史 瑩,楊 敏,梁 琪,* ,喬海軍,張衛(wèi)兵
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730070;2.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)理學(xué)院,甘肅蘭州730070;3.甘肅省功能乳品工程實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730070)
牛乳蛋白質(zhì)通常分為酪蛋白(casein,CN)和乳清蛋白,各自含量約占乳中總蛋白的80%和20%,依品種不同有變化;酪蛋白是乳中一大類蛋白質(zhì)的總稱,是乳中主要的蛋白質(zhì)成分,由 αs1-、αs2-、β-、κ-CN四部分組成,質(zhì)量比大約為 4∶1∶4∶1 左右,平均等電點(diǎn)在4.8;四種單體可以通過(guò)在水相中疏水作用和靜電排斥作用的平衡形成CN膠束[1-2]。常乳中大約80%~95%的CN以膠體分散粒子的形式存在,稱為膠束,其中包含94%的蛋白質(zhì)干基和6%的膠體磷酸鈣[3]。CN被廣泛用在食品、化妝品和一些其他的日常用品中,因此CN膠束的性質(zhì)和結(jié)構(gòu)被大量研究。掃描電鏡、透射電鏡、電泳、反相高效液相色譜、動(dòng)態(tài)光散射、超聲波光譜、紫外-可見分光光度計(jì)等技術(shù)廣泛用于CN膠束結(jié)構(gòu)的研究中。
CN膠束的內(nèi)部結(jié)構(gòu)至今無(wú)法觀察,許多學(xué)者提出了各種理論模型,以下三種模型被廣泛接受:亞單元模型,該模型認(rèn)為,15~20個(gè)CN單體分子通過(guò)疏水相互作用組成一個(gè)個(gè)亞單元,根據(jù)κ-CN的含量又分為富含和少量的κ-CN亞單元,亞單元和磷酸鈣連接形成 CN膠束;內(nèi)部結(jié)構(gòu)模型,認(rèn)為 αs1-、αs2-、β-CN位于膠束的核心,κ-CN位于膠束的表面,起保護(hù)作用;微簇結(jié)構(gòu)模型,認(rèn)為CN分子與磷酸鈣纏繞在一起,磷酸鈣分布在膠粒的內(nèi)部,κ-CN在膠束表面形成毛發(fā)層結(jié)構(gòu)為膠束提供靜電相互作用或電荷,維持CN粒子的穩(wěn)定性[4-7]。微簇結(jié)構(gòu)模型在2003年提出后被廣泛接受。
CN膠束表面接近球形并且不光滑,在亞結(jié)構(gòu)之間存在間隙[5]。膠束表面κ-CN的分布不均勻,從表面突起并自然延伸,直徑大約在50~600nm,平均直徑在150nm[8]。對(duì)CN膠束表面結(jié)構(gòu)的研究主要通過(guò)掃描電子顯微鏡、透射電子顯微鏡和原子力顯微鏡。
1.2.1 掃描電子顯微鏡(scanning electron microscopy,SEM)近年來(lái),掃描電子顯微鏡觀察CN膠束的表觀結(jié)構(gòu)已經(jīng)被廣泛應(yīng)用,工作原理是用一束極細(xì)的電子束掃描樣品,在樣品表面激發(fā)出次級(jí)電子,次級(jí)電子的多少與樣品的表面結(jié)構(gòu)有關(guān)。該手段能觀察CN膠束不光滑的表面并且能測(cè)定粒徑的大小。通過(guò)電子顯微鏡觀察CN膠束的形狀是球形,直徑在50~500nm之間[3]。
普通的SEM分辨率比較低,不能清楚地描述表面結(jié)構(gòu),觀察到的CN膠束是球形。而近幾年通過(guò)高分辨率的掃描電鏡觀察到是近球形,比普通膠束更大,直徑在300~350nm之間,CN膠束的表面比簡(jiǎn)單的由相對(duì)較短的毛發(fā)覆蓋的硬球體更加復(fù)雜。CN膠束結(jié)構(gòu)比簡(jiǎn)單的球形模型有更多的“面”,表面相當(dāng)不規(guī)則,表面積比球形大。一些κ-CN只是管狀模型的終止,不需要均勻的覆蓋“球形的”表面,更接近CN的真實(shí)表面結(jié)構(gòu)[9]。
1.2.2 透射電子顯微鏡(transmissionelectron microscopy,TEM)透射電子顯微鏡的原理:由電子槍發(fā)射出來(lái)的電子束,在真空通道中通過(guò)聚光鏡將之匯聚成一束光斑,照射在樣品上,電子束攜帶樣品的內(nèi)部結(jié)構(gòu)信息,在熒光屏上成像。在低分辨率時(shí)不能提供有關(guān)結(jié)構(gòu)的信息,因此一些學(xué)者用冷凍透射電子顯微鏡(cryo-TEM)和高分辨率的TEM觀察CN膠束的結(jié)構(gòu),成功地觀察到了脫脂乳的CN膠束結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)CN膠束的表面結(jié)構(gòu)有點(diǎn)粗糙并且不規(guī)則,膠束的形狀沒有出現(xiàn)完全的球形[10],并且有一個(gè)相當(dāng)不規(guī)則的外圍結(jié)構(gòu),從表面上看,CN被組織成蛋白質(zhì)鏈相互糾纏的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),內(nèi)部結(jié)構(gòu)自然的延伸并在表面突出[11]。通過(guò)高分辨率的TEM觀察CN膠束的結(jié)構(gòu),McMahon[12]等人提出了CN膠束的超分子結(jié)構(gòu),盡管在CN膠束內(nèi)部允許相當(dāng)大的變化,但其仍是一個(gè)非常開放的結(jié)構(gòu),通過(guò)磷酸鈣納米簇上的蛋白質(zhì)鏈的環(huán)環(huán)相扣來(lái)自我強(qiáng)化;在超分子矩陣結(jié)構(gòu)內(nèi)閉合的空間將由牛乳中溶解的乳糖、離子和其他可溶性物質(zhì)的乳清占據(jù)。由此可見,高分辨率和冷凍的TEM能夠成功的觀察CN膠束的表面結(jié)構(gòu),且兩者都被許多學(xué)者廣泛應(yīng)用。
1.2.3 原子力顯微鏡(atomic force microscopy,AFM)原子力顯微鏡有一根納米級(jí)的探針,通過(guò)檢測(cè)樣品與探針之間的原子排斥力來(lái)反映樣品表面形貌和其他表面結(jié)構(gòu),可以分辨出極小尺度上的表面細(xì)節(jié)和特征。通過(guò)該手段觀察發(fā)現(xiàn),牛乳CN在高壓下,原始膠束的直徑減小,解離程度大于聚集程度[13]。在高壓下,CN表面形態(tài)相當(dāng)不均勻,復(fù)合物易碎,膠束連續(xù)不斷的分解,最終完全分解成單體[14]。
目前,酪蛋白膠束表面結(jié)構(gòu)常用的觀測(cè)手段為上述三種電子顯微鏡。SEM和TEM的前處理比較復(fù)雜,容易破壞CN膠束的結(jié)構(gòu);TEM對(duì)待測(cè)樣品有厚度和形態(tài)上的要求,并且要求在電子線照射下不損壞或發(fā)生變化;AFM避免了復(fù)雜的前處理以及電子束輻射損傷等的限制,具有很高的橫向分辨率和縱向分辨率[15]。將AFM和其他儀器結(jié)合起來(lái),相互取長(zhǎng)補(bǔ)短,在未來(lái)將會(huì)有更好的應(yīng)用前景。
在酶、熱和高壓等各種外界因素的作用下,CN膠束的穩(wěn)定性會(huì)發(fā)生變化。這些變化包括酶凝過(guò)程中的解離和聚集,蛋白質(zhì)水解、絮凝、凝膠作用和脫水收縮作用等[16]。酶促反應(yīng)過(guò)程中κ-CN的Met106鍵首先會(huì)發(fā)生水解,使CN膠束發(fā)生解離,生成兩種多肽:一種是N-末端的para-κ-CN,仍然和CN膠束連接著,而C-末端的多肽(糖巨肽),被釋放到乳清相中[17]。這些變化都可通過(guò)電泳、反相-高效液相色譜、超聲波光譜、擴(kuò)散波光譜、動(dòng)態(tài)光散射、粒度儀和紫外分光光度計(jì)測(cè)定。這些方法又可分為直觀的測(cè)定和通過(guò)樣品溶液的理化指標(biāo)來(lái)測(cè)定兩種,其中電泳和反相高效液相色譜法可直觀測(cè)得CN膠束的解離;而其他幾種方法是通過(guò)測(cè)定溶液的指標(biāo)來(lái)說(shuō)明膠束的解離與聚集。
聚丙烯酰胺凝膠電泳是以聚丙烯酰胺凝膠作為支持介質(zhì)的電泳方法。蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì),組成CN膠束的單體分子量和電荷不同,根據(jù)解離程度,溶液中的單體含量在改變,電泳可分析這四種單體的變化,因此可將其分離。十二烷基磺酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)和光密度計(jì)連接后,可成功分析凝乳酶作用脫脂乳過(guò)程中κ-CN的水解,κ-CN的水解和para-κ-CN的合成是同時(shí)進(jìn)行的,兩者之間的關(guān)系呈線性負(fù)相關(guān)[17]。這些結(jié)果表明SDS-PAGE能用來(lái)檢測(cè)酶解脫脂乳中的κ-CN。采用Urea-PAGE分析發(fā)現(xiàn),CN的水解過(guò)程中,γ-CN、β-CN的水解產(chǎn)物增加。研究表明,CN被水解成各個(gè)單體:γ1-、γ2-、γ3-、β-、αs1-CN、蛋白眎、蛋白胨;β-CN被逐步水解并在24h內(nèi)完全水解[18]。Urea-PAGE圖能很清晰的展示纖溶酶處理的脫脂乳中β-CN的大量水解。根據(jù)SDS-PAGE電泳條帶的強(qiáng)度發(fā)現(xiàn),酶交聯(lián)的β-CN在酸性條件下具有較高的穩(wěn)定性,能抵抗胃蛋白酶的消化[19]。上述這些研究結(jié)果可以充分地表明電泳方法可以成功的用來(lái)分析CN的水解。然而,通過(guò)電泳分析只能定性說(shuō)明膠束解離與聚集的過(guò)程。
反相高效液相色譜法,一般用非極性固定相,流動(dòng)相為水或緩沖液。CN在解離或聚集的過(guò)程中,通過(guò)RP-HPLC可以測(cè)得單體的含量,進(jìn)行定量說(shuō)明。Thoma[20]等人通過(guò)RP-HPLC方法定量的測(cè)定了CN的水解產(chǎn)物糖基化巨肽和非糖基化巨肽,發(fā)現(xiàn)此方法的準(zhǔn)確度和精密度都很好。Aline[21]等人用RP-HPLC分離CN和它們的脫磷酸產(chǎn)物,通過(guò)峰的保留時(shí)間對(duì)各個(gè)單體的分離以及脫磷酸產(chǎn)物成功地進(jìn)行了確定。
電泳和液相色譜法是測(cè)定CN膠束解離的兩種常見方法,樣品處理都相對(duì)簡(jiǎn)單,干擾小、進(jìn)樣量少、操作簡(jiǎn)單、靈敏度高,是直觀測(cè)定CN膠束解離的手段,快速、準(zhǔn)確。
超聲波光譜法通過(guò)測(cè)定溶液的粒徑來(lái)動(dòng)態(tài)觀察CN膠束的解離與聚集,通過(guò)測(cè)定超聲速率和衰減量的變化來(lái)表征CN膠束的解離與聚集。傳統(tǒng)的超聲波有分辨率限制,超聲波速率的最高分辨率是0.1m/s,不能測(cè)量凝膠過(guò)程。最新引進(jìn)的高分辨率的超聲波光譜能使超聲速率測(cè)量有更高的分辨率,可達(dá)0.2mm/s。
用超聲波光譜法可以研究酶凝、酸凝和乳清蛋白的熱凝膠系統(tǒng),超聲波實(shí)驗(yàn)可以證明凝膠的出現(xiàn)、明確反應(yīng)的不同階段,但不能詳細(xì)的說(shuō)明其中細(xì)節(jié)[22]。超聲波光譜可以和流變學(xué)結(jié)合使用,更加有利于對(duì)酪蛋白解離或聚集細(xì)節(jié)的研究。Wang[23]對(duì)比超聲波和振蕩流變學(xué)方法發(fā)現(xiàn),通過(guò)超聲波的方法測(cè)量CN酶法水解和聚集過(guò)程效果更為明顯,但對(duì)CN凝膠的形成不敏感。通過(guò)高分辨率的超聲波光譜和動(dòng)態(tài)流變學(xué)、近紅外透射結(jié)合分析酶凝過(guò)程中牛乳微結(jié)構(gòu)的動(dòng)態(tài)改變,結(jié)果發(fā)現(xiàn),由于κ-CN“毛發(fā)層”水解膠束聚合成的簇,膠束的平均粒徑降低然后形成凝膠結(jié)構(gòu),超聲波對(duì)聚合物的散射能很好的描述酶凝過(guò)程中超聲衰減的變化[24]。高分辨率的超聲波光譜能低強(qiáng)度、無(wú)損的分析牛乳形成的凝膠微觀進(jìn)程的細(xì)節(jié),必將有廣闊的應(yīng)用前景。
擴(kuò)散波光譜可以檢測(cè)酶凝過(guò)程中CN膠束大小的改變,以此來(lái)分析CN膠束的聚集。DWS對(duì)粒徑大小的變化很敏感,能夠用來(lái)檢測(cè)粒徑大小的變化及 CN 膠束的聚集[25]。Alexander[26]等人通過(guò) DWS測(cè)粒徑大小,粒徑迅速增加能成功表征凝膠點(diǎn),CN膠束半徑的小幅度減小是由于κ-CN毛層的坍塌和移除。此實(shí)驗(yàn)可以說(shuō)明DWS結(jié)果可以成功的分析CN膠束的解離與聚集。DWS還可以成功的觀察酶凝過(guò)程中表觀半徑和濁度的變化:酶凝過(guò)程中脫脂乳的濁度和表觀半徑都是增加的[27]。DWS還可以用于酸奶和干酪的加工中檢測(cè)CN膠束的聚集。DWS是一種較為先進(jìn)的方法。
近幾年光散射方法發(fā)展迅速,主要由于其對(duì)樣品是非侵入性的;簡(jiǎn)便、快捷;實(shí)驗(yàn)成本比較低;樣品不需要任何處理(除稀釋之外)。光散射需樣品滿足“單一散射原則”,因此需要對(duì)樣品進(jìn)行高度稀釋[28]。章宇斌[29]等人用DLS測(cè)定了膠束尺寸并研究了CN膠束在各種因素下的聚集行為,熱處理導(dǎo)致流體力學(xué)半徑(Rh)不斷減小,Rh隨蛋白濃度和離子強(qiáng)度先減小后增大。Qi[30]等人通過(guò)DLS說(shuō)明蛋白酶加入后的0~120min,Rh增加;120~180min 時(shí),Rh逐漸趨于穩(wěn)定,這些結(jié)果成功表明CN加入蛋白酶后發(fā)生聚集。粒徑大小或分布的改變能為膠束的聚集和解離提供有效信息,能幫助預(yù)測(cè)膠體系統(tǒng)的穩(wěn)定性和一系列宏觀性質(zhì)。不同因素影響下,CN膠束會(huì)發(fā)生不同程度的解離和聚集,DLS能快速、無(wú)創(chuàng)的測(cè)量CN膠束的粒徑。但是,通過(guò)DLS測(cè)粒度分布時(shí),采用不同稀釋劑和不同溫度,粒度分布是不同的[31]。
國(guó)外用DLS和DWS研究CN的較多,而用粒度儀測(cè)量CN膠束大小并不多見。McSweeney[32]等人通過(guò)馬爾文粒度分析儀測(cè)得模擬乳化液加熱之前pH在6.8時(shí),粒徑分布在 10~100μm;pH6.9 時(shí),1~10μm;pH≥7.0,粒度分布在<1μm,此結(jié)果可以說(shuō)明調(diào)節(jié)pH可以增加CN膠束的穩(wěn)定性;粒度儀能成功測(cè)量CN膠束的粒徑。
粒度儀在測(cè)定CN膠束粒徑方面的報(bào)道比較少,激光光散射粒度儀報(bào)道相對(duì)較多,但是其原理和光散射原理一樣,這里不再介紹。光散射具有無(wú)損、無(wú)耗、快速、檢測(cè)溫度適宜、信息量多、操作簡(jiǎn)便快速等優(yōu)點(diǎn),但缺點(diǎn)也很明顯,必須要對(duì)樣品進(jìn)行高度稀釋,這就限制了其應(yīng)用。而擴(kuò)散波光譜是一種無(wú)干擾、無(wú)侵入的光散射技術(shù),不需要對(duì)樣品進(jìn)行稀釋,適用于稠密的未稀釋樣品多重散射的光測(cè)量。
紫外可見分光光度法是通過(guò)測(cè)定溶液的濁度變化說(shuō)明CN膠束穩(wěn)定性的。
由于各種物質(zhì)具有不同的分子、原子和不同的分子空間結(jié)構(gòu),其吸收光能量也不盡相同,可根據(jù)吸收光譜判別物質(zhì)是否發(fā)生聚集和解離。在600nm下,用紫外可見分光光度計(jì)(UV-可見)測(cè)CN膠束溶液的吸光度,發(fā)現(xiàn)10℃和30℃CN聚集方式相似,但10℃時(shí)聚集速率慢[33]。Hidalgo[34]等人用 UV-可見說(shuō)明加熱使κ-CN穩(wěn)定性發(fā)生變化,并在聚集之前構(gòu)象發(fā)生改變或局部解離。
UV-可見是研究物質(zhì)的成分、結(jié)構(gòu)和物質(zhì)相互作用的有效手段,具有靈敏度高、分析速度快、應(yīng)用廣泛等特點(diǎn)。
牛乳中含有豐富的蛋白質(zhì)、脂肪、礦物質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),CN是乳蛋白中一大類磷蛋白,近年來(lái)許多學(xué)者對(duì)CN膠束的結(jié)構(gòu)、影響因素、酸凝及酶凝機(jī)理等進(jìn)行了研究,但由于其結(jié)構(gòu)的復(fù)雜性,至今為止,CN膠束的內(nèi)部詳細(xì)結(jié)構(gòu)尚不清楚,只提出了一些理論結(jié)構(gòu)模型,CN膠束內(nèi)部結(jié)構(gòu)的研究方法和手段是今后研究的重點(diǎn),有待于學(xué)者深入探究。
研究CN膠束的解離與聚集的手段中,超聲波光譜和擴(kuò)散波光譜更先進(jìn)、無(wú)損,與傳統(tǒng)的方法相比,超聲波光譜可以低強(qiáng)度、無(wú)損的分析樣品,能透過(guò)光學(xué)上不透明的樣品,更適合牛乳系統(tǒng)的研究;擴(kuò)散波光譜適用于研究光學(xué)不透明稠密體系中凝固(膠凝)、聚合、絮凝和聚集過(guò)程,對(duì)粒徑的變化很敏感;紫外通過(guò)測(cè)溶液的濁度來(lái)分析樣品,快速、簡(jiǎn)便,而前處理較其他方法比較復(fù)雜,但由于儀器的價(jià)格較其他先進(jìn)儀器低廉,因此普及度高,應(yīng)用廣泛;超聲波光譜儀和擴(kuò)散波光譜儀價(jià)格昂貴,對(duì)于這兩種方法研究CN膠束的穩(wěn)定性在國(guó)內(nèi)罕見報(bào)道,因此應(yīng)用受到限制,但鑒于具有多種優(yōu)點(diǎn),相信在以后的研究應(yīng)用中會(huì)越來(lái)越廣泛。
[1]Liu Y,Guo R.Interaction between casein and sodium dodecyl sulfate[J].Journal of Colloid and Interface Science,2007,315:685-692.
[2]Donato L,Guyomarc H F.Formation and properties of the whey protein/κ-casein complexes in heated skim milk-A review[J].Dairy Sci Techno,2009,89:3-29.
[3]Phadungath C.Casein micelle structure:a concise review[J].Songklanakarin J Sci Technol,2005,27(1):201-212.
[4]韓清波,劉晶.酪蛋白膠束結(jié)構(gòu)及其對(duì)牛乳穩(wěn)定性的影響[J].中國(guó)乳品工業(yè),2007,35(2):43-45.
[5]Horne D S.Casein micelle structure:Models and muddles[J].Current Opinion in Colloid & Interface Science,2006,11:148-153.
[6]Kruif C G,Huppertz T,Volker S U,et al.Casein micelles and their internal structure[J].Advances in Colloid and Interface Science,2012:171-172.
[7]方海田,德力格爾桑,劉慧燕.牛乳中CN膠束結(jié)構(gòu)理論模型的研究進(jìn)展[J].農(nóng)業(yè)科學(xué)研究,2006,27(3):86-89.
[8]Dalgleish D G.Casein micelles as colloid:Structures and stabilities[J].J Dairy Sci,1998,81:3013-3018.
[9]Dalgleish D G,Spagnuolo P A,Goff H D.A possible structure of the casein micelle based on high-resolution field-emission scanning electron microscopy[J].International Dairy Journal,2004,14:1025-1031.
[10]Knudsen J C,Skibsted L H.High pressure effects on the structure of casein micelles in milk as studied by cryotransmission electron microscopy[J].Food Chemistry,2010,119:202-208.
[11]Marchin S,Putaux J L,Pignon F,et al.Effects of the environmental factors on the casein micelle structure studied by cryo-transmission electron microscopy and small-angle x-ray scattering/ultrasmall-angle x-ray scattering[J].The Journal of Chemical Physics,2007,126:1-10.
[12]McMahon D J,Oommen B S.Supramolecular structure of the casein micelle[J].Journal of Dairy Science,2008,91:1709-1721.
[13]Thiebaud S R,Dumay M E.Pressurisation of raw skim milk and of a dispersion of hosphocaseinate at 9℃ or 20℃:effects on casein micelle size distribution[J].International Dairy Journal,2004,14:55-68.
[14]Gebhardt R,Doste W,F(xiàn)riedric J,et al.Size distribution of pressure-decomposed casein micelles studied by dynamic light scattering and AFM[J].Eur Biophys J,2006,35:503-509.
[15]張德添,何昆,張颯,等.原子力顯微鏡發(fā)展近況及其應(yīng)用[J].現(xiàn)代儀器,2002(3):6-9.
[16]Bansal N,F(xiàn)ox P F,Mcsweeney P L H.Factors that affect the aggregation of rennet-altered casein micelles at low temperatures[J].International Journal of Dairy Technology,2008,61:56-61.
[17]Anema S G,Lee S K,Klostermeyer H.Effect of pH at heat treatment on the hydrolysis of k-casein and the gelation of skim milk by chymosin[J].Food Science and Technology,2007,40:99-106.
[18]Crudden A,Bastien A D,F(xiàn)ox P F.Effect of hydrolysis of casein by plasmin on the heat stability of milk[J].International Dairy Journal,2005,15:1017-1025.
[19]Monogioudi E,F(xiàn)accio G,Lille M,et al.Effect of enzymatic cross-linking of β -casein on proteolysis by pepsin[J].Food Hydrocolloids,2011,25:71-81.
[20]Thoma C,Krause I,Kulozik U.Precipitation behaviour of caseinomacropeptides and their simultaneous determination with whey proteins by RP-HPLC[J].International Dairy Journal,2006,16:285-293.
[21]Molina A C T,Alli I,Konishi Y,et al.Effect of dephosphorylation on bovine casein[J].Food Chemistry,2007,101:1263-1271.
[22]Corredig M,Marcela A,Dalgleish D G.The application of ultrasonic spectroscopy to the study of the gelation of milk components[J].Food Research International,2004,37:557-565.
[23]Wang Q,Bulca S,Ulrich K.A comparison of low-intensity ultrasound and oscillating rheology toassesstherenneting properties of casein solutions after UHT heat pre-treatment[J].International Dairy Journal,2007,17:50-58.
[24]Dwyer C,Donnelly L,Buckin V.Ultrasonic analysis of rennet-induced pre-gelation and gelation processes in milk[J].Journal of Dairy Research,2005,72:303-310.
[25]Singh Y H H,Horne D S.Determination of early stages of rennet-induced aggregation of casein micelles by diffusing wave spectroscopy and rheological measurements[J].Current Applied Physics,2004,4:362-365.
[26]Marcela A,Dalgleish D G.Application of transmission diffusing wave spectroscopy to the study of gelation of milk by acidification and rennet[J].Colloids and Surfaces B:Biointerfaces,2004,38:83-90.
[27]Sandra S,Cooper C,Marcela A,et al.Coagulation properties of ultrafiltered milk retentates measured using rheology and diffusing wave spectroscopy[J].Food Research International,2011,44:951-956.
[28]MarcelaA,Dalgleish D G.Dynamiclightscattering techniques and their applications in food science[J].FOBI,2006,1(1):2-13.
[29]章宇斌,齊崴,蘇榮欣,等.動(dòng)態(tài)光散射分析不同物化條件下CN的聚集行為及其膠束尺寸[J].分析化學(xué),2007,35(6):809-813.
[30]Qi W,Su R X,He Z M,et al.Pepsin-induced changes in the size and molecular weight distribution of bovine casein during enzymatic hydrolysis[J].J Dairy Sci,2007,90:5004-5011.
[31]Beliciu C M,Moraru C I.Effect of solvent and temperature on the size distribution of casein micelles measured by dynamic light scattering[J].J Dairy Sci,2009,92:1829-1839.
[32]McSweeney S L,Mulvihill D M,O’Callaghan D M.The influence of pH on the heat-induced aggregation of model milk protein ingredient systems and model infant formula emulsions stabilized by milk protein ingredients[J].Food Hydrocolloids,2004,18:109-125.
[33]Bansal N,F(xiàn)ox P F,McSweeney P L H.Aggregation of rennet-altered casein micelles at low temperatures[J].J Agric Food Chem,2007,55:3120-3126.
[34]Hidalgoa M E,Piresb M S,Risso P H.A study on bovine kappa-casein aggregation after the enzymatic action of chymosin[J].Colloids and Surfaces B:Biointerfaces,2010,76:556-563.