陳超琴,趙黎明,蔣麗華,夏泉鳴
(華東理工大學(xué)發(fā)酵工業(yè)分離提取技術(shù)研發(fā)中心,華東理工大學(xué)食品科學(xué)與工程系,上海200237)
在大豆分離蛋白生產(chǎn)過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生大量乳清廢水,每生產(chǎn)1t大豆分離蛋白,約排放出60~80m3的乳清廢水,大豆乳清廢水的BOD高達(dá)5000~8000mg/L,超出國(guó)家規(guī)定的廢水排放標(biāo)準(zhǔn)的100多倍[1]。目前國(guó)內(nèi)大豆分離蛋白產(chǎn)能約60萬(wàn)t,大豆乳清廢水的處理已經(jīng)成為制約大豆深加工產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展的瓶頸。對(duì)大豆乳清廢水的傳統(tǒng)處理方法是直接進(jìn)行厭氧和好氧生物處理以降低廢水中的COD及BOD值,利用微生物來(lái)降解廢水中的有機(jī)物質(zhì),這樣處理后即使能達(dá)到國(guó)家廢水排放標(biāo)準(zhǔn),但因?yàn)樘幚沓杀緲O高企業(yè)承受不起,同時(shí)廢水中的大量的有用物質(zhì)也白白浪費(fèi)[2]。目前國(guó)內(nèi)也有企業(yè)通過(guò)將大豆乳清廢水進(jìn)行沼氣發(fā)電進(jìn)行綜合處理利用,但無(wú)論是處理效果還是處理成本,都不能讓企業(yè)滿意。乳清廢水中含有豐富的乳清蛋白、低聚糖等有用物質(zhì)。其中乳清蛋白主要含有Kunitz胰蛋白酶抑制劑、β-淀粉酶和凝集素,其次是Bownma-Birk胰蛋白酶抑制劑、脂肪氧化酶等[3]。近年來(lái),很多學(xué)者致力于開發(fā)各種先進(jìn)技術(shù)如膜分離技術(shù)、樹脂層析、色譜、超臨界流體萃取、高效液相色譜等技術(shù)來(lái)提取大豆乳清廢水中的有用物質(zhì)如大豆乳清蛋白、大豆低聚糖、大豆異黃酮等,并取得了較好的成果,但是從大豆乳清廢水中提取 β-淀粉酶國(guó)內(nèi)報(bào)道較少。β-淀粉酶在制備結(jié)晶麥芽糖及麥芽糖醇、飴糖、啤酒、飲料、面包、醬油、白酒等工業(yè)生產(chǎn)過(guò)程具有重要的作用。本文重點(diǎn)探討了超濾技術(shù)提取大豆乳清中β-淀粉酶的應(yīng)用效果和工藝參數(shù),為大豆乳清資源化利用提供一些新的思路和方法。
表1 大豆乳清主要成分分析Table 1 Analysis of soybean whey wastewater
大豆乳清廢水 山東萬(wàn)得福實(shí)業(yè)集團(tuán)有限公司提供;3,5-二硝基水楊酸(DNS)、酒石酸鉀鈉、可溶性淀粉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、氫氧化鈉、鹽酸、濃硫酸、硫酸銅、硫酸鉀、SDS(十二烷基磺酸鈉)、Acr(丙烯酰胺)、Bis(N,N'-亞甲基雙丙烯酰胺)、Tris(三羥甲基氨基甲烷)、甘氨酸、Aps(過(guò)硫酸氨)溴酚藍(lán)、甘油、冰醋酸、乙醇、b-2-巰基乙醇、考馬斯亮藍(lán)R250、甲醇、乙醇 均為分析純,上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;TEMED(四甲基乙二胺)、蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn)(97.4、66.2、43,31、20.1、14.4ku)上海捷瑞生物工程有限公司。
QY-NUF-1812膜設(shè)備、QY-UF-3-T-1812及QY-UF-10-T-1812超濾膜(聚醚砜,有效膜面積:0.24m2)上海齊豫生物科技有限公司;Amicon Ultra-153,10ku MWCO超濾離心管 美國(guó) Millipore公司;5810R離心機(jī) Eppendorf;UV-2000紫外可見光分光光度計(jì) 尤尼柯(上海)儀器有限公司;KDN-2C型凱氏定氮儀 上海纖檢儀器有限公司;FE20精密pH計(jì) 梅特勒—托利多儀器(上海)有限公司;HHS-21-4孔型電熱恒溫水浴鍋 上海醫(yī)療機(jī)械五廠;SE1501F電子天平(0.1g)奧豪斯儀器(上海)有限公司;電泳儀、垂直電泳槽 Bio-Rad公司。
1.2.1 β-淀粉酶活力測(cè)定[4]采用Bernfeld方法測(cè)定酶活。酶活定義:25℃、pH4.8下每分鐘釋放出1μmol麥芽糖所需的酶量為1U。
1.2.2 蛋白質(zhì)含量測(cè)定 采用凱氏定氮法檢測(cè)乳清中粗蛋白含量[5]。
1.2.3 大豆乳清中蛋白質(zhì)分子量分布 采用SDSPAGE分析乳清中蛋白質(zhì)分子量分布。
1.2.4 總糖含量測(cè)定 采用蒽酮比色法[6]。
1.2.5 總固形物含量測(cè)定[7]準(zhǔn)確稱取液體樣品,在105℃烘箱中經(jīng)過(guò)24h烘干后置于干燥器中恒重12h,測(cè)定烘干后固體的質(zhì)量。
1.2.6 灰分檢測(cè)指標(biāo) 采用GB48-84進(jìn)行灰分檢測(cè)[8]。
1.2.7 跨膜壓差、膜通量及截留率的測(cè)定 在料液罐中加入純水或料液,全循環(huán)操作模式操作,設(shè)定溫度和跨膜壓差,待設(shè)備壓力表指示穩(wěn)定后,記錄膜進(jìn)口和出口的壓力,并按照式(1)計(jì)算跨膜壓差[9]:
式中:Pin為膜進(jìn)口壓力,bar;Pout為膜出口壓力,bar;ΔP 為跨膜壓差,bar。
使用量筒和秒表測(cè)定一定時(shí)間內(nèi)透過(guò)液的體積,并按式(2)計(jì)算膜通量:
式中:Jv為膜通量,L/(m2·h);Vp為透過(guò)液體積,L;tf為過(guò)濾時(shí)間,h;Am為有效膜面積,m2。
定時(shí)在濃縮側(cè)和透過(guò)側(cè)取樣,檢測(cè)其中β-淀粉酶的活力,并按式(3)計(jì)算截留率:
式中:Robs為表觀截留率,%;Cp為透過(guò)液溶質(zhì)濃度,U/mL;Cb為料液主體相濃度,U/mL。
1.2.8 大豆乳清的濃縮實(shí)驗(yàn) 大豆乳清表面有大量的泡沫,廢水呈渾濁狀態(tài),并有少量廢渣沉淀,因此料液在進(jìn)超濾膜前必須進(jìn)行預(yù)處理。將乳清廢水的pH調(diào)節(jié)在4.5~9,靜置2h后進(jìn)行離心,去除沉淀廢渣。得到的上清液用于超濾過(guò)程的原料液。將經(jīng)過(guò)預(yù)處理的大豆乳清加入料液罐中,進(jìn)料體積為12L,在經(jīng)過(guò)優(yōu)化的操作條件下進(jìn)行過(guò)濾濃縮,濃縮倍數(shù)約為10倍,每隔10min,測(cè)定膜通量,并在每個(gè)濃縮倍數(shù)下在膜兩側(cè)同時(shí)取樣,進(jìn)行成分分析。
大豆乳清的主要成分如表1所示。
大豆乳清中蛋白分子量分布如圖1所示。從圖中可以看出,大豆乳清中蛋白質(zhì)的分子量主要分布在20~97ku,根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道[10],譜帶 A 的分子量在92500附近,代表脂肪氧合酶;譜帶 B的分子量在55000左右,由于7S中的 β亞基分子量為52000,β-淀粉酶的分子量是57000,所以,譜帶B可能包括了這兩個(gè)成分;譜帶C的分子量在20000左右,11S蛋白中B亞基的分子量為20000,而KT胰蛋白酶抑制劑的分子量為21500,所以譜帶C中包括這兩個(gè)成分,因?yàn)槿榍逯?1S的含量少,譜帶C可以認(rèn)為主要是KT胰蛋白酶抑制劑。Sorgentini等[3]曾報(bào)道在乳清中溶解著大約占總蛋白10%左右的2S和7S成分,2S的主要成分是胰蛋白酶抑制劑,7S中含有脂肪氧合酶和β-淀粉酶。
圖1 SDS-PAGE分析大豆乳清蛋白質(zhì)分子量分布Fig.1 SDS-PAGE analyses the protein molecular weight distribution of soybean whey wastewater
對(duì)大豆乳清進(jìn)行SDS-PAGE分析是為了選擇合適截留分子量的膜,為了保證β-淀粉酶的回收率在90%以上以及避免胰蛋白酶抑制劑對(duì)膜造成的堵塞污染,選擇3ku和10ku的MWCO超濾膜進(jìn)行實(shí)驗(yàn),從而進(jìn)一步確定合適的膜。
大豆乳清表面有大量的泡沫,廢水呈渾濁狀態(tài),并有少量廢渣沉淀,因此料液在進(jìn)超濾膜前必須進(jìn)行預(yù)處理。將乳清廢水的pH調(diào)節(jié)在4.5~9,靜置2h后進(jìn)行離心,去除沉淀廢渣。得到的上清液中β-淀粉酶的酶活回收率如圖2所示。從圖2可以看出,經(jīng)過(guò)預(yù)處理的上清液酶活的回收率均在95%以上。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,從肉眼觀察中可以看到的現(xiàn)象是,隨著pH的增加,上清液的透明度逐漸升高,在pH7以上,溶液透明度明顯好于pH小于7的情況,這是由于pH高于7時(shí),乳清中大部分蛋白溶解度好。
圖2 乳清廢水預(yù)處理Fig.2 Pretreatment of the soybean whey wastewater
為了考察在超濾過(guò)程中,料液不同pH對(duì)酶活回收率的影響,將上述得到的不同pH的上清液通過(guò)超濾離心管進(jìn)行實(shí)驗(yàn),超濾離心的條件為:MWCO 3ku;溫度4℃;轉(zhuǎn)速3050×g;上樣量15mL;時(shí)間20min。離心結(jié)束后,分別收集濃縮液和透過(guò)液樣品,對(duì)樣品進(jìn)行酶活力的檢測(cè),計(jì)算酶活的回收率。如圖3所示,pH4.5~5.5區(qū)間為大多數(shù)蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)區(qū)間,因此隨著濃縮的進(jìn)行,料液逐漸變渾濁,有些蛋白吸附在膜表面,造成回收率的下降;pH6~7為酶活回收率較高的區(qū)間,pH7.0為酶活回收的最高點(diǎn)(95%);在濃縮過(guò)程中料液一直呈澄清狀態(tài),但pH7.5~9.0時(shí)由于料液處于堿性環(huán)境下,β-淀粉酶的穩(wěn)定性有所下降,造成回收率的下降。因此,在離心超濾實(shí)驗(yàn)中,確定料液的pH為6~7。
圖3 不同pH料液對(duì)超濾過(guò)程酶活回收率的影響Fig.3 Effect of feed pH on the enzyme recovery during the UF process
為了進(jìn)一步確定超濾過(guò)程料液的pH,在實(shí)驗(yàn)?zāi)ぴO(shè)備中,選用MWCO 3ku聚醚砜材質(zhì)的超濾膜,在全循環(huán)操作模式下,比較了pH5.0、6.0、7.0下膜通量的大小。從圖4可知,在相同的跨膜壓差下,pH7.0料液的膜通量顯著高于pH6.0和pH5.0下的膜通量,pH5.0下膜通量最低。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇pH7.0的料液作為超濾過(guò)程的初始料液。
圖4 不同料液pH對(duì)膜通量的影響Fig.4 Effect of feed pH on the permeate flux
將pH7.0的上清液在超濾離心管中進(jìn)行實(shí)驗(yàn),超濾離心的條件為:MWCO:3ku;轉(zhuǎn)速:3050×g;上樣量:15mL;時(shí)間:20min。離心結(jié)束后,分別收集濃縮液和透過(guò)液樣品,對(duì)樣品進(jìn)行酶活力測(cè)定并計(jì)算酶活回收率。有機(jī)超濾膜的耐受溫度不高于45℃,因此,本實(shí)驗(yàn)中對(duì)溫度的設(shè)定范圍為4~36℃。從圖5可看出,隨著溫度的上升,酶活的膜回收率下降的趨勢(shì)較小,基本維持在90%左右。在較低的操作溫度下,酶活的膜回收率較高,但能耗較高,而且低溫下,料液粘度較大,膜通量較小。綜合考慮酶活回收率以及運(yùn)行效果,選擇(25±3)℃作為超濾過(guò)程的操作溫度。
圖5 超濾過(guò)程操作溫度對(duì)酶活回收率的影響Fig.5 Effect of operating temperature on the enzyme recovery during the UF process
如圖6所示,在(25±3)℃下,3ku膜的純水膜通量,隨跨膜壓差TMP的增加幾乎呈線性增加。而如圖4所示,在pH7.0料液中,3ku膜的膜通量隨著跨膜壓差的增加而增加,在跨膜壓差達(dá)到2bar以上時(shí),膜通量上升緩慢,基本達(dá)到一個(gè)平穩(wěn)的狀態(tài),這一現(xiàn)象可由兩點(diǎn)解釋:一方面,由于膜通量的增大,使得濃差極化效應(yīng)增加,膜面濾餅層被壓縮且積累速率增大,膜污染阻力增大;另一方面,由于設(shè)備的泵額定功率是一定的,當(dāng)跨膜壓差增大時(shí),靜壓能不斷增大,因此動(dòng)能逐漸減小,即膜面流速減小,濃差極化效應(yīng)增加[11]??缒翰钚∮?bar時(shí),為壓差控制區(qū),跨膜壓差大于2bar時(shí),則為濃差極化阻力控制區(qū)。因此,選擇跨膜壓差為2bar作為超濾濃縮過(guò)程的操作壓差。
圖6 跨膜壓差對(duì)純水膜通量的影響Fig.6 Effect of TMP on the permeate flux of distilled water
本實(shí)驗(yàn)研究了MWCO 3ku和10ku的膜對(duì)乳清進(jìn)行超濾的效果。超濾條件:跨膜壓差:2bar(3ku),2.5bar(10ku),操作溫度:(25±3)℃;料液 pH7.0。如圖7所示,隨著濃縮倍數(shù)的增加,兩支膜的截留率均呈上升趨勢(shì),但是,10ku膜對(duì)β-淀粉酶的截留率明顯低于3ku膜,在同一濃縮倍數(shù)下,兩者的差距在10%以上。因此,從酶活的回收率出發(fā)考慮,優(yōu)先選擇3ku膜。同時(shí)可以從圖8中看出,3ku膜的膜通量隨著濃縮倍數(shù)的增加逐步衰減,在濃縮倍數(shù)達(dá)到10倍時(shí),膜通量為23L/m2·h,濃縮過(guò)程平均膜通量為35L/m2·h。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇3ku膜進(jìn)行濃縮。
圖7 濃縮倍數(shù)對(duì)β-淀粉酶截留率的影響Fig.7 Effect of volumetric concentration ratio on the enzyme rejection
圖8 濃縮倍數(shù)對(duì)3ku膜通量的影響Fig.8 Effect of 3ku volumetric concentration ratio on the permeate flux
將經(jīng)過(guò)預(yù)處理的乳清廢水,其中β-淀粉酶的活力為11U/mL,使用MWCO 3ku的膜進(jìn)行濃縮,操作條件為:料液 pH7;跨膜壓差 2bar;操作溫度(25±3)℃,進(jìn)料體積為12L。在料液濃縮倍數(shù)為10倍時(shí)停止操作,此時(shí)的膜通量由初始的44L/(m2·h)衰減至23L/(m2·h),平均通量達(dá)到35L/(m2·h);β-淀粉酶的酶活力可達(dá)到101U/mL,酶活濃縮倍數(shù)約為9倍,總酶活的回收率為92%。
通過(guò)對(duì)超濾過(guò)程料液pH、操作溫度、跨膜壓差、膜截留分子量等參數(shù)的探討,得出用超濾技術(shù)對(duì)大豆乳清中β-淀粉酶進(jìn)行的濃縮的最佳條件為:料液pH為7,操作溫度(25±3)℃,跨膜壓差2bar;截留分子量MWCO 3ku的膜。得到的濃縮液中,β-淀粉酶的活力為101U/mL,濃縮倍數(shù)為10。得到的濃縮液為下一階段對(duì)β-淀粉酶進(jìn)行分離純化提供了良好的料液基礎(chǔ)。
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