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      獨(dú)腳當(dāng)歸阿魏酸和多糖含量的測定

      2012-09-11 02:35:58任曉云尹春英陳建中陳曉珍
      天然產(chǎn)物研究與開發(fā) 2012年12期
      關(guān)鍵詞:試液光度葡萄糖

      任曉云,尹春英,陳建中,陳曉珍,李 娜

      中國科學(xué)院成都生物研究所,成都 610041

      獨(dú)腳當(dāng)歸是傘形科屬植物西藏凹乳芹(Vicatia thibetica de Boiss)的根,也叫野當(dāng)歸,產(chǎn)于四川、云南及西藏,生于海拔2700~4000 m的山坡、草地、林下、河灘及灌叢內(nèi)[1]。其味辛、甘、微苦,性溫。具有祛風(fēng)除濕、散寒止痛等功效,主要用于風(fēng)寒濕痹、中寒胃痛、腰部冷痛等癥[2]。

      四川省阿壩州馬爾康一帶有以獨(dú)腳當(dāng)歸充當(dāng)當(dāng)歸使用[1]。當(dāng)歸是傘形科植物當(dāng)歸Angelica sinensis(Oliv.)Diels的干燥根,主產(chǎn)我國甘肅省岷山山區(qū),具有補(bǔ)血活血、調(diào)經(jīng)止痛、潤腸通便等功效[3],其主要成份是阿魏酸、揮發(fā)油、多糖以及微量元素等[4],其中阿魏酸和多糖常作為當(dāng)歸藥材質(zhì)量控制的指標(biāo)成分[5]。阿魏酸具有抗血小板凝集和血栓;清除亞硝酸鹽、氧自由基、過氧化亞硝基;抗菌消炎、抗腫瘤、抗突變、增加免疫功能;增強(qiáng)人體精子活力和運(yùn)動性等功能[6]。多糖是構(gòu)成生命的四大基本物質(zhì)之一,多糖在增強(qiáng)免疫力、降血糖、抗腫瘤、抗炎、抗病毒、抗衰老、抗凝血等方面發(fā)揮著生物活性作用[7]。

      目前為止,對四川阿壩州一帶所產(chǎn)獨(dú)腳當(dāng)歸的阿魏酸以及多糖含量的測定尚未見報道,更無從比較其與當(dāng)歸的有效成份含量。本實(shí)驗(yàn)以阿壩州紅原縣所產(chǎn)的兩年生獨(dú)腳當(dāng)歸為材料,探索其主要成份阿魏酸和多糖含量的測定方法,比較了與當(dāng)歸的藥效差異,為進(jìn)一步建立獨(dú)腳當(dāng)歸藥材的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 儀器、試劑與材料

      儀器:Aglient 1200高效液相色譜儀(美國安捷倫科技公司);UV-2000紫外可見分光光度計(上海奧譜勒儀器有限公司);離心機(jī)(美國賽默飛世爾科技公司);電子分析天平(瑞士METTLER公司)等。

      試劑:葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品(成都曼思特生物科技有限公司,批號MUST-11020603);阿魏酸標(biāo)準(zhǔn)品(成都曼思特生物科技有限公司,批號 MUST-11112204);濃硫酸(西隴化工有限公司);苯酚(重蒸餾,天津科密歐化學(xué)試劑有限公司);甲醇為色譜純,其它試劑均為分析純。

      材料:四川紅原產(chǎn)兩年生獨(dú)腳當(dāng)歸藥材。

      1.2 方法

      1.2.1 獨(dú)腳當(dāng)歸阿魏酸含量測定

      紫外光譜掃描檢測確定HPLC檢測波長:將獨(dú)腳當(dāng)歸用70%甲醇回流提取后,經(jīng)稀釋到適當(dāng)?shù)臐舛?,在紫?分光光度計200~400 nm的波長范圍內(nèi)進(jìn)行掃描,檢測其最大吸收波長為239.0 nm和320.0 nm,結(jié)合參考文獻(xiàn)[8]和紫外掃描結(jié)果確定選擇320 nm作為檢測波長。

      采用液相色譜條件:色譜柱為Agilent ZORBAX SB-C18(250 mm × 4.6 mm,5 μm)柱,流動相為0.5%冰醋酸(A)和甲醇(B),梯度洗脫程序?yàn)?0~30 min(30%B ~50%B),30~32 min(50%B ~95%B),32~40 min(95%B~30%B);測定波長:320 nm;柱溫:35 ℃;流速:0.8 mL/min;進(jìn)樣量:10 μL。

      標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制:精密稱取阿魏酸10.20 mg于100 mL容量瓶中,用70%甲醇溶解并定容至100 mL,得到 0.102 mg/mL儲備液。分別精密吸取0.1、0.2、0.4、0.8、1.0 mL 分別置于 10 mL 容量瓶中,用70%甲醇溶解并定容至10 mL,進(jìn)樣前用0.45 μm 濾膜過濾,10 μL 進(jìn)樣,測定阿魏酸峰面積,用峰面積積分值與對照品質(zhì)量濃度進(jìn)行線性擬合,得到阿魏酸線性回歸方程。標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC譜圖見圖1,保留時間為15.928 min。

      圖1 阿魏酸標(biāo)準(zhǔn)品HPLC譜圖Fig.1 HPLC chromatogram of the ferulic acidstandard

      樣品供試液制備:取獨(dú)腳當(dāng)歸粉末(過60目篩)約1.0 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入70%甲醇20 mL,密塞,稱定重量,加熱回流30 min,放冷,再稱定重量。用70%甲醇補(bǔ)足減失的重量,搖勻,0.45 μm 濾膜濾過,供阿魏酸測定。

      方法學(xué)考察:對阿魏酸標(biāo)準(zhǔn)品的精密度以及供試液中阿魏酸的重現(xiàn)性、穩(wěn)定性、回收率進(jìn)行考察。

      樣品測定:精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸粉1.0 g,平行制備供試液5份,在與標(biāo)準(zhǔn)品相同的HPLC條件下,進(jìn)樣10 μL,記錄色譜圖,測定色譜峰的峰面積,按外表法計算樣品中阿魏酸的平均含量。樣品的HPLC譜圖見圖2,保留時間為15.904 min。

      圖2 獨(dú)腳當(dāng)歸70%甲醇提取物的HPLC譜圖Fig.2 HPLC chromatogram of 70%methanol extract of V.thibetica

      1.2.2 獨(dú)腳當(dāng)歸多糖含量測定

      標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制:精密稱取葡萄糖對照品5.40 mg,于50 mL容量瓶中,以蒸餾水溶解并定容,配制成質(zhì)量濃度為108 μg/mL的葡萄糖對照品溶液。精密量取 0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8 mL,分別置于干燥、具塞試管中,加蒸餾水至1.0 mL,再加入5%苯酚溶液2.0 mL,混勻,加濃硫酸 7.0 mL,充分混勻,置沸水浴加熱20 min,取出,放置至室溫。另取1.0 mL蒸餾水平行操作,作空白對照。于最大吸收波長490 nm處測定其吸光度,用吸光度與葡萄糖對照品的質(zhì)量濃度進(jìn)行線性擬合,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      樣品供試液制備[8]:取獨(dú)腳當(dāng)歸樣品粉末(過40目篩)約2.0 g,精密稱定,加80%乙醇100 mL回流1 h,濾過,濾渣加水100 mL回流2 h,趁熱抽濾,濾液適當(dāng)濃縮,用80%乙醇沉淀,靜置過夜,離心,棄上清液,沉淀用溫水溶解,轉(zhuǎn)移并定容至100 mL容量瓶中,再精密量取上述溶液1.0 mL,轉(zhuǎn)移并定容至10 mL量瓶中,供多糖測定[8]。

      方法學(xué)考察:對葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的精密度以及供試液中多糖的重現(xiàn)性、穩(wěn)定性、回收率進(jìn)行考察。

      樣品測定:精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸2.0 g,平行制備供試液5份,顯色并測定吸光度,按外標(biāo)法計算樣品中多糖的含量。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 阿魏酸和葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的線性范圍

      以HPLC記錄的峰面積(Y)對阿魏酸的質(zhì)量濃度(X)進(jìn)行直線回歸,回歸方程為 Y=58.2255X-5.0100,相關(guān)系數(shù) r=0.9998,表明當(dāng)阿魏酸在 1.02~10.20 μg/mL與峰面積呈良好的線性關(guān)系;以吸光度(Y)對葡糖糖的質(zhì)量濃度(X)進(jìn)行直線回歸,回歸方程為 Y=0.0075X-0.0548,相關(guān)系數(shù)為 r=0.9998,表明當(dāng)葡萄糖在 21.6 ~86.4 μg/mL 與吸光度呈良好的線性關(guān)系。

      2.2 阿魏酸和葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的精密度考察

      精密吸取10.20 μg/mL的阿魏酸對照品溶液10 μL,重復(fù)進(jìn)樣5次,計算色譜圖中阿魏酸的相對保留時間的RSD為0.43%,并計算阿魏酸的峰面積的RSD為0.40%,均小于2.0%,表明進(jìn)樣精密度良好;另精密量取葡萄糖對照品溶液0.5 mL,加水至1.0 mL,顯色后分別測定吸光度,重復(fù)測定5次,計算RSD為0.21%。

      2.3 供試液中阿魏酸和多糖的重現(xiàn)性考察

      精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸1.0 g,平行制備供試液5份,進(jìn)樣10 μL,記錄各色譜圖,測定其峰面積,供試液中阿魏酸的重現(xiàn)RSD為1.62%;另精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸2.0 g,平行制備供試液5份,精密量取供試品溶液1.0 mL,依法測定吸光度,并計算樣品多糖含量的重現(xiàn)RSD為1.33%。

      2.4 供試液中阿魏酸和多糖的穩(wěn)定性考察

      精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸1.0 g制備供試液,分別于0、2、4、6、8、10、12 h 進(jìn)樣 10μL。記錄各色譜圖,測定其峰面積,對照品在不同時間點(diǎn)峰面積的RSD為0.92%,結(jié)果表明供試品溶液中阿魏酸在12 h內(nèi)穩(wěn)定;另精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸2.0 g,制備供試液,精密量取供試品溶液 1.0 mL,于顯色后 0、10、20、30、40、60 min,測定吸光度,多糖RSD為0.16%,結(jié)果表明供試液在顯色后1 h內(nèi)穩(wěn)定。

      2.5 供試液中阿魏酸和多糖的回收率考察

      精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸樣品0.5 g共5份,分別加入0.102 mg/mL阿魏酸對照品溶液0.4 mL,待溶劑揮干后,按樣品測定方法提取并測定。取5次測定的平均值計算回收率99.56%(n=5),阿魏酸回收率的RSD為1.57%,回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表1;另精密稱取獨(dú)腳當(dāng)歸樣品1.0 g,平行制備供試液5份,在提取液中加入一定量的葡萄糖對照液,測定吸光度,取5次測定的平均值計算回收率為100.39%(n=5),供試液中多糖回收率的RSD為1.24%,回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。

      表1 標(biāo)準(zhǔn)品阿魏酸的回收率Table 1 Recovery rate of ferulic acid

      表2 標(biāo)準(zhǔn)品葡萄糖的回收率Table 2 Recovery rate of glucose

      2.6 獨(dú)腳當(dāng)歸中阿魏酸和多糖的含量分析

      按照藥典中阿魏酸的提取方法,用70%甲醇回流提取獨(dú)腳當(dāng)歸中的阿魏酸,利用高效液相色譜法測定了獨(dú)腳當(dāng)歸中阿魏酸的含量為86.10 μg/g。采用水提醇沉的方法提取獨(dú)腳當(dāng)歸中所含多糖,并通過苯酚-硫酸法測定了多糖的含量為34.60mg/g。

      3 討論

      本實(shí)驗(yàn)采用高效液相色譜法測定了獨(dú)腳當(dāng)歸中阿魏酸的含量,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,該方法具有操作簡便、靈敏、準(zhǔn)確等特點(diǎn),可以用于獨(dú)角當(dāng)歸藥材中阿魏酸的含量檢測和質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的控制。但是與已報道的當(dāng)歸阿魏酸含量相比[8],獨(dú)腳當(dāng)歸阿魏酸含量偏低。阿魏酸作為當(dāng)歸藥材質(zhì)量控制的指標(biāo)成分之一,如果將獨(dú)腳當(dāng)歸充當(dāng)當(dāng)歸使用,其藥效會明顯弱于當(dāng)歸。

      本實(shí)驗(yàn)利用多糖不溶于乙醇的性質(zhì),于80%乙醇中回流提取獨(dú)腳當(dāng)歸,以除去脂溶性雜質(zhì),然后利用多糖溶于熱水的性質(zhì),在熱水中回流提取多糖,并通過改變水提液極性用乙醇沉淀出多糖,最終得到粗多糖。利用具有顯色穩(wěn)定,準(zhǔn)確可靠,重現(xiàn)性好,回收率高等優(yōu)點(diǎn)的苯酚-硫酸法[9],測定了獨(dú)角當(dāng)歸中多糖的含量。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,該方法準(zhǔn)確度較高,可以用于獨(dú)腳當(dāng)歸藥材多糖含量檢測和質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的控制。該實(shí)驗(yàn)同時說明了獨(dú)腳當(dāng)歸中含有較豐富的多糖,為獨(dú)腳當(dāng)歸進(jìn)一步開發(fā)及其多糖生物學(xué)活性研究奠定了基礎(chǔ)。

      1 Editorial Committee for Flora of the Chinese Academy of Sci-ences(中國科學(xué)院中國植物志編輯委員會).Flora of China(中國植物 志).Beijing:China Science Press,1979.Vol55,185.

      2 State administration of traditional Chinese medicine of the People's Republic of China(國家中醫(yī)藥管理局).Zhonghua Bencao(中華本草).Shanghai:Shanghai Science and Technology Press,1999,15:1037-1038.

      3 Chinese Pharmacopoeia Commission(國家藥典委員會).Pharmacopoeia of the People’s Republic of China(中華人民共和國藥典).Beijing:China Medical Science Press,2005,1:89.

      4 Chen F(陳飛),Yao C(姚成).Advances in study on the components inAngelica sinensis.Res Tradit Chin Med(中醫(yī)藥研究),2002,18:51-54.

      5 Zhao KJ(趙奎君),Zhong M(鐘萌),Xie JD(謝俊大).Contents comparison of ferulic acid,ligustilide and total polysaccharide in radix Angelicae sinensis from different regions.Chin J Inform Tradit Chin Med(中國中醫(yī)藥信息雜志),2007,14(12):37-38.

      6 Hu YY(胡益勇),Xu XY(徐曉玉).Research on chemical constituents of ferulic acid and its pharmacological effects.Chin Tradi Pat Med(中成藥),2006,28:253-255.

      7 Jiang MH(姜曼花),Qiu XM(邱細(xì)敏),Liu SZ(劉勝姿),et al.The extraction,purification and determination of polysaccharide inGynuradivaricata(L.)DC.Shizhen Med Mat Med Res(時珍國醫(yī)國藥),2008,19:7412-7414.

      8 Yan H(嚴(yán)輝),Duan JA(段金廒),Qian DW(錢大瑋),et al.Evaluation and analysis of the quality of Angelica sinensis from different source in China.Chin Tradit Herb Drugs(中草藥),2009,40:1988-1992.

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