呂 敏 張 歡 諸 穎 黃 慶 趙 云
1 (中國科學(xué)院上海應(yīng)用物理研究所 上海 201800)2 (四川大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 成都 610000)
石墨烯氧化物(Graphene Oxide, GO)是石墨烯(Graphene)的衍生物,由石墨粉經(jīng)多步氧化、超聲純化等步驟制備而成,系單層蜂窩狀的二維納米碳材料,表面具有活性含氧功能基團(環(huán)氧基、羧基、羥基等)[1,2]。GO具有很好的水溶性,廣泛應(yīng)用于生物傳感器[3,4]、藥物輸送[5–7]、生物成像等領(lǐng)域。
石墨烯氧化物具有良好的抗菌性能[8–10],大腸桿菌與GO材料孵育2 h后,90%的大腸桿菌被殺死[11]。然而,文獻[12]報道石墨烯氧化物可非特異地促進細胞生長。同樣的材料,是什么原因?qū)е陆厝幌喾吹慕Y(jié)果? 比對多篇文章發(fā)現(xiàn),GO抗菌性結(jié)果的差異主要由不同的抗菌性方法引起。
在微生物學(xué)中,抗菌效果的研究主要是檢測微生物在抗菌劑作用前后數(shù)目的變化。常用的有顯微鏡直接計數(shù)法(direct microscopic count)、光電比濁度法(turbidity estimation by spectrophotometer)、平板菌落計數(shù)法(plate count assey)、膜過濾法(membrane filtration)等[13]。同一種抗菌劑,使用不同的檢測方法,會有不同的實驗結(jié)果[14–16]。本文以石墨烯氧化物為研究對象,比較了光電比濁計數(shù)法、抑菌環(huán)法和平板菌落計數(shù)法測定GO的抑菌效果,以探索能真實、客觀呈現(xiàn)GO抗菌性的方法,為生物學(xué)方法正確應(yīng)用于材料領(lǐng)域提供新的思路。
大腸桿菌(Escherichia coliDH5a),購買于碧云天生物技術(shù)有限公司。LB培養(yǎng)基(Luria-Bertani broth):胰蛋白胨10 g,酵母粉5 g,氯化鈉10 g(購自上海國藥集團),蒸餾水1 L定容,調(diào)至pH7.0(120oC高壓滅菌,冷卻后4oC冰箱保存)。LB瓊脂培養(yǎng)基:每1 L LB培養(yǎng)液加入15 g瓊脂(120oC高壓滅菌備用)。
石墨烯氧化物(Graphene oxide, GO)采用改良的Hummers方法合成[17],制備過程如下:(1) 預(yù)氧化:將10 g石墨粉加入80oC的含有濃H2SO4(60 mL)、過硫酸鉀(15 g)和五氧化二磷(15 g)的混合體系中,反應(yīng)5 h。冷卻至室溫后,用大量超純水洗滌、過濾,至清洗后的水呈中性為止,抽濾所得沉淀在空氣中自然干燥。(2) 氧化:將 2 g預(yù)氧化的石墨粉加至150 mL冰水浴的濃H2SO4中,攪拌均勻后,再加入25 g的高錳酸鉀。35oC水浴反應(yīng)4 h,冷卻至室溫,250 mL超純水緩慢稀釋(保持溫度低于45oC),再加入1 L超純水,后緩慢加入30 mL 30%的H2O2終止反應(yīng)。(3) 后處理:1:10(V/V)鹽酸水溶液(1 L)洗滌兩次,除去金屬離子;再用1 L超純水洗滌,除去多余的酸;樣品超聲2 h,將上層的穩(wěn)定懸浮液透析3天,進一步除去殘留的金屬離子和其他陰離子,定濃度為1 mg/mL備用。
將GO懸液(約10 μL)滴于云母片上,在空氣中自然干燥。用原子力顯微鏡(AFM,美國Veeco公司)在2 μm范圍內(nèi)進行掃描,用Nanoscope軟件分析其形貌、粒徑、分散情況。
將GO稀釋到適合濃度,使用1 cm內(nèi)徑的石英比色皿,加入液體1.5 mL,用紫外可見分光光度計(UV-Vis,日立集團)在200–700 nm波段以1200 nm/s的速度掃描GO樣品。
從活化的大腸桿菌 DH5a平板挑取一個單菌落,接種于LB液體培養(yǎng)基中過夜增殖。取1 mL對數(shù)生長期的大腸桿菌DH5a菌液,10,000 r/min離心1 min收集沉淀,用滅菌的生理鹽水(0.9%NaCl)洗3次,測定大腸桿菌在600 nm處的吸光值,估算大腸桿菌的數(shù)量。
大腸桿菌 DH5a(~107個)分散于石墨烯氧化物終濃度為100 μg/mL的生理鹽水中,在37oC中輕柔震蕩4 h。取100 μL作用后的懸液加入2 mL新鮮的LB液體培養(yǎng)基,在37oC、200 r/min恒溫搖床孵育過夜,測定OD600值。
取100 μL作用后的懸液進行梯度稀釋,稀釋倍數(shù)為10倍、102倍、103倍、104倍、105倍、106倍。然后從每個稀釋梯度液中取100 μL均勻涂在LB瓊脂平板上,使菌液滲入培養(yǎng)基表層內(nèi),倒置于37oC恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)過夜,菌落計數(shù)。每個稀釋濃度涂布3塊平板,重復(fù)三次取平均值。
取100 μL大腸桿菌DH5a菌液,均勻涂在LB瓊脂平板上,在37oC培養(yǎng)箱中孵育30 min;取無菌干燥的直徑為 6 mm的濾紙片,每片滴加 100μg/mL GO 20 μL,將濾紙片平放于無菌清潔培養(yǎng)皿中,自然干燥,輕輕置于LB瓊脂平板表面,倒置于37oC恒溫培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng),觀察并測量抑菌圈的大小。用無菌生理鹽水浸泡的濾紙片作為陰性對照,氨芐青霉素(Ampicillin, Amp)浸泡的濾紙片作為陽性對照。
所制備的GO為棕色膠狀懸液,顏色隨濃度逐漸加深,透光率減小。AFM成像顯示:GO的厚度~1.1 nm,側(cè)邊尺寸不均一,分布在數(shù)十 nm至數(shù)μm(圖1a)。紫外可見光譜(圖1b)顯示GO在230 nm有一個特征吸收峰,表明已成功合成具有良好分散性的單片層GO。
圖1 石墨烯氧化物的原子力顯微鏡成像(a)和紫外可見分光光度法光譜(b)Fig.1 AFM image (a) and UV-vis spectrum (b) of graphene oxide.
抑菌環(huán)的直徑越大,抗菌劑的抗菌性能越好,反之亦然。實驗結(jié)果顯示,陽性對照氨芐卡那霉素(Ampicillin, Amp)有明顯的抑菌環(huán),直徑約23 mm,顯示強抗菌性;石墨烯氧化物與陰性對照相同,未產(chǎn)生抑菌環(huán),說明此方法顯示GO無抗菌性(圖2)。
大腸桿菌與石墨烯氧化物孵育4 h后,取100μL培養(yǎng)液于新鮮LB培養(yǎng)基過夜培養(yǎng),圖3(a)顯示,GO組與對照組培養(yǎng)基均呈現(xiàn)渾濁狀態(tài),表明有大腸桿菌生長;氨芐卡那霉素組培養(yǎng)基澄清,顯示了強抗菌性。大腸桿菌存活率(OD600)測定顯示(圖3b):GO組與對照組的細胞數(shù)幾乎一致,而氨芐卡那霉素組細菌數(shù)幾乎為零,表明石墨烯氧化物無抗菌性。此結(jié)果與文獻[12]一致,其原因可能是LB培養(yǎng)基中的蛋白胨吸附于GO表面,使GO發(fā)生團聚(圖3a的GO試管底部有明顯的黑色團聚物),失去與細胞充分接觸的空間位點[12]。
圖2 抑菌環(huán)法測定石墨烯氧化物抗菌性Fig.2 Antibacterial property of GO by inhibition zone method.
我們用菌落計數(shù)法測定100 mg/mL的石墨烯氧化物對大腸桿菌DH5α的抑菌率。結(jié)果表明,在GO作用下,大腸桿菌菌落明顯少于對照組,接近陽性對照氨芐卡那霉素(如圖4a)。菌落計數(shù)結(jié)果顯示,石墨烯氧化物與大腸桿菌作用4 h后,約80%的細菌被殺死(圖4b),證實石墨烯氧化物具有優(yōu)異的抗菌性能。這可能是因為GO與大腸桿菌在生理鹽水中充分接觸導(dǎo)致細胞膜受到機械性損傷,細胞死亡[8,9]。
不同的實驗測定方法顯示 GO不同的抗菌效果,我們認為主要與石墨烯氧化物本身的物理化學(xué)性質(zhì)相關(guān)。抑菌環(huán)實驗法是利用抑菌劑在LB平板表面具有一定的擴散性,從而殺死濾紙邊緣的細菌,形成明顯的抑菌環(huán)。石墨烯氧化物作為一種不可溶解的納米材料,其水溶液滴加在濾紙上不具有擴散性,無法形成明顯的抑菌環(huán),因此,該方法不能準確反映GO是否具有抗菌性。光電比濁法測定GO抗菌性時,由于GO具有大的比表面積,表面可吸附蛋白質(zhì)、DNA等生物大分子[18],GO置于LB培養(yǎng)基時,易吸附培養(yǎng)基中的蛋白質(zhì)而團聚(圖3a),形成易于細菌生長的附著點,維持甚至促進細菌的生長[12]。團聚狀態(tài)GO不能真實反映單片層GO的理化性質(zhì),因此,該方法也不適于研究單層石墨烯氧化物的抗菌性。然而,平板菌落計數(shù)法克服了LB液體培養(yǎng)基對GO穩(wěn)定性影響的因素,大腸桿菌與GO懸液充分接觸后,平板計數(shù)直接反映作用后的細菌數(shù)目,避免了其他干擾因素,客觀準確地反映石墨烯氧化物的抗菌性。
圖3 光電比濁法測定石墨烯氧化物抗菌性(a) GO處理大腸桿菌的數(shù)碼成像,生理鹽水為陰性對照,氨芐青霉素為陽性對照;(b) 大腸桿菌的存活率Fig.3 GO-affected antibactericial activity determined by spectrophotometer turbidity estimation.(a) Digital image of GO-treated E.coli, with, 0.9% NaCl as control and ampicillin as positive control;(b) Viability of E.coli by measuring OD600
圖4 菌落計數(shù)法測定石墨烯氧化物的抗菌性(a) 大腸桿菌的菌落直觀圖,(b) 石墨烯氧化物對大腸桿菌的抑菌率Fig.4 GO-affected antibacterial activity determined by plate count assay.(a) Digital image of colony-forming unit of E.coli, (b) Antibacterial activity of GO against E.coli
通過三種方法測定石墨烯氧化物抑菌效果,可見不同的測定方法得到不同的結(jié)果。結(jié)合理論分析,我們認為平板菌落計數(shù)法能準確地呈現(xiàn)GO與大腸桿菌的作用效果,適合于GO抗菌性的檢測,為GO
抗菌性研究提供了有效的實驗方法。
1 He H, Klinowski J, Forster M,et al. A new strucutral model for graphite oxide[J]. Chem Phys Lett, 1998, 287(1–2): 53–56
2 Lerf A, He H, Forster M,et al. Structure of Graphite oxide revisited[J]. Phys Chem B, 1998, 102(23): 4477–4482
3 Liu Y, Yu D, Zeng C,et al. Biocoompatible Graphene oxide-based glucose biosensors[J]. Langmuir, 2010, 26(9):6158–6160
4 Wang Y, Li Z, Hu D,et al. Aptamer/graphene oxide nanocomplex forin situmolecular probing in living cell[J]. J Am ChemSoc, 2010, 132(27): 9274–9276
5 Liu Z, Robinson J, T Sun,et al. PEGylated nanographene oxide for delivery of water-insoluble cancer drugs[J]. J Am Chem Soc, 2008, 130(33): 10876–10877
6 Feng L, Liu Z. Graphene in biomedicine: opportunities and challenges[J]. Nanomedicine, 2011, 6(2): 317–324
7 Sun X, Liu Z, Welsher K,et al. Nano-graphene oxide for cellular imaging and drug delivery[J].Nano Rese, 2008,1(3): 203–212
8 Hu W, Peng C, Luo W,et al. Graphene-based antibacterial paper[J]. ACSnano, 2010, 4(7): 4317–4323
9 Akhavan O, Ghaderi E. Toxicity of graphene and graphene oxide nanowalls against bacteria[J]. ACSnano, 2010,4(10): 5731–5736
10 Wan Y, Wang Y, Wu J,et al. Graphene oxide sheet-mediated silver enhancement for application to electrochemical biosensors[J]. AnalChem, 2011, 83(3):648–653
11 Santos C M, Tria M C R, Vergara R A M V,et al.Antimicrobial graphene polymer (PVK-GO) nanocomposite films[J]. Chem Commun, 2011, 47: 8892–8894
12 Ruiz O N, Fernando K A S, Wang B,et al. Graphene Oxide: A non-specific enhancer of cellular growth[J].ACSnano, 2011, 5(10): 8100–8107
13 黃文芳, 張 松. 微生物學(xué)實驗指導(dǎo)[M]. 廣州: 暨南大學(xué)出版社, 2003 HUANG Wenfang, ZHANG Song. Microbiology experiments guidance[M]. Guangzhou: Jinan Uiversity Press,2003
14 曾維才, 譚 敏, 張佳琪. 不同抑菌方法在食品防腐劑效果評價方面的比較[J]. 食品安全質(zhì)量檢測學(xué)報, 2010,27(3): 112–117 ZENG Weicai, TAN Min, ZHANG Jiaqi. Effect of different inhibitory methods on the antimicrobial activity of preservative[J]. J Food Safty Qual, 2010, 27(3): 112–117
15 符曉梅, 張建新. 兩種方法測定化妝品防腐劑抑菌效果及評價[J]. 環(huán)境與健康雜志, 2000, 17(3): 167–170 FU Xiaomei, ZHANG Jianxin. Assessment and application of two methods determining the bacteriostatic effects of cosmetic antiseptic[J]. J Environm Health, 2000, 17(3):167–170
16 張 濛, 王歆宇, 王萬海, 等. 兩種方法檢測抗菌劑抑菌效果的比較[J]. 中國消毒學(xué)雜志, 2006, 23(5):436–438 ZHANG Meng, WANG Xinyu, WANG Wanhai,et al.Comprasion of examing baacteriostatic efficacy of antimicrobials by two methods[J]. Chinese J Disinfect,2006, 23(5): 436–438
17 Hummers W S, Offeman R E. Preparation of graphitic oxide[J]. J Am Chem Soc, 1958, 80(6): 1339
18 Hu W, Peng C, Lv M,etal. Protein corona-mediated mitigation on cytotoxicity of graphene oxide[J]. ACSnano,2011, 5(5): 3693–3700