黃 燕,張耀鵬,羅 杰,邵惠麗,胡學(xué)超
(東華大學(xué) 纖維材料改性國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,材料科學(xué)與工程學(xué)院,化學(xué)纖維研究所,上海 201620)
蠶絲具有質(zhì)輕細(xì)長、光澤獨(dú)特、手感優(yōu)良、穿著舒適等優(yōu)良特性,素有“纖維皇后”之美稱。一直以來,蠶的紡絲機(jī)理都是生物學(xué)家、化學(xué)家及材料學(xué)家們的研究熱點(diǎn)。迄今為止,大多科學(xué)家都認(rèn)為蠶的紡絲是液晶紡絲,但對(duì)于絲素蛋白的液晶形成機(jī)理,則存在多種不同說法,如Viney等[1-2]的鹽橋球狀棒理論、Magoshi等[3]的絲素液晶成纖理論、Kaplan等[4]的膠束理論及于同隱等[5-6]的折疊鏈理論等。對(duì)于絲素蛋白成纖過程中聚集態(tài)結(jié)構(gòu)的形成,現(xiàn)有研究尚未得出一致的理論。而從蠶本身出發(fā),研究其腺體中紡絲液的流動(dòng)狀態(tài)及聚集態(tài)結(jié)構(gòu)的變化,無疑對(duì)絲素蛋白的纖維化機(jī)理研究具有較重要的借鑒作用。
同步輻射作為X射線源,具有通量高、準(zhǔn)直性高以及波長連續(xù)可調(diào)等優(yōu)點(diǎn)[7]。同步輻射X射線衍射技術(shù)是研究生物大分子晶體的主要手段,已證實(shí)蠶絲具有半晶型形態(tài)結(jié)構(gòu)[8];生物絲具有高度可延伸性主要受其微觀結(jié)構(gòu)的無序相(disordered phase)的影響,而其晶體結(jié)構(gòu)也可發(fā)生彈性形變。另外,Martel等[9-10]利用同步輻射X射線衍射技術(shù)研究了pH、剪切速率[11]對(duì)微流體管道中再生絲素蛋白水溶液構(gòu)象轉(zhuǎn)變的影響。本文利用同步輻射廣角X射線衍射(SR-WAXD)對(duì)五齡家蠶、解剖后的蠶腺體,以及脫膠絲進(jìn)行測(cè)試,研究干燥過程及拉伸過程中腺體內(nèi)絲素蛋白有序態(tài)結(jié)構(gòu)的演變,并探索絲素蛋白在纖維化過程中其聚集態(tài)結(jié)構(gòu)的變化過程和主要影響因素。
將五齡家蠶經(jīng)丙酮麻醉后固定于金屬實(shí)驗(yàn)臺(tái),通過改變固定蠶體的方式使其背面或側(cè)面分別置于同步輻射X射線光路中,并依次對(duì)蠶體的頭部、胸部、腹部、尾角處進(jìn)行同步輻射X射線衍射測(cè)試(圖1),采用 Mar 345成像板探測(cè)器記錄二維X射線衍射結(jié)果。因蠶腺體(圖2)以Z字型折疊在蠶體內(nèi),蠶體尾角處主要有后部腺體(P),腹部中有部分后部腺體(P)、中部腺體后區(qū)(MP)和中區(qū)(MM),胸部中有中部腺體前區(qū)(MA)和前部腺體(A),頭部中只有部分前部腺體(A)、吐絲管和噴絲口。
圖1 同步輻射廣角X射線衍射測(cè)試家蠶示意圖(側(cè)面入光方式)Fig.1 Schematic setup of SR-WAXD experiment on silkworm (incident beam from lateral silkworm)
圖2 蠶腺體各區(qū)段示意圖Fig.2 Scheme of different divisions of silk gland
1.2.1 有表皮濕態(tài)腺體 將五齡家蠶麻醉后置于培養(yǎng)皿中解剖,用去離子水清洗腹內(nèi),取出兩條完整的腺體備用。腺體按其P、MP、MM、MA、A進(jìn)行切斷(圖2),將各樣品貼附于聚酰亞胺膜(商品名Kapton)上,對(duì)其進(jìn)行同步輻射X射線衍射測(cè)試。其中,后部腺體、前部腺體各測(cè)試1點(diǎn),中部腺體各區(qū)分別測(cè)試不同兩點(diǎn)(即MPP、MPA;MMP、MMA;MAP、MAA)。另外,由于同步輻射X射線光斑較前部腺體大,因此,前部腺體測(cè)試時(shí)需將同等長度的5根前部腺體并排進(jìn)行測(cè)試。
1.2.2 去表皮濕態(tài)腺體 將蠶內(nèi)腺體取出后,用去離子水浸泡約30s,再用尖嘴鑷子將其白色表皮剝除,由于前部及后部腺體的表皮不易去除,本實(shí)驗(yàn)僅將中部腺體切為MP、MM、MA 3段進(jìn)行測(cè)試,方法同上。
1.2.3 腺體的干燥 取去表皮濕態(tài)腺體MM、MA兩段分別進(jìn)行干燥,每隔5min左右測(cè)試1次,且用稱重法對(duì)其稱量,若5min內(nèi)其質(zhì)量波動(dòng)范圍在0.1%之內(nèi),即認(rèn)為腺體已完全干燥。總測(cè)試時(shí)間約為1~2h,測(cè)試方法同上。
1.2.4 腺體及脫膠絲的拉伸 將去表皮濕態(tài)腺體MM固定于自制拉伸儀,分別以拉伸速度17.4及29.0μm/s進(jìn)行拉伸,并對(duì)其進(jìn)行同步輻射X射線衍射原位測(cè)試。為了對(duì)比結(jié)果,將成束脫膠絲[12]固定于相同光路進(jìn)行X射線衍射測(cè)試。
儲(chǔ)存環(huán)能量,800MeV;流強(qiáng),200mA;光斑尺寸,2mm×1mm;X射線波長,0.154nm;束線阻攔器尺寸,1cm×1cm;探測(cè)器直徑,345mm;成像板像素,150μm。樣品到探測(cè)器距離與放樣方式有關(guān),介于155~176mm。實(shí)驗(yàn)過程中,光源光斑位置未隨時(shí)間變動(dòng)。本實(shí)驗(yàn)在國家同步輻射實(shí)驗(yàn)室(合肥)X射線衍射和散射試驗(yàn)站完成。
本實(shí)驗(yàn)采用聚丙烯薄片為標(biāo)樣,利用軟件FIT2D對(duì)其衍射環(huán)進(jìn)行圓心定位,并校準(zhǔn)樣品到探測(cè)器距離。為避免成像板原有圖樣的影響,對(duì)樣品二維衍射圖譜的左下角部分做相同角度區(qū)域的90°扇形積分,得到其一維衍射圖譜。利用Origin 8扣除對(duì)應(yīng)背景的衍射數(shù)據(jù),得到實(shí)際樣品的一維衍射圖譜。上述標(biāo)定的圓心和樣品到探測(cè)器的距離可用于相同放樣方式下的所有測(cè)試樣品。由于放樣方式不同,各樣品所扣除的背景衍射數(shù)據(jù)以及樣品到探測(cè)器距離有所不同。對(duì)于活蠶、拉伸的腺體和脫膠絲,扣除的背景是空氣的衍射數(shù)據(jù);對(duì)于未拉伸的腺體,所扣除的背景是Kapton膜和空氣的衍射數(shù)據(jù)。對(duì)于活蠶和未拉伸的腺體(固定于出光口),校正后的樣品到探測(cè)器距離為155mm;對(duì)于拉伸的腺體和脫膠絲(固定于拉伸儀),校正后的樣品到探測(cè)器距離為176mm。當(dāng)樣品固定于拉伸儀時(shí),需移動(dòng)探測(cè)器,使拉伸儀置于出光口和探測(cè)器之間。
家蠶絲素蛋白的結(jié)晶結(jié)構(gòu)通常分為絲素Ⅰ(silkⅠ)和絲素Ⅱ(silkⅡ)兩種結(jié)構(gòu)[13]。silkⅡ是以氫鍵連接的反平行β-片層(β-sheet)結(jié)構(gòu),而silkⅠ由于其結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定,易轉(zhuǎn)變成為結(jié)構(gòu)更穩(wěn)定的silkⅡ結(jié)構(gòu),使得對(duì)它的結(jié)構(gòu)研究較困難,并存在一些爭(zhēng)議。例如:在Lotz等[14]提出的曲軸模型中,丙氨酸殘基和谷氨酸殘基分別以 β-片層和 α-螺旋構(gòu)象存在;在 Fossey等[15]提出的模型中,左旋的片層結(jié)構(gòu) (lefthanded sheet-like conformation)和右旋的片層結(jié)構(gòu)(right-h(huán)anded sheet-like conformation)共存,且左右扭曲程度相同;Asakura等[16-17]認(rèn)為silkⅠ是一種重復(fù)的Ⅱ類β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)。
使用0.154nm的X射線光束,文獻(xiàn)[18-19]中silkⅡ(β-片層)結(jié)構(gòu)的主要結(jié)晶衍射峰在2θ=20°左右。其中,2θ=19.7°的衍射峰([200]晶面,晶面間距為0.45nm)與分子鏈間的排列相關(guān)(圖3中方向a),而2θ=20.6°的衍射峰([020]晶面,晶面間距為0.43nm)與β-片層之間的排列相關(guān)(圖3中方向b)。由于這兩個(gè)衍射峰很接近,常重疊為1個(gè)衍射峰。另外,silkⅡ還在2θ=8.7°、9.9°([010]晶面)、23.3°([002]晶面)、24.5°([201]晶面)、27.3°([012]或[220]晶面)、29.7°([030]晶面)、31.8°([022]或[130]晶面)、39.0°([003]晶面)和39.9°([040]晶面)處有結(jié)晶衍射峰,對(duì)應(yīng)的晶面間距分別為1.01、0.895、0.38、0.36、0.326、0.301、0.281、0.231 和0.226nm。silkⅠ 的 主 要 結(jié) 晶 衍 射 峰 在2θ=12.3°左右(晶面間距為0.72nm),2θ=15.8°、18.9°為α-螺旋的衍射峰(晶面間距分別為 0.47nm 和 0.56nm)[13]。 另 外,2θ=11.5°~12.5°范圍內(nèi)的平緩衍射峰通常被認(rèn)為與絲素蛋白無定型結(jié)構(gòu)相關(guān)[18]。
圖3 silkⅡ(β-片層)結(jié)晶結(jié)構(gòu)示意圖Fig.3 Scheme of silkⅡ (β-sheet)crystal structure
圖4和5分別為蠶體各部位的二維和一維X射線衍射圖譜。從圖4可看出,與蠶體胸部、腹部及尾角處相比,蠶頭部的X射線衍射圖譜明顯不同。從圖5可進(jìn)一步看出,無論采用側(cè)面入光還是背面入光的方式測(cè)試,蠶體胸部、腹部和尾角處的X射線衍射曲線均較平滑,而其頭部的衍射曲線的衍射峰較明顯,強(qiáng)度也高于其他部位的曲線。這可能是由于X射線穿透蠶體胸部、腹部及尾角處時(shí),被其表皮或體內(nèi)器官部分吸收,因此無法得到明顯的衍射信息。蠶頭部的衍射圖譜中均有明顯衍射峰,但不同測(cè)試方式所得到的峰位和強(qiáng)度有所不同。當(dāng)采用側(cè)面入光方式測(cè)試時(shí),圖5a中在8.8°、19.8°及27.1°處出現(xiàn)了衍射峰,結(jié)合文獻(xiàn)[18-19]可知,這些峰分別與silkⅡ結(jié)晶結(jié)構(gòu)中晶面間距為1.01、0.895及0.326nm的晶面的衍射有關(guān)。當(dāng)采用背面入光方式測(cè)試時(shí),圖5b中分別在12.3°、18.9°及27.3°附近有3個(gè)明顯的衍射峰。其中,12.3°的衍射峰是silkⅠ的衍射峰(晶面間距為0.72nm);27.3°的 衍 射 峰 是silkⅡ 的[012]或[220]晶面的衍射峰;18.9°處的衍射峰是晶面間距為0.56nm的α-螺旋結(jié)構(gòu)的衍射峰。對(duì)其的解釋可能為絲素蛋白在蠶頭部吐絲口處形成纖維的過程中,絲素蛋白大部分已轉(zhuǎn)變?yōu)閟ilkⅡ晶體結(jié)構(gòu),但仍存在部分未轉(zhuǎn)變完成的α-螺旋結(jié)構(gòu)。比較圖5a及b可發(fā)現(xiàn),同樣是蠶的頭部,入光方式的不同造成衍射峰的形狀區(qū)別很大。該現(xiàn)象可能是由蠶頭部軀殼的衍射或?qū)射線的吸收所引起的。由于無法對(duì)蠶頭部軀殼單獨(dú)制樣實(shí)驗(yàn),尚不能確定具體影響大小。由上述分析可知,衍射曲線上標(biāo)示的具體峰位與silkⅡ或silkⅠ結(jié)構(gòu)的衍射峰位十分接近,因此可認(rèn)為這些衍射峰與絲素蛋白晶體結(jié)構(gòu)相關(guān)的可能性更大。另外,圖4中蠶頭部的二維衍射圖均為同心圓環(huán)狀,說明此時(shí)在吐絲口中的初生纖維中,結(jié)晶區(qū)沒有明顯取向,這是由于纖維尚未經(jīng)過蠶頭部的扭動(dòng)拉伸。
圖4 活蠶的WAXD二維圖譜Fig.4 2-D WAXD patterns of silkworm
圖6為濕態(tài)腺體各區(qū)段的WAXD一維圖譜,其中,圖6a中的腺體有表皮,圖6b中的腺體被剝除表皮。對(duì)于有表皮的濕態(tài)腺體,P、MPP只在11.5°處出現(xiàn)1組平緩的衍射峰,通常被認(rèn)為此與絲素蛋白無定型結(jié)構(gòu)相關(guān);MPA、MMP、MMA、MAP出現(xiàn)兩組衍射峰,除在11.5°處出現(xiàn)與之前類似的衍射峰外,還分別在27.0°、27.3°及26.9°處出現(xiàn)1組衍射峰。這組衍射峰的峰位接近或等于27.3°,可能與silkⅡ結(jié)晶結(jié)構(gòu)中晶面間距為0.326nm的[012]或[220]晶面的衍射有關(guān)。而且,腺體在接近中部腺體前區(qū)的MAP的過程中,該峰位有逐漸接近27.3°的趨勢(shì)。這說明腺體中的silkⅡ結(jié)構(gòu)有可能在向前部絲腺流動(dòng)的過程中逐漸形成。另外,如圖7所示,水的衍射峰的峰位大約在28.0°附近,因此該組衍射峰還可能與腺體中水的含量有關(guān)。腺體中較高的水含量,可能導(dǎo)致27°附近衍射峰的峰強(qiáng)變大。對(duì)于去表皮的濕態(tài)腺體(圖6b),結(jié)果與有表皮的濕態(tài)腺體基本相似。從圖6a中還可看出,與帶皮腺體的其他區(qū)段相比,P、MPP、MAA、A區(qū)段在11.5°附近的無定形結(jié)構(gòu)的衍射峰較明顯,而在27.3°附近出現(xiàn)的衍射峰強(qiáng)度較弱或不存在,這可能與該部分腺體的直徑較小、表皮所占比例較大、絲素水溶液所占比例較少有關(guān)。其中,A區(qū)段中絲素溶液的濃度最高,腺體直徑最小,卻在27.3°附近出現(xiàn)的衍射峰強(qiáng)度較P、MPP、MAA稍強(qiáng),因此可能與P、MPP、MAA中silkⅡ結(jié)構(gòu)尚未明顯形成有關(guān)。
圖5 活蠶不同部位的WAXD一維圖譜Fig.5 1-D WAXD patterns of different parts of silkworm
圖6 濕態(tài)腺體各區(qū)段的WAXD一維圖譜Fig.6 1-D WAXD of different divisions of wet silk gland
為了研究水分流失對(duì)絲素蛋白晶體結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變的影響,對(duì)不同干燥時(shí)間的去表皮濕態(tài)腺體進(jìn)行了同步輻射WAXD測(cè)試。圖7為MA、MM干燥過程的測(cè)試結(jié)果,圖中可明顯觀察到干燥過程中衍射峰位置發(fā)生了明顯變化。對(duì)于MA(圖7a),從初始干燥階段的衍射峰可看出其含有無定形結(jié)構(gòu),與前述濕態(tài)腺體的測(cè)試結(jié)果相符。隨著水分減少,位于28.0°處的水的衍射峰強(qiáng)度逐漸減弱直至消失,其2θ值也隨之減小。干燥完成后,位于11.5°處的平緩衍射峰消失,而在11.9°處出現(xiàn)尖峰,其數(shù)值與晶面間距為0.72nm的silkⅠ的衍射峰相近(12.3°)。另外,在19.7°處出現(xiàn)了1組與silkⅡ結(jié)構(gòu)相關(guān)的晶面間距為0.45nm的[200]晶面的衍射峰,同時(shí)在27.8°處出現(xiàn)1組肩峰,接近于晶面間距為0.326nm 的[012]或[220]晶面的衍射峰(27.3°)。而 MM(圖7b)與 MA干燥過程的變化基本相似,但干燥完成時(shí)間遠(yuǎn)長于MA。由于MA比MM更接近于吐絲口,因此MA處紡絲液的組成也更接近于吐絲口處紡絲液的組成(如pH降低且更接近絲素蛋白的等電點(diǎn))。而紡絲液從吐絲口處噴出時(shí)可迅速固化,因此MA處紡絲液的固化速度也較快。
圖7 水及中部腺體在不同干燥時(shí)間的WAXD一維圖譜Fig.7 1-D WAXD of water and the middle division of silk gland at different drying time
從上述結(jié)果可看出,濕態(tài)腺體在干燥過程中,絲素蛋白中水分流失而固化,同時(shí)絲蛋白構(gòu)象發(fā)生變化。水的衍射峰逐漸減弱乃至消失,而與silkⅠ、silkⅡ晶體結(jié)構(gòu)有關(guān)的衍射峰逐漸增多。絲素蛋白構(gòu)象從無定形結(jié)構(gòu)逐漸失水轉(zhuǎn)變成交替堆積的α-螺旋和/或β-平行折疊構(gòu)象趨于由β-反平行折疊形成完整的silkⅡ?qū)訝罹w結(jié)構(gòu)。另外,對(duì)中部腺體干燥前后的二維衍射圖譜(圖8)進(jìn)行對(duì)比發(fā)現(xiàn),干燥后的圖譜為同心圓環(huán),這說明水分的流失可誘導(dǎo)絲素蛋白結(jié)晶,但結(jié)晶區(qū)并未發(fā)生明顯取向,蠶絲中的晶區(qū)取向可能是在蠶吐絲后經(jīng)過頭部的扭動(dòng)拉伸而誘導(dǎo)形成的。
圖8 中部腺體在不同干燥時(shí)間的WAXD二維圖譜Fig.8 2-D WAXD of the middle division of silk gland at different drying time
為了研究拉伸對(duì)腺體有序態(tài)結(jié)構(gòu)的影響,對(duì)腺體進(jìn)行勻速拉伸并結(jié)合SR-WAXD進(jìn)行測(cè)試(圖9)。從圖9a中可發(fā)現(xiàn),拉伸速度為17.4μm/s時(shí),隨著拉伸倍率(拉伸位移與腺體原長的比值)的增加,水的衍射峰(28.1°)強(qiáng)度逐漸減少,乃至消失;在38.6°處出現(xiàn)的弱峰,其數(shù)值與晶面間距為0.231nm的[003]晶面的衍射峰相近(39.0°),衍射強(qiáng)度發(fā)生小幅增強(qiáng)。當(dāng)拉伸倍率達(dá)0.7時(shí),在22.6°附近出現(xiàn)1組與silkⅡ結(jié)構(gòu)相關(guān)的[002]晶面的肩峰,其強(qiáng)度也逐漸增強(qiáng)。拉伸倍率達(dá)1.0時(shí),在9.2°、24.9°處附近出現(xiàn)兩組衍射峰,其中2θ=9.2°的衍射峰有可能與silkⅡ結(jié)晶結(jié)構(gòu)的[010]晶面相 關(guān),2 4.9°處較尖的衍射峰與晶面間距為0.36nm 的[201]晶面的衍射峰相近(24.5°)。而拉伸倍率達(dá)1.8時(shí),出現(xiàn)在20.6°處的衍射峰是silkⅡ的[020]晶面的衍射峰。從圖9b可發(fā)現(xiàn),拉伸速度為29.0μm/s時(shí),各衍射曲線與圖9a有相似的變化趨勢(shì)。不同之處在于:當(dāng)拉伸倍率達(dá)1.5時(shí),在21.5°、23.8°及41.9°處出現(xiàn)的峰位均接近脫膠絲的衍射峰;出現(xiàn)在27.2°處的衍射峰,與silkⅡ晶體結(jié)構(gòu)的[012]或[220]晶面的衍射峰有關(guān)(27.3°)。對(duì)于37°左右的尖峰,與文獻(xiàn)中silkⅠ和silkⅡ結(jié)構(gòu)的衍射峰不同,尚有待進(jìn)一步研究。從上述結(jié)果可看出,以較慢速度拉伸腺體的過程中,腺體逐漸脫水,與silkⅡ結(jié)構(gòu)相關(guān)的晶面衍射峰逐漸增多,且強(qiáng)度逐漸增強(qiáng);當(dāng)拉伸速度增大時(shí),這種趨勢(shì)更加明顯,且衍射峰的峰位愈接近于脫膠絲的峰位。這說明拉伸是絲素蛋白成纖的主要誘導(dǎo)因素,并使絲素蛋白向silkⅡ結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變。另外,將中部腺體不同拉伸倍率下的二維衍射圖譜與脫膠絲(圖10)進(jìn)行對(duì)比發(fā)現(xiàn),脫膠絲的衍射圖譜中可觀察到明顯的衍射光斑,而1.8倍拉伸后的中部腺體并未發(fā)現(xiàn)明顯的光斑,說明中部腺體被拉伸1.8倍時(shí),結(jié)晶區(qū)并不會(huì)因拉伸而有明顯取向。而蠶在紡絲過程中,遠(yuǎn)大于1.8的拉伸倍率導(dǎo)致脫膠絲有明顯的取向結(jié)構(gòu)。
圖9 脫膠絲(DS)及中部腺體中區(qū)(MM)在不同拉伸速度及拉伸倍率下的WAXD一維圖譜Fig.9 1-D WAXD of degummed silk and the middle division of silk gland at different drawing rates and drawing ratios
圖10 脫膠絲及中部腺體中區(qū)(MM)在不同拉伸倍率下的WAXD二維圖譜Fig.10 2-D WAXD of degummed silk and the middle division of silk gland at different drawing ratios
絲素蛋白在五齡熟蠶頭部吐絲口處形成與silkⅠ、silkⅡ晶體相關(guān)的結(jié)構(gòu);絲腺內(nèi)水分流失誘導(dǎo)絲素蛋白形成有序態(tài)結(jié)構(gòu),濕態(tài)腺體在干燥過程中,其構(gòu)象轉(zhuǎn)變成β-反平行折疊并趨于形成完整的silkⅡ?qū)訝罹w結(jié)構(gòu);拉伸作用為絲素蛋白成纖化的主要影響因素,可誘導(dǎo)絲素蛋白形成silkⅡ晶體結(jié)構(gòu)。
[1]KERKAM K,VINEY C,KAPLAN D,et al.Liquid crystallininity of natural silk secretions[J].Nature,1991,349:596-598.
[2]VINEY C.Light-microscopy of self-assembling biological macromolecules[J].Am Chem Soc,Div Polym Chem,1992,33(1):757.
[3]MAGOSHI J,MAGOSHI Y,NAKAMURA S.Crystallization,liquid crystal,and fiber formation of silk fibroin[J].J Appl Polym Sci:Appl Polym Symp,1985,41:187-204.
[4]JIN H J,KAPLAN D L.Mechanism of silk processing in insects and spiders[J].Nature,2003,424(6952):1 057-1 061.
[5]李光憲,于同隱.絲蛋白纖維化機(jī)理(Ⅰ)[J].科學(xué)通報(bào),1989,21:1 656-1 659.LI Guangxian,YU Tongyin.The fibrillization mechanism of silk fibroin(Ⅰ)[J].Chinese Science Bulletin,1989,21:1 656-1 659 (in Chinese).
[6]于同隱,李光憲.絲蛋白纖維機(jī)理的模型——應(yīng)力作用下絲蛋白構(gòu)象的轉(zhuǎn)變[J].高分子學(xué)報(bào),1993,4:415-422.YU Tongyin,LI Guangxian.A model of the fibrillization mechanism of silk fibroin the conformational transition of fibroin by stretching [J].Acta Polymerica Sinica,1993,4:415-422 (in Chinese).
[7]徐彭壽,潘國強(qiáng).同步輻射應(yīng)用基礎(chǔ)[M].合肥:中國科學(xué)技術(shù)大學(xué)出版社,2009:215-216.
[8]KRASNOV I,DIDDENS I,HAUPTMANN N,et al.Mechanical properties of silk:Interplay of deformation on macroscopic and molecular length scales[J].Phys Rev Lett,2008,100(4):048104.
[9]MARTEL A,BURGHAMMER M,DAVIES R,et al.A microfluidic cell for studying the formation of regenerated silk by synchrotron radiation small-and wide-angle X-ray scattering[J].Biomicrofluidics,2008,2(2):24 104.
[10]MARTEL A,BURGHAMMER M,DAVIES R J,et al.Silk fiber assembly studied by synchrotron radiation SAXS/WAXS and raman spectroscopy[J].J Am Chem Soc,2008,130(50):17 070-17 074.
[11]ROSSLE M,PANINE P,URBAN V S,et al.Structural evolution of regenerated silk fibroinunder shear: Combined wide-and small-angle X-ray scattering experiments using synchrotron radiation[J].Biopolymers,2004,74(4):316-327.
[12]王洪,張耀鵬,邵惠麗,等.再生絲素蛋白水溶液穩(wěn)定性的研究[J].合成纖維,2004(S1):12-14.WANG Hong,ZHANG Yaopeng,SHAO Huili,et al.The stability of regenerated silk fibroin solution[J].Synthetic Fiber in China,2004(S1):12-14(in Chinese).
[13]DRUMMY L F,PHILLIPS D M,STONE M O,et al.Thermally induced alpha-h(huán)elix to beta-sheet transition in regenerated silk fibers and films[J].Biomacromolecules,2005,6(6):3 328-3 333.
[14]LOTZ B,COLONNA C F.The chemical structure and the crystalline structures ofBombyx morisilk fibroin[J].Biochimie,1979,61(2):205-14.
[15]FOSSEY S A,NEMETHY G,GIBSON K D,et al.Conformational energy studies of beta-sheets of model silk fibroin peptides:Ⅰ.Sheets of poly(Ala-Gly)chains[J].Biopolymers,1991,31(13):1 529-1 541.
[16]ASAKURA T,ASHIDA J,YAMANE T,et al.A repeated beta-turn structure in poly(Ala-Gly)as a model for silkⅠ ofBombyxmorisilk fibroin studied with two-dimensional spin-diffusion NMR under off magic angle spinning and rotational echo double resonance[J].Journal of Molecular Biology,2001,306(2):291-305.
[17]ASAKURA T,OHGO K,KOMATSU K,et al.Refinement of repeated beta-turn structure for silkⅠconformation ofBombyxmorisilk fibroin using C-13solid-state NMR and X-ray diffraction methods[J].Macromolecules,2005,38(17):7 397-7 403.
[18]UM I C,KI C S,KWEON H Y,et al.Wet spinning of silk polymer:Ⅱ.Effect of drawing on the structural characteristics and properties of filament[J].Int J Biol Macromol,2004,34(1-2):107-119.
[19]SHEN Y,JOHNSON M A,MARTIN D C.Microstructural characterization ofBombyxmorisilk fibers[J].Macromolecules,1998,31(25):8 857-8 864.