馮娜娜,陶 婷
(上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬瑞金醫(yī)院 老年病科,上海 200025)
脂肪分解是人體能量代謝的核心反應(yīng)之一。當(dāng)機(jī)體有能量需求時(shí),甘油三酯在特異性的脂肪酶的作用下分解為甘油和脂肪酸為機(jī)體提供能量。如果人體脂肪分解出現(xiàn)障礙,就會(huì)影響機(jī)體能量的平衡進(jìn)而引發(fā)肥胖和胰島素抵抗等疾病。Fetuin-a是存在于正常哺乳動(dòng)物血清中的一種糖蛋白,是胰島素受體酪氨酸激酶天然的抑制劑[1]。人的fetuin-a基因位于3號(hào)染色體q27位點(diǎn)上,該位點(diǎn)與代謝方面疾病密切相關(guān)[2]。Mathews ST等研究發(fā)現(xiàn),fetuina基因敲除的小鼠能夠抵抗高脂飲食引起的肥胖[3];而臨床研究表明體內(nèi)fetuin-a的升高與肥胖發(fā)生密切相關(guān)[4]。但目前fetuin-a與肥胖相關(guān)的分子機(jī)制尚并不清楚。本研究旨在探討fetuin-a對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞脂肪分解的影響及其可能的分子機(jī)制。
3T3-L1前脂肪細(xì)胞株購自美國ATCC,牛血清胎球蛋白(fetuin-a)購自 Calbiochem 公司;高糖DMEM培養(yǎng)基購自美國GIBCO公司;胎牛血清(Fetal Bovine Serum,F(xiàn)BS)購自PAA Laboratories Gmb H公司;地塞米松購自Merck公司;甘油檢測(cè)試劑盒、甘油標(biāo)準(zhǔn)品、1-甲基-3-異丁基黃嘌呤(IBMX)購自Sigma公司;Trizol購自Invitrogen公司;Oligo(d T)Primer、d NTP、M-MLV 逆轉(zhuǎn)錄酶、Taq DNA聚合酶為Promega公司產(chǎn)品;Real-time PCR試劑盒購自Takara公司;引物由Invitrogen公司合成;Phospho-HSL(Ser563)、ATGL、β-actin抗體購自美國Cell Signaling Technology公司;HRP標(biāo)記的二抗購自Santa Cruz公司;CAMP ELISA試劑盒購自R&D公司。
1.2.1 3T3-L1前脂肪細(xì)胞的培養(yǎng)與誘導(dǎo)分化3T3-L1前脂肪細(xì)胞用含10%FBS的高糖DMEM培養(yǎng)基在37℃,5%CO2條件下培養(yǎng)。細(xì)胞匯合后2 d,加入誘導(dǎo)液 A(10%FBS高糖 DMEM,含0.5 m M IBMX、1μM 地塞米松、10μg/ml胰島素)開始誘導(dǎo)。2天后,換成誘導(dǎo)液B(10%FBS高糖DMEM含10μg/ml胰島素)。2天后重新?lián)Q10%FBS高糖DMEM繼續(xù)培養(yǎng),隔天換液一次。誘導(dǎo)分化8天,細(xì)胞90%以上呈成熟脂肪細(xì)胞表型,可用于實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 甘油含量測(cè)定 分化成熟的脂肪細(xì)胞,以含0.2%牛血清白蛋白的DMEM孵育過夜,PBS洗3遍,加入含有不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)的fetuin-a孵育12 h。用甘油檢測(cè)試劑盒測(cè)定各處理組培養(yǎng)液中的甘油濃度作為脂解率的指標(biāo),操作方法嚴(yán)格按照甘油檢測(cè)試劑盒說明書執(zhí)行。
1.2.3 Real-time PCR測(cè)定 ATGL m RNA 的表達(dá)細(xì)胞分化成熟后用不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)的fetuin-a孵育12 h后,用Trizol試劑提取脂肪細(xì)胞總RNA。定量后取總RNA 2μg,以O(shè)ligo(d T)為引物進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),反應(yīng)體系為25μl。按SYBR green PCR master mix試劑盒的說明書進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增和檢測(cè),所用ATGL引物序列為:上游引物:5’-CGTCACCTGTGCCTTACTC-3’,下游引 物:5’-GGGCTCAAACTCCCAAAC-3’。 用 βactin作為內(nèi)參校正,采用相對(duì)定量方式表示各樣本目的基因的表達(dá)。實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。
1.2.4 Western blot測(cè)定 HSL、ATGL蛋白表達(dá)細(xì)胞分化成熟后用不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)的fetuin-a孵育12 h后,PBS洗3遍,再用蛋白提取裂解液裂解細(xì)胞,13 000×g離心20 min,吸取上清進(jìn)行蛋白定量。取50μg樣品進(jìn)行SDS-PAGE蛋白電泳,通過電泳儀將蛋白轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,以5%脫脂奶粉封閉1 h,再用5%脫脂奶粉稀釋一抗4℃雜交過夜,TBST(20 mmol/L Tris·HCl,p H 7.6;150 mmol/L NaCl;0.1%Tween20)洗3次,每次10 min;5%脫脂奶粉稀釋二抗,孵育1 h,TBST洗3次,每次10 min;最后以化學(xué)發(fā)光法(ECL)顯影。ImageJ分析電泳條帶密度值,目的蛋白表達(dá)水平以該條帶密度占β-actin條帶密度的百分比(%)表示。
1.2.5 c AMP濃度檢測(cè) 分化成熟的細(xì)胞用不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)fetuin-a孵育12 h后,棄掉上清,PBS洗3遍,加入細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞后,按照c AMP ELISA檢測(cè)試劑盒說明書對(duì)細(xì)胞內(nèi)c AMP進(jìn)行檢測(cè)。測(cè)得的結(jié)果用總蛋白校正,數(shù)值以c AMP pmol/mg protein表示。
根據(jù)同類研究和本研究預(yù)試驗(yàn)的結(jié)果,12 h是fetuin-a抑制脂肪細(xì)胞基礎(chǔ)脂肪分解的有效時(shí)間點(diǎn)。分化成熟的脂肪細(xì)胞用不同濃度(0、0.2、1、5、40 μM)fetuin-a孵育12 h后,測(cè)定培養(yǎng)液中的甘油釋放量作為脂解率的指標(biāo)。如圖1所示,隨著fetuin-a濃度的增加,脂肪細(xì)胞的甘油釋放顯著降低,并具有劑量依賴關(guān)系(P<0.05)。其中40μM fetuin-a作用最顯著,能使脂肪分解下降約61%。
分化成熟的脂肪細(xì)胞用不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)fetuin-a孵育12 h后,提取總 RNA,采用Real-time PCR法檢測(cè)目的基因的mRNA的表達(dá)。如圖2所示,與對(duì)照組相比fetuin-a能顯著抑制ATGL的 mRNA表達(dá)(P<0.05)。
分化成熟的脂肪細(xì)胞用不同濃度(0、0.2、1、5、40μM)fetuin-a孵育12 h后,提取細(xì)胞總蛋白,采用Western blot法檢測(cè)目的基因的蛋白表達(dá)。如圖3所示,與對(duì)照組相比fetuin-a能顯著抑制 HSL、ATGL的蛋白表達(dá)(P<0.05,P<0.05)。
為了了解fetuin-a影響脂肪分解的可能機(jī)制,我們檢測(cè)了脂肪分解的經(jīng)典傳導(dǎo)通路-c AMP依賴的PKA通路。ELISA檢測(cè)結(jié)果顯示,fetuin-a作用12 h,能夠顯著降低細(xì)胞內(nèi)c AMP的含量,并呈劑量依賴關(guān)系(P<0.05,見圖4)。40μM fetuin-a使細(xì)胞內(nèi)c AMP的含量下降最顯著,34%左右。
圖1 Fetuin-a對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞脂肪分解的影響
圖2 Fetuin-a對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞ATGL mRNA表達(dá)的影響
本實(shí)驗(yàn)的主要目的在于研究fetuin-a對(duì)脂肪分解的影響及其機(jī)制。Fetuin-a是存在于正常哺乳動(dòng)物血清中的一種糖蛋白,其最初從牛血清中分離提純獲得,胚胎期可由肝臟、胰臟、腎臟等多種組織器官合成分泌,成年后則主要由肝臟合成分泌入血清[5]。人的fetuin-a基因位于3號(hào)染色體q27位點(diǎn)上,該位點(diǎn)與代謝方面疾病密切相關(guān)[2]。在飲食誘導(dǎo)的肥胖小鼠的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,與對(duì)照組比較肥胖小鼠血清fetuin-a的含量明顯增加。Fetuin-a敲除的小鼠給予高脂飲食時(shí),與正常小鼠比較脂肪沉積明顯減少并能抵抗由此引起的肥胖[3]。臨床研究發(fā)現(xiàn),fetuin-a升高與內(nèi)臟脂肪沉積有關(guān)[6]。病人在體重減輕后,血清中fetuin-a也明顯降低[7]。Chen HY等人發(fā)現(xiàn)在非糖尿病血透病人中,血清中fetuin-a水平最高組軀干肥胖的發(fā)生率是最低組的3.2倍[4]。以上研究提示fetuin-a與肥胖有關(guān)。脂肪分解異常會(huì)導(dǎo)致肥胖,皮下脂肪組織中兒茶酚胺誘導(dǎo)的脂肪分解受損是肥胖患者的一個(gè)常見特征[8,9]。本研究通過測(cè)定細(xì)胞培養(yǎng)液中的甘油釋放量證實(shí)fetuin-a以劑量依賴的方式抑制脂肪細(xì)胞的脂肪分解,表明fetuin-a是脂肪分解的重要的抑制因子。
圖3 Fetuin-a對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞phospho-HSL和ATGL蛋白表達(dá)的影響
圖4 Fetuin-a對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞內(nèi)cAMP含量的影響
HSL是經(jīng)典的脂肪分解反應(yīng)限速酶,其表達(dá)水平降低及活性減弱均會(huì)導(dǎo)致機(jī)體脂肪分解率下降。機(jī)體通過c AMP-PKA通路調(diào)節(jié) HSL的活性,c AMP是該信號(hào)通路中的重要的第二信使。在激素的作用下Gs偶聯(lián)的受體被激活,從而激活c AMP,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)c AMP水平增加,進(jìn)而激活PKA。PKA使HSL磷酸化,磷酸化的HSL從胞漿向脂滴表面轉(zhuǎn)位從而分解脂滴內(nèi)甘油三酯[10]。本實(shí)驗(yàn)通過western blot檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)磷酸化HSL的含量,通過ELISA檢測(cè)檢測(cè)細(xì)胞中c AMP的含量。結(jié)果表明,fetuin-a能夠降低細(xì)胞內(nèi)c AMP及磷酸化HSL的含量。據(jù)此推測(cè),fetuin-a通過降低細(xì)胞中c AMP的含量,抑制了細(xì)胞中HSL的磷酸化過程,從而抑制了脂肪細(xì)胞的脂肪分解。
ATGL是體內(nèi)脂肪分解的另一種限速酶,已證實(shí)ATGL主要水解甘油三酯為甘油二酯,其與HSL共同提供體內(nèi)大約95%的脂肪水解活性[11]。其表達(dá)水平降低同樣會(huì)導(dǎo)致機(jī)體脂肪分解率下降。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)fetuin-a能夠明顯降低細(xì)胞內(nèi)ATGL m RNA及蛋白的表達(dá),推測(cè)這與fetuin-a抑制脂肪分解相關(guān)。
[1]Mathews ST,Chellam N,Srinivas PR ,et al.Alpha2-HSG,a specific inhibitor of insulin receptor autophosphorylation,interacts with the insulin receptor[J].Mol Cell Endocrinol,2000,164(1-2):87.
[2]Kissebah AH,Sonnenberg GE,Myklebust J,et al.Quantitative trait loci on chromosomes 3 and 17 influence phenotypes of the metabolic syndrome[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(26):14478.
[3]Mathews ST,Singh GP,Ranalletta M,et al.Improved insulin sensitivity and resistance to weight gain in mice null for the Ahsg gene[J].Diabetes,2002,51(8):2450.
[4]Chen HY,Chiu YL,Hsu SP,et al.Association of serum fetuin A with truncal obesity and dyslipidemia in non-diabetic hemodialysis patients[J].Eur J Endocrinol,2009,160(5):777.
[5]Triffitt JT,Gebauer U,Ashton BA,et al.Origin of plasma alpha2HS-glycoprotein and its accumulation in bone.Nature[J],1976,262(5565):226.
[6]Ix JH,Wassel CL,Kanaya AM,et al.Fetuin-A and incident diabetes mellitus in older persons[J].JAMA,2008,300(2):182.
[7]Norbert Stefan,Stefan M.Krober,Anita M.Hennige,et al.Alpha2-Heremans-Schmid glycoprotein/fetuin-A is associated with insulin resistance and fat accumulation in the liver in humans[J].Diabetes Care,2006,29(4):853.
[8]Lafontan M,Langin D.Lipolysis and lipid mobilization in human adipose tissue[J].Prog Lipid Res,2009,48(5):275.
[9]Langin D,Dicker A,Tavernier G,et al.Adipocyte lipases and defect of lipolysis in human obesity[J].Diabetes,2005,54(11):3190.
[10]Clifford GM,Londos C,Krasmer FB,et al.Translocation of hormone-sensitive lipase and perilipin upon lipolytic stimulation of rat adipocytes[J].J Biol Chem,2000,275(7):5011.
[11]Schweiger M,Schreiber R,Haemmerle G,et al.Adipose triglyceride lipase and hormone-sensitive lipase are the major enzymes in adipose tissue triacylglycerol catabolism[J].J Biol Chem,2006,281(52):40236.