30min),棄其沉淀物,調(diào)節(jié)上清液的pH為4.5,而后于20℃離心(6000×g,20min)。所得沉淀物經(jīng)兩次水洗后(pH=4.5),分散于適量的去離子水中,用2mol/L的NaOH溶液將pH調(diào)到7.0,冷凍干燥后于-20℃貯存?zhèn)溆?。蕓豆分離蛋白(KPI)的蛋白含量為89%(干基)。
1.2.2 ?;幚?琥珀酰化根據(jù)Franzen等報道的方法[8],稍加改動。稱取2g蕓豆分離蛋白分散在80mL去離子水中(蛋白濃度為2.5%,w/v)。在室溫下磁力攪拌1h后,用2mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)溶液pH至8.0。向溶液逐漸添加琥珀酸酐,維持溶液的pH在7.5~8.5的范圍。待溶液pH穩(wěn)定在8.0后,再繼續(xù)反應(yīng)1h,使?;磻?yīng)完全,然后用1mol/L HCl溶液將溶液pH調(diào)至7.0,以終止反應(yīng)。反應(yīng)液在4℃透析48h以除去殘余的琥珀酸酐,之后冷凍干燥得到琥珀?;|豆蛋白。對照樣品的制備過程中不添加酰化試劑,乙酰化蛋白的制備過程中用乙酸酐代替琥珀酸酐,其余操作與琥珀酰化蛋白制備一樣。
1.2.3 氨基?;鹊臏y定 氨基酰化度(N-?;龋┑臏y定根據(jù)Habeeb報道的方法[9],稍作改動。首先,蛋白樣品溶于50mmol/L磷酸緩沖液(含50mmol/L NaCl,pH8.5)中,蛋白濃度為1%(w/v)。添加1mL 0.1%的TNBS溶液到等體積的蛋白溶液中,在60℃保溫2h后,反應(yīng)液快速冷卻至室溫。順序添加1mL 10%SDS和0.5mL 1mol/L HCl終止反應(yīng)。在335nm下比色,對照樣品的吸光度值設(shè)為100%,用吸光度值降低程度來表征N-?;潭?。
1.2.4 羥基(Ser和Thr)?;葴y定 羥基?;龋∣-?;龋┑臏y定采用Gounaris等報道的堿性羥胺法[10]。將2mol/L NH2OH-HCl溶液,3.5mol/L NaOH溶液和去離子水按2∶1∶1(v/v/v)配制得到測試液。2mL測試液加入1mL蛋白溶液(5mg/mL)中,混合液在40℃下保溫2h后,添加1.0mL 3mol/L HCl以終止反應(yīng)。添加1.0mL 0.37mol/L FeCl3(在0.1mol/L HCl中)顯色。放置15min后,離心,上清液在540nm條件下比色。用540nm的吸光度值表示O-?;?。
1.2.5 巰基含量測定 巰基含量測定采用經(jīng)Beveridge改進后的Elman法[11],稍作改動,巰基?;龋⊿-?;龋轷;鞍椎膸€基含量比上對照樣品的巰基含量。主要試劑配制及測試方法如下:
a.Tris-Gly緩沖液(pH8.0):精確稱取10.418g Tris,6.756g甘氨酸,1.489g EDTA二鈉,加去離子水定容至1000mL。
b.Tris-Gly-8M Urea溶液:在Tris-Gly緩沖液中加入480.48g尿素。
c.DTNB溶液(4mg/mL):4mg DTNB試劑溶于1mL Tris-甘氨酸緩沖液(A)。
巰基含量測定:添加15mg蛋白樣品至5.0mL測試液中(B液),添加50μL C溶液,在25℃保溫1h后,于25℃離心(13600×g,10min),上清液在412nm比色。巰基含量的計算公式如下:
SH(μmol/g)=73.53×A412×D/C
式中:A412-除去試劑空白后樣品的吸光度值;D-稀釋倍數(shù);C-蛋白質(zhì)含量。
1.2.6 熱學(xué)特性分析 精確稱取1mg蛋白質(zhì)放入鋁盒中,加入10μL 10mmol/L磷酸緩沖溶液(pH=7.0),壓盤。以空鋁盤為對照,溫度掃描范圍:0~120℃,升溫速率:10℃/min,保護氣氮氣流速:50mL/min。采用the universal analyzer 2000軟件計算蛋白質(zhì)的變性溫度(Td)和焓變(ΔH)。
蛋白的?;磻?yīng)主要是分子中的親核基團攻擊酸酐的羰基碳原子所誘發(fā)的一類親核取代反應(yīng)。ε-氨基(Lys)具有較低的pK值和較弱的空間位阻,表現(xiàn)出較強的親核能力。側(cè)鏈基團,如酪氨酸的酚羥基及組氨酸的咪唑基團均可以參與酰化反應(yīng),但是?;a(chǎn)物不穩(wěn)定,如酪氨酸酚羥基的?;a(chǎn)物在pH>5情況下分子內(nèi)催化水解。因而,ε-氨基(Lys)、脂肪族羥基(Thr,Ser)和巰基(Cys)是蕓豆分離蛋白中可能參與?;磻?yīng)的主要基團。圖1~圖3為蕓豆分離蛋白中這三種側(cè)鏈基團參與?;磻?yīng)的情況。
N-?;纫蕾囉趨⑴c反應(yīng)的酰化試劑種類和用量。在乙酸酐與蛋白比低于0.1g/g時,N-?;入S酸酐與蛋白比增加而迅速增加,乙酸酐與蛋白比為0.1g/g時達到93%~94%,酸酐與蛋白比再繼續(xù)增加,N-?;葍H增加2%~3%。琥珀?;瘸尸F(xiàn)出與乙酰化度相似的變化趨勢,只是琥珀酰化度達到93%~94%需要的酸酐與蛋白比較乙?;撸瑸?.2g/g(圖1)。在相同酸酐與蛋白比的情況下,尤其在低于0.2g/g時,乙酰蛋白具有較高的酰化度,表明乙酸酐比琥珀酸酐具有更強的活性,這主要歸因于乙酸酐具有較小的空間位阻效應(yīng)。
圖1 酸酐與蛋白比對N-?;鹊挠绊憟DFig.1 Influence diagram of anhydride and protein ratio on N-acylation degree
圖2 N-?;扰cO-?;戎g的關(guān)系Fig.2 Relationship of N-acylation degree and O-acylation degree
圖3 N-?;扰cS-酰化度之間的關(guān)系Fig.3 Relationship of N-acylation degree and S-acylation degree
圖2顯示,ε-氨基(Lys)與羥基(Ser和Thr)具有一定的競爭性,ε-氨基具有更強的活性。在N-?;鹊陀?3%~94%時,即酸酐與蛋白比低于0.1g/g(乙?;┗?.2g/g(琥珀酰化)時,羥基(Ser和Thr)不參與?;磻?yīng),參與酰化反應(yīng)的基團主要是Lys的ε-氨基,反應(yīng)產(chǎn)物主要是N-?;a(chǎn)物;而當Lys的ε-氨基的N-?;冗_到93%~94%,再繼續(xù)增加酸酐與蛋白比例,N-?;葍H增加2%~3%,羥基(Ser和Thr)開始參與?;磻?yīng)(見圖1、圖2)。
隨著ε-氨基?;磻?yīng)的進行,巰基逐步參與反應(yīng),這與Franzen、Kinsella的報道不一致[8],他們認為,大豆蛋白中的巰基幾乎不參與?;磻?yīng)。兩種蛋白的巰基參與?;磻?yīng)的結(jié)果差異,主要源于巰基在蛋白分子中的分布差異。蕓豆分離蛋白巰基分布于分子表面,較低的空間位阻效應(yīng)有利于其參與酰化反應(yīng)[12];而在大豆蛋白中巰基主要分布在分子內(nèi)部,不利于?;磻?yīng)的進行。
酰化蕓豆分離蛋白熱學(xué)特性DSC技術(shù)研究見圖4~圖6。在對照樣品的DSC圖譜上,呈現(xiàn)出一個明顯的吸熱峰,歸屬為蕓豆球蛋白(phaseolin)的變性(圖4)。酰化對蕓豆分離蛋白熱穩(wěn)定性(Td)的影響依賴于所用的試劑種類以及?;磻?yīng)所處的階段。在Lys的ε-氨基?;A段,琥珀?;T導(dǎo)蕓豆分離蛋白的Td(反映熱穩(wěn)定性)從91.1℃逐漸增加至95.70~96.2℃;在羥基酰化階段,Td逐漸下降至92.2℃。在ε-氨基(Lys)?;磻?yīng)階段,帶負電荷的琥珀?;鶊F取代帶正電荷的ε-氨基(Lys),導(dǎo)致蕓豆蛋白表面負電荷堆積(電負性劇增)。因此琥珀?;鞍追肿娱g的靜電排斥效應(yīng)抑制程序升溫過程中的蛋白-蛋白相互作用,而蛋白-蛋白聚集物的形成導(dǎo)致蛋白不可逆變性。乙酰化與琥珀?;嬖谥^大的差異,ε-氨基(Lys)的?;A段,乙酰化蕓豆分離蛋白的Td與對照相似或略高;而羥基?;A段,乙?;|豆分離蛋白的Td逐漸下降。當酸酐與蛋白比達到1.0g/g,乙?;|豆分離蛋白的DSC圖譜上的吸熱峰消失,表明蛋白完全變性;而在琥珀酰化蕓豆分離蛋白的DSC圖譜上,除在92.20℃出現(xiàn)一個吸熱峰外,在77.5℃時呈現(xiàn)了一個焓變僅為0.21J/g的弱的吸熱峰(圖5),表明廣泛的琥珀酰化導(dǎo)致蕓豆分離蛋白構(gòu)象改變,出現(xiàn)具有不同構(gòu)象狀態(tài)的蛋白組分。這一點在native-PAGE圖譜中得到印證,較低的遷移率處出現(xiàn)了一條額外的蛋白譜帶[13]。羥基(Ser和Thr)?;A段,琥珀?;鸵阴;瘜?dǎo)致蛋白的熱穩(wěn)定性降低,這與熒光光譜分析結(jié)果一致[13]。
圖4 對照和?;|豆分離蛋白的DSC圖譜Fig.4 DSC map of isolate protein in control and acylation kidney bean
圖5 琥珀?;|豆分離蛋白的DSC圖譜Fig.5 DSC map of isolate protein in succinylation kidney bean注:酸酐與蛋白比為1.0g/g。
焓變(ΔH)是蛋白熱學(xué)特性的一個重要指標。圖6給出了在不同?;A段,蕓豆分離蛋白焓變的變化規(guī)律。在ε-氨基?;A段,琥珀?;鸵阴;尸F(xiàn)不同的變化趨勢,琥珀?;|豆分離蛋白的焓變,隨N-?;仍黾訌?4.17降至9.25J/g;而乙?;闆r,蛋白的焓變基本上保持不變(圖6A);在羥基?;A段,隨O-?;仍黾樱牾;鸵阴;|豆分離蛋白的焓變均逐漸降低(圖6B)。
圖6 ?;|豆蛋白的焓變與N-?;龋ˋ)和O-酰化度(B)之間的關(guān)系Fig.6 The relationship of acylation kidney bean protein enthalpy change,N-acylation degree(A)and O-acylation degree(B)
3.1 蕓豆分離蛋白的酰化過程存在兩個主要的?;A段,在酸酐-蛋白比為0~0.1(乙?;ゞ/g和0~0.2(琥珀酰化)g/g時,N-酰化度從0迅速增加至93%~ 94%,為Lys的氨基?;A段;再增加酸酐與蛋白比,羥基(Thr,Ser)才開始參與?;磻?yīng),為羥基(Thr,Ser)?;A段。
3.2 ε-氨基?;A段,琥珀?;T導(dǎo)KPI的變性溫度(反映熱穩(wěn)定性)從91.1℃逐漸增加至95.70~96.2℃,乙?;疜PI的熱穩(wěn)定性基本不變;羥基?;A段,琥珀?;疜PI的變性溫度逐漸下降至92.2℃,乙?;|豆分離蛋白的變性溫度逐漸下降。
3.3 在Lys的ε-氨基的?;A段,KPI的構(gòu)象基本上不變;羥基酰化導(dǎo)致蕓豆分離蛋白分子伸展和變性,酸酐與蛋白比為1.0g/g,乙?;瘜?dǎo)致KPI完全變性,而琥珀酰化造成KPI出現(xiàn)不同構(gòu)象狀態(tài)的組分。
[1]Sathe S K.Dry bean protein functionality[J].Critical Reviews in Biotechnology,2002,22:175-223.
[2]Romero J,Sun S M,McLeester R C,et al.Heritable variation in a polypeptide subunit of the major storage protein of the bean,Phaseolus vulgaris L[J].Plant Physiology,1975,56:776-779.
[3]Yin SW,Tang CH,Wen QB,et al.Effects of acylation on the functional properties of red kidney bean(Phaseolus vulgaris L.)protein isolate[J].Journal of Food Science,2009,74(E):488-494.
[4]王月,張東杰.琥珀酰化改性高溶解度大豆分離蛋白的工藝優(yōu)化[J].食品與機械,2011,27(3):119-122.
[5]王喜波,遲玉杰,胥偉.超聲輔助琥珀?;男源蠖沟鞍籽芯縖J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,42(5):6-13.
[6]Ellepola SW,Ma C-Y.Thermal properties of globulin from rice(Oryza sativa)seeds[J].Food Research International,2006,39:257-264.
[7]Koshiyama I,Hamano M,F(xiàn)ukushima D.A heat denaturation study of the 11S globulin in soybean seeds[J].Food Chemistry,1981,6:309-322.
[8]Franzen K L,Kinsella J E.Functional properties of acetylated and succinylated soy protein[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1976,24:788-795.
[9]Habeeb AFSA.Determination of free amino groups in proteins by trinitrobenzenesulphonic acid[J].Analytical Biochemistry,1966,14:328-336.
[10]Gounaris A D,Perlmann G E.Succinylation of pepsinogen [J].Journal of Biological Chemistry,1967,242:2739-2745.
[11]Beveridge T,Toma S J,Nakai S.Determination of SH and S-S groups in some food proteins using Ellman’s reagent[J]. Journal Food Science,1974,39:49-51.
[12]Yin SW,Tang CH,Wen QB,et al.Functional and conformational properties of phaseolin(Phaseolus vulgris L.)and kidney bean protein isolate.A comparative study[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2010,90:599-607.
[13]尹壽偉.蕓豆蛋白的物化修飾及相關(guān)構(gòu)效機理研究[D].廣州:華南理工大學(xué),2009.
Study on effect of acylation on thermal properties of kidney bean(Phaseolus vulgaris L.)protein isolate
MA Wen,YIN Shou-wei*,TANG Chuan-he,YANG Xiao-quan
(Department of Food Science and Technology,South China University of Technology,Guangzhou 510640,China)
The objective was to investigate the acylation-induced change in thermal properties of kidney bean protein isolate(KPI)by differential scanning calorimetry(DSC)techneques.The possible reactive amino groups of proteins,taking part in the acylation of KPI were explored.The relationships between thermal properties of acylated KPI and acylated stage were established.The data indicated that the acylation of KPI included two stages.One was the acylation of ε-amino groups(N-acylation),the other was the acylation of hydroxyl groups(O-acylation).In the N-acylation stage,the degree of the N-acylation sharply increased to about 93%~94% with the anhydride levels increasing from 0 to 0.1(acetylation)or 0.2g/g(succinylation).The O-acylation(Thr,Ser)distinctly occurred only when the N-acylation was nearly completed.In the N-acylation case,succinylation led to the increases in the thermal stability,the decreases in the enthalpy changes(ΔH),while the Tdand the ΔH of KPI were unaffected by the acetylation.In the O-acylation case,the acylation led to the decreases in Tdof KPI,accompanied with the sharp decrease in ΔH.
kidney bean protein isolate;acylation;thermal properties
TS210.1
A
1002-0306(2012)07-0092-04
2011-05-27 *通訊聯(lián)系人
馬雯(1987-),女,碩士,研究方向:糧油及植物蛋白工程。
廣東省自然基金博士啟動項目(104510064101005149)。