楊曉燕,劉 航,楊順利,尹雙輝,尚佑軍,田永強
(1.蘭州交通大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院,甘肅 蘭州 730070;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所,家畜疫病病原學(xué)國家重點實驗室,甘肅 蘭州 730046)
豬圓環(huán)病毒(Porcine circovirus,PCV)是目前發(fā)現(xiàn)的最小的動物病毒[1],屬于圓環(huán)病毒科(Circoviridae)圓環(huán)病毒屬(Circovirus),病毒基因組為無囊膜的單股環(huán)狀DNA病毒。病毒顆粒平均直徑為17nm,呈20面體對稱[2]。根據(jù)PCV的致病性、抗原性及核苷酸序列,將PCV分為PCV1和PCV2兩個基因型,基因組大小約為1.7kb,其中PCV1對豬為非致病性,但廣泛存在豬體內(nèi)及豬源代細胞系。PCV2感染常常被認為可引起斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征(PMWS)、皮炎腎病綜合征、增生性壞死性肺炎、豬繁殖與呼吸綜合征、仔豬傳染性先天性震顫等多種疾病,但臨床上以PMWS最為常見[3-5]。
PCV2的ORF3基因是除ORF1、ORF2外較大的閱讀框[6],位于基因組671~357 bp位堿基(復(fù)制起始點作為序列起始),大小為314 bp,編碼104個氨基酸。ORF3對應(yīng)著ORF1(Rep蛋白氨基酸103~207 aa)的反向互補序列和Cap蛋白B淋巴細胞抗原表位(185~211 aa),與ORF2蛋白的一個 T淋巴細胞抗原表位共用201~211 aa,功能尚不完全清楚[8]。而其他閱讀框編碼產(chǎn)物的功能和特性目前尚不清楚。為了探討ORF3基因結(jié)構(gòu)及其與功能的關(guān)系,研究以實驗室分離的PCV2菌株為材料,對ORF3基因進行完整克隆,并在大腸桿菌中克隆表達。
實驗室保存的從臨床表現(xiàn)為PMWS仔豬脾臟中分離的PCV2毒株;大腸桿菌 JM109,BL21(DE3)菌株,載體 pGEX-6p-1(Invitrogen公司)。
引物、PCR試劑、DNA片段回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒(大連寶生物有限公司);T4 DNA連接酶、BamH I、Sal I限制性內(nèi)切酶,Taq酶(promega公司);核酸 Makers,蛋白 Makers,TMB,辣根過氧化物酶標記兔抗豬IgG抗體(Sigma公司),其他試劑均為國產(chǎn)分析純試劑。
按照Genbank中PCV2 ORF3的序列,設(shè)計一對特異性引物,引物序列如下:
P1:5′-TTCGGATCCATGGTAACCGTCCCACCACT-3′
P2: 5′-CTGGTCGACCCTGATGGAATGTGGAGC-3′
為了便于克隆,在引物P1中加入了BamH I酶切位點,在P2中加入了Sal I酶切位點,同時為了方便表達及表達產(chǎn)物的純化,刪去了終止密碼子,引物由上海生工合成。PCR擴增反應(yīng)條件:95℃5 min,94℃變性 1 min,55℃退火 40 s,72℃延伸 50 s,循環(huán)30次后,最后72℃延伸10 min。擴增產(chǎn)物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳分析,用DNA回收試劑盒回收PCR產(chǎn)物。
將回收的PCV2 ORF3基因片段與載體pGEX-6p-1分別用BamH I+Sal I雙酶切,用T4 DNA連接酶將ORF3克隆到載體pGEX-6p-1中。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化入大腸桿菌JM109感受態(tài)細胞,經(jīng)BamH I+Sal I雙酶切及PCR鑒定,篩選出重組質(zhì)粒,命名為pGEX-6p-1-ORF3。將重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3送上海生工進行測序。
將重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)菌株中,將含有重組質(zhì)粒的單菌落在新鮮的 5mL LB 培養(yǎng)基(含 100 μg/mL,Amp+),37℃振蕩培養(yǎng)過夜(180 r/min),陰性對照為含空白載體pGEX-6p-1的受體菌。次日按1%的接種量將重組菌pGEX-6p-1-ORF3接種到新鮮的含Amp+的LB培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)至OD600值約為0.6~0.8左右時,取1 mL作為未誘導(dǎo)樣品,加入異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)至終濃度1 mmol/L,37℃誘導(dǎo)表達8 h,收集1 mL菌液,用120 g/L分離膠進行聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分析。
將BL21轉(zhuǎn)化菌進行誘導(dǎo)表達后,收獲菌體進行超聲波破碎,離心分離后分別取上清和沉淀進行SDS-PAGE電泳,檢測目的蛋白的可溶性。
將SDS-PAGE凝膠的蛋白帶電轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,以封閉液(TBST+1%BSA)封閉過夜,與PCV2陽性豬多抗血清37℃溫浴1 h,經(jīng)充分洗滌后,再轉(zhuǎn)入封閉液稀釋的HRP標記羊抗豬IgG中,37℃溫浴1 h,DAB顯色。
用P1/P2引物進行擴增,得到大小約為314 bp的片段(如圖1)。大小與預(yù)期結(jié)果相符。將該片段與經(jīng)雙酶切作用后的原核載體pGEX-6p-1連接后,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化入大腸桿菌JM109感受態(tài)細胞,經(jīng)BamH I+Sal I雙酶切及PCR鑒定,出現(xiàn)約314 bp大小的片段(圖2、圖3)。經(jīng)測序,結(jié)果表明所連序列即為目的序列。
圖1 ORF3基因的PCR擴增
圖2 重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3的PCR鑒定
圖3 重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3的酶切鑒定
通過SDS-PAGE電泳分析在E.coli中重組蛋白pGEX-6p-1-ORF3大小約為37 kD(pGEX-6p-1載體所帶的GST標簽大小為26 kD)(如圖4),在37℃條件下表達的pGEX-6p-1-ORF3主要以包涵體形式存在。進一步調(diào)整誘導(dǎo)條件,降低誘導(dǎo)溫度、IPTG濃度、延長誘導(dǎo)表達的時間,但仍是大部分以包涵體形式存在,對包涵體進行純化,如圖5所示。
圖4 pGEX-6p-1-ORF3表達產(chǎn)物的SDS-PAGE檢測
圖5 pGEX-6p-1-ORF3表達產(chǎn)物可溶性鑒定和純化
重組蛋白pGEX-6p-1-ORF3與抗PCV2的豬血清相互作用后,利用化學(xué)底物進行顯色,可以觀察到明顯的特異性蛋白條帶(圖6),重組蛋白pGEX-6p-1-ORF3能夠和PCV2陽性血清發(fā)生特異性相互作用,說明其與天然的ORF3蛋白一樣,具有作為候選抗原應(yīng)該具有兩種特征之一,即反應(yīng)原性。
圖6 重組蛋白pGEX-6p-1-ORF3的Western blot檢測
ORF3蛋白是新發(fā)現(xiàn)的PCV2非結(jié)構(gòu)蛋白,是近年來的研究熱點。位于基因組互補鏈上,ORF1基因的內(nèi)部,方向與ORF1基因相反[6]。Liu等采用點突變技術(shù)使PCV2 ORF3基因功能缺失,并用缺失ORF3功能的PCV2進行 PK-15細胞的感染試驗以驗證ORF3的功能,表明ORF3編碼蛋白是在病毒復(fù)制中屬非必需的蛋白,它是通過誘導(dǎo)細胞凋亡從而在致病性方面發(fā)揮作用。其他試驗也表明,ORF3編碼蛋白與 PCV2的致病性也有一定的關(guān)系,由ORF3編碼的蛋白可以影響病毒衣殼蛋白在機體內(nèi)的免疫效果[9]。ORF3蛋白的缺失或變異均能減弱PCV2的致病。
研究成功構(gòu)建了重組質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3,并在大腸桿菌中誘導(dǎo)表達,但重組蛋白以包涵體的形式存在,需要變性、濃縮并復(fù)性。為此,本研究用Ni2N TA蛋白純化試劑盒(QIA GEN公司),對目的蛋白進行了純化、濃縮,濃縮后的蛋白濃度可達6.11 mg/mL,該質(zhì)量濃度完全能滿足后續(xù)試驗需要。為了恢復(fù)重組蛋白的免疫學(xué)活性,研究利用蛋白復(fù)性試劑盒proteinrefolding kit(Novagen公司)對其進行透析復(fù)性,Western blot檢測結(jié)果表明,經(jīng)純化復(fù)性的重組蛋白能夠特異性的結(jié)合PCV2多克隆抗體,表明目的蛋白具有與PCV2相同的抗原性,可用于PCV2 ORF3單克隆抗體及PCV2的ELISA檢測方法研究。試驗通過PCR擴增得到了ORF3基因,并將其連接到了表達載體pGEX-6p-1上,得到了陽性表達質(zhì)粒pGEX-6p-1-ORF3,將其轉(zhuǎn)化入大腸桿菌BL21(DE3)中,但未獲大量融合表達,重組蛋白以包涵體形式存在,免疫印記試驗均證實重組表達蛋白具有良好的反應(yīng)原性,命名為pGEX-6p-1-ORF3,為進一步研究ORF3蛋白的生物活性、功能及對PCV2致病機理的影響奠定了基礎(chǔ)。
[1]Wu J Y,Tian H,Shang Y J,et al.Identification and pathogen characteristics analysis of a co-infection with CSFV,PRRSV and PCV2[J].Agricultural Science&Technology,2010,11(2):19-22,108.
[2]李增魁,陳婷飛.豬圓環(huán)病毒2型ORF4基因編碼蛋白的體外表達[J].中國獸醫(yī)科學(xué),2008,38(10):837-841.
[3]敬曉棋,吳發(fā)興,叢麗媛,等,豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因的原核表達[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2010,38(5):8-12.
[4]陳金山,吳玉蘋,陳俊杰,等.豬圓環(huán)病毒病臨床表現(xiàn)類型及其防治[J].貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(9):127-128.
[5]李增魁.豬圓環(huán)病毒2型ORF3編碼蛋白的體外表達[J].畜牧與獸醫(yī),2008,(9):25-30.
[6]Hamel L,Lin L L,Sachvie C,et al.PCR detection and characterization of type-2 porcine circovirus[J].Can J Vet Res.2000,64(1):44-52.
[7]楊曉農(nóng).豬圓環(huán)病毒Ⅱ型ORF1、ORF3及ORF5基因部分功能的研究[D].四川農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.
[8]王忠田,楊漢春,郭 鑫,等.豬圓環(huán)病毒研究進展[J].中國獸醫(yī)雜志,2004,40(3):33-35.
[9]蔣智勇,宋長緒,高向陽,等.豬2型圓環(huán)病毒ORF1基因的克隆及表達[J].中國獸醫(yī)科技,2004,34(5):18-21.