高 靜
(青島科技大學(xué)化工學(xué)院,山東 青島 266042)
神經(jīng)節(jié)苷脂是一類(lèi)含有唾液酸的酸性鞘糖脂,是神經(jīng)細(xì)胞膜的重要組成成分,結(jié)構(gòu)中含有一種或多種成分的唾液酸,更確切的說(shuō),神經(jīng)節(jié)苷脂是由鞘氨基醇與脂肪酸相結(jié)合,然后通過(guò)酰胺鍵連接到包含一種或多種唾液酸的低聚糖鏈上[1]。在物理?xiàng)l件下,唾液酸分子中含有一個(gè)負(fù)電荷,通常以低聚糖,糖脂或糖蛋白的形式存在。近年來(lái),隨著對(duì)細(xì)胞膜表面糖類(lèi)生理功能研究的日益重視,神經(jīng)節(jié)苷脂的研究也日趨受到科學(xué)界的關(guān)注,特別是隨著神經(jīng)生物化學(xué)和神經(jīng)藥理學(xué)的發(fā)展,對(duì)神經(jīng)節(jié)苷脂的代謝及其生物學(xué)作用研究已經(jīng)成為神經(jīng)科學(xué)的重要課題[2]。神經(jīng)節(jié)苷脂在國(guó)內(nèi)大多數(shù)依賴(lài)進(jìn)口,雖然國(guó)內(nèi)外已報(bào)道了多種分離純化的方法,但大多都有操作步驟繁瑣、溶劑用量大等不足之處。目前國(guó)內(nèi)外的研究主要集中于其與生物膜其他有效成分之間的相互作用,而對(duì)神經(jīng)節(jié)苷脂的分離方法的最佳選擇未給予詳細(xì)的報(bào)道。因此,本文就多種分離純化方法做一下比較總結(jié),對(duì)其分離過(guò)程起到一定的幫助。
唾液酸的分析從它們釋放時(shí)開(kāi)始,將樣品純化后用不同技術(shù)進(jìn)行分析,下面就對(duì)不同分析檢測(cè)方法做一下介紹。
1.1 樣品制備
1.1.1 唾液酸的提取方式
一般使用兩種方式處理:酸水解及固定化酶處理。
酸水解是應(yīng)用最廣泛的處理方法。用恒溫箱或者加熱器將反應(yīng)保持在加熱條件下(70℃~90℃)。最常用的酸是硫酸濃度為25~100mmol的酸溶液[4]。其他研究者曾經(jīng)將不同的試劑用于水解,如稀釋的鹽酸、微波處理的乙酸、次硫酸鈉或者三氟醋酸,這些都可以減少水解時(shí)間。
對(duì)于不同的酸水解都要做對(duì)照實(shí)驗(yàn)(25mmol HCl,25mmol三氟醋酸TFA,25mmol H2SO4)。用鹽酸或TFA水解是最好的選擇,雖然經(jīng)過(guò)2h的水解會(huì)損失20%左右[5],但是操作簡(jiǎn)便。通過(guò)從微生物中獲得的神經(jīng)氨酸酶對(duì)唾液酸進(jìn)行水解時(shí)損失最小,但控制生物樣品的反應(yīng)并不容易,因?yàn)樗尼尫乓蕾?lài)于組織結(jié)構(gòu)以及酶的來(lái)源情況。
酶法處理效果比水解的效果要差,因?yàn)椴⒉荒芴崛∷蟹怯坞x唾液酸。相反,酸水解能夠提取所有非游離唾液酸,但是可能會(huì)對(duì)一部分造成破壞,并且能夠參與后面的反應(yīng)過(guò)程,各有利弊。
經(jīng)過(guò)實(shí)驗(yàn)比較,考慮到酶的成本及實(shí)際的反應(yīng)效果,我們認(rèn)為不管是采用色析法還是色度法,酸水解都是最常用的處理方法,因?yàn)檫@種方法重現(xiàn)性好,容易操作且成本相對(duì)較少。
1.1.2 純化
對(duì)于早前的硅酸鹽測(cè)定,陰離子交換柱是純化試樣的最常用的選擇。其他的純化方法還有固體萃取如SepPak C18柱[6],或者對(duì)樣品進(jìn)行超速離心,一般在水解后用于消除雜蛋白。另外一種可能是將陰離子交換柱與超速離心聯(lián)合應(yīng)用對(duì)樣品進(jìn)行處理,陰離子交換柱是最有效的提純方法,但同時(shí)也是繁瑣且耗費(fèi)大的方法。因此,只有當(dāng)樣品非常復(fù)雜的時(shí)候才使用這種方法。相反,SPE柱可以對(duì)樣品進(jìn)行快速簡(jiǎn)便的分離純化,但只有在干擾因素很小的條件下才適用,因此推薦在純化樣本后使用[7]。
1.2 唾液酸的測(cè)定
1.2.1 分光光度法
考慮到唾液酸的結(jié)構(gòu)與糖類(lèi)似,因此將分光光度法作為測(cè)定唾液酸的專(zhuān)用技術(shù)。但是采用這種方法的缺點(diǎn)是選擇性比較差,如果沒(méi)有之前的純化步驟就不能用此法測(cè)定,而且不能用其區(qū)別不同結(jié)構(gòu)的唾液酸。測(cè)定唾液酸基本上要用到三種比色法:間苯二酚法,丙二酰硫脲測(cè)定法及酶測(cè)定法[8]。
應(yīng)用最廣泛的分光光度法是由Svennerholm發(fā)明的[9],后人對(duì)這種方法又做了一定的修正,即用陰離子交換法來(lái)提高純度。采用這種方法時(shí)在蔗糖與間苯二酚之間發(fā)生反應(yīng)。由于唾液酸是糖脂類(lèi)神經(jīng)節(jié)苷酯物質(zhì)所含有的特征基團(tuán),因此當(dāng)與間苯二酚反應(yīng)生成紫色復(fù)合物可用于神經(jīng)節(jié)苷脂的含量測(cè)定。本法主要用于人體組織和生物體液的檢測(cè),但一些研究者已經(jīng)將其用于乳制品檢測(cè)當(dāng)中,如牛奶制品和嬰兒奶粉的檢測(cè)。
1.2.2 液相色譜法
液相色譜法也是測(cè)定唾液酸較常用的方法,當(dāng)樣品沒(méi)有被衍生化的時(shí)候,最常用的方法就是紫外檢測(cè)離子對(duì)的方法。這種方法最初是由Spyridiaki與Siskos聯(lián)合研究出來(lái)的[10],他們通過(guò)實(shí)驗(yàn)?zāi)M提高了以下物質(zhì)檢測(cè)時(shí)的溶出度,包括Neu5Ac,Neu5Gc,N-乙酰基-9-O-乙酰神經(jīng)氨酸等。在分析中使用了多種親脂的陽(yáng)性離子對(duì),如四辛基溴化銨(TOA-Br)三異丙醇胺(TIP),或者三乙醇胺(TEA)等。使用時(shí)一般選用TIP,因?yàn)樗膹?qiáng)度和分離度更好,但在操作中必須要注意pH的控制,(最佳值為3.5),這是決定因素。但是實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),當(dāng)這種方法應(yīng)用到血清、尿液、唾液當(dāng)中時(shí),只能區(qū)分兩種形式的唾液酸(Neu5Ac and Neu5Ac2en)[11],在純化步驟中必須除去蛋白質(zhì)。由于其限制條件較多,因此在分析結(jié)構(gòu)較多的唾液酸混合物時(shí)不推薦使用本方法。
1.2.3 氣相色譜法
氣相色譜法(GC)與質(zhì)譜法聯(lián)用起初是用來(lái)鑒定苷脂鍵及衍生反應(yīng)后的氧代神經(jīng)氨酸,Zanetta等人在此基礎(chǔ)上研究了一種非常有效的方法,用來(lái)測(cè)定唾液酸標(biāo)準(zhǔn)液及生物體液如馬血清及牛、羊、馬的下顎下腺粘蛋白等[12]。這種方法是在無(wú)水甲醇和使用七氟酸酐形成的揮發(fā)性衍生物存在的前提下,通過(guò)重氮甲烷酐的甲基酯化進(jìn)行氣相色譜/質(zhì)譜電子轟擊的。這種方法能夠區(qū)分大部分的唾液酸,包括O-酰化的Neu5Ac,Neu5Gc和8-O-鄰甲基和8-O-硫酸衍生物以及1,7-唾液酸內(nèi)酯。在后面的研究中,這個(gè)研究小組對(duì)本方法做了小的修改,從而對(duì)單糖、脂肪酸和氨基酸在人的粘蛋白和尿素當(dāng)中可以更好定位。樣品仍可以用相同的反應(yīng)容器,并按照分析唾液酸的方法用GC/質(zhì)譜進(jìn)行分析。相對(duì)于上面的方法,本法的測(cè)定范圍更加全面,其應(yīng)用前景也更加廣泛。
1.2.4 電遷移方法
這種技術(shù),尤其是毛細(xì)管區(qū)帶電泳技術(shù)(CZE),是應(yīng)用最廣泛的分析檢測(cè)糖類(lèi)結(jié)構(gòu)的方法之一[13]。因此當(dāng)對(duì)唾液酸進(jìn)行測(cè)定時(shí)也很容易操作。在最近的研究中,Ortner與Buchberger發(fā)展了一種簡(jiǎn)便、快捷并且重現(xiàn)性很好的方法來(lái)檢測(cè)人血清和標(biāo)準(zhǔn)糖蛋白中的Neu5Ac和Neu5Gc[14],這種方法是CZEMS(質(zhì)譜),本法用對(duì)乙酰氨基酚作為內(nèi)標(biāo)物。CZE和MS的連用檢測(cè)能夠在排除基質(zhì)干擾的條件下定量分析化合物,線性范圍保持在10~100μg/mL內(nèi),同時(shí)LOD值為2μg/mL。
2.1 提取、分離、及純化神經(jīng)節(jié)苷脂
在動(dòng)物組織中,最初以及最常用的的提取分離純化方法是由Folch等人研究的[15]。第一步是使用不同比例的氯仿和甲醇提取總脂成分。第二步,將神經(jīng)節(jié)苷脂從此成分中分離純化出來(lái),利用鹽在水相中的分配比不同提取。這些基本的方法隨著發(fā)展已經(jīng)發(fā)生了一些變化,但最終目標(biāo)都是為了提高目標(biāo)產(chǎn)物的含量。
2.2 神經(jīng)節(jié)苷脂的測(cè)定
總神經(jīng)節(jié)苷脂量可以通過(guò)分離純化唾液酸內(nèi)容物來(lái)定量,量化結(jié)果可以用脂鍵聯(lián)合唾液酸的方式表達(dá)。
不管總神經(jīng)節(jié)苷脂的鑒別還是定量都需要一種有效的分離方法,主要的方法有薄層色譜法(TLC),高效薄層色譜法(HPTLC)以及層色譜法(LC)[16]。
2.2.1 薄層色譜/高效薄層色譜
薄層色譜法屬于傳統(tǒng)技術(shù),受到廣泛應(yīng)用。目前,高效薄層色譜法使用的是二氧化硅60,能提供高分辨率來(lái)分離神經(jīng)節(jié)苷脂。不使用以往常用的塑料和玻璃板塊是因?yàn)殚g苯二酚-HCl常會(huì)對(duì)板塊染色,而鋁塊是因其不能抵抗酸的腐蝕。對(duì)于樣品的應(yīng)用,脂類(lèi)結(jié)合的唾液酸推薦量是5~10μg。
關(guān)于顯影劑,總混合物的比例為CHCl3:MetOH:0.2%CaCl2(55:45:5,v/v/v)[17],在此比例下能夠表現(xiàn)良好的重現(xiàn)性,且能夠分離出最重要的神經(jīng)節(jié)苷脂(GM3and GD3),甚至能在其脂肪酸和鞘氨基醇?jí)A基組成的基礎(chǔ)上分離同種神經(jīng)節(jié)苷脂。
2.2.1.1 經(jīng)典測(cè)定方法
歷史上,第一次用于染色的試劑是地衣酚,因?yàn)樗芘c糖的反應(yīng)連接脂類(lèi),稱(chēng)粉甲紫染色法。其缺點(diǎn)是對(duì)神經(jīng)節(jié)苷脂不具有專(zhuān)一性。斯文納霍爾姆通過(guò)采用間苯二酚檢測(cè),在100℃下反應(yīng)15min后,顏色變成了藍(lán)紫色,中性和硫化的神經(jīng)節(jié)苷脂則變成黃棕色,可以說(shuō)這是最有效和敏感的檢測(cè)試劑[18]。神經(jīng)節(jié)苷脂可以通過(guò)與牛腦或其他物種或組織的標(biāo)準(zhǔn)樣對(duì)照從而得到鑒定。為了準(zhǔn)確觀察樣品板是否被顯色試劑染色,需要用到光密度計(jì),可將光密度計(jì)波長(zhǎng)設(shè)為580nm進(jìn)行測(cè)定。這種方法可重復(fù)操作,用于簡(jiǎn)單快速的測(cè)定動(dòng)物組織中的神經(jīng)節(jié)苷脂,甚至被用來(lái)確定細(xì)胞系和在樣品中GM3和GD3以及GT3的神經(jīng)節(jié)苷脂(GM1,GM2,GM3,GD1a,GD1b和GT1b)。另一種可能性是通過(guò)計(jì)算機(jī)輔助,在二維高效液相色譜處理后對(duì)密度進(jìn)行成像,通過(guò)圖像分析儀處理間苯二酚染色板和用計(jì)算機(jī)軟件處理,允許測(cè)定GM3,GM1a,GD1a的線性在(r>0.99)0.01nmol和5nmol之間[19]。光密度測(cè)定方法比電腦成像密度方法更加靈敏和精確。
2.2.1.2 質(zhì)譜分析測(cè)定
質(zhì)譜(MS)能夠利用薄層色譜與高效液相色譜板來(lái)鑒別及定量神經(jīng)節(jié)苷脂,雖然這種方法的靈敏性較TLC/HPTLC免疫染色法低,但這兩種方法都可以作為薄層掃描法測(cè)定神經(jīng)節(jié)苷脂的補(bǔ)充方法。薄層色譜法與快原子轟擊(FAB)及質(zhì)譜連用的優(yōu)點(diǎn)歸因于FAB-MS與氣相、液相及超臨界流體色譜儀是從生物反應(yīng)表面得出結(jié)果的最有效方法[20]。TLCFAB-MS連用效率高且省時(shí),但條件是仍然需要大分子的解吸附來(lái)增加靈敏度,并盡量減少基質(zhì)中離子源的污染。因此,這種方法對(duì)樣本的要求很高,在實(shí)際的應(yīng)用中也會(huì)受到一定的限制。
2.2.2 液相色譜法與質(zhì)譜法聯(lián)用
近幾年,一項(xiàng)液相色譜法與質(zhì)譜法連用的技術(shù)逐步發(fā)展起來(lái),實(shí)驗(yàn)證明,這種方法能夠用于牛奶及嬰兒配方中的神經(jīng)節(jié)苷脂中GD3和GM3的測(cè)定。其GD3與GM3的重現(xiàn)性分別小于5%和14%,其覆蓋范圍在83%~87%[21]。由于本法的重現(xiàn)性比較低,所以不建議直接應(yīng)用,在進(jìn)一步研究及改進(jìn)之后,相信本方法會(huì)成為一種可靠的分析方法應(yīng)用到實(shí)際操作中去。
分光光度法不僅可以將生物試樣中的唾液酸進(jìn)行定量分析,還可以將總神經(jīng)節(jié)苷脂量進(jìn)行分析測(cè)定,因此現(xiàn)在仍然是主要的分析方法。其應(yīng)用方式主要為脂類(lèi)與唾液酸的聯(lián)合應(yīng)用。而色譜技術(shù)能夠?qū)煞N主要結(jié)構(gòu)的唾液酸進(jìn)行區(qū)分,這種方法不僅可以測(cè)定樣品的原始數(shù)據(jù)還可以檢測(cè)在臨床環(huán)境中唾液酸代謝情況的變化(如癌癥的早期診斷)[22]。
神經(jīng)節(jié)苷脂在生物試樣中的檢測(cè)都需要一系列冗長(zhǎng)的準(zhǔn)備工作,如提取、分離以及純化工作,但這又是最關(guān)鍵性的操作步驟,因?yàn)檫@些步驟可以從根本上反應(yīng)出實(shí)際的損耗,要將所有干擾源消除非常困難,只能盡量減少。所以在分析過(guò)程中,一定要認(rèn)真將此前期工作認(rèn)真準(zhǔn)備。
TLC/HPTLC仍然是分離神經(jīng)節(jié)苷脂的重要方法。在所有方法當(dāng)中,免疫染色法是鑒別神經(jīng)節(jié)苷脂的最有效技術(shù),而分光光度法可以實(shí)現(xiàn)定量。但后者由于具有專(zhuān)一性,因此具有更高的靈敏度和容量來(lái)得到結(jié)構(gòu)信息,在實(shí)驗(yàn)操作中也應(yīng)用的更加廣泛。
神經(jīng)節(jié)苷脂測(cè)定的未來(lái)趨勢(shì)是利用質(zhì)譜分析來(lái)闡釋所有結(jié)構(gòu)的神經(jīng)節(jié)苷脂、糖鏈、脂肪酸以及鞘氨基醇,并且調(diào)節(jié)他們的生物活性。本文對(duì)多種分析方法做了分析與比較,為神經(jīng)節(jié)苷脂的開(kāi)發(fā)利用提供了理論和一定的實(shí)驗(yàn)依據(jù),這就是分析所有鑒別方法的意義所在。
[1]Klenk E,Hoppe-Seyler’s Z.Neuraminsaure.das Spaltprodukt eines neuen Gehirnlipoids[J].Physiol.Chem,1941,268:50-58.
[2]Varky A,in:R.Cummolings,J.Esko,H.Freeze,G.Hart,J.Marth(Eds.).Essentials of glycobiology[M].CSHL Press,New York,1999,25-40.
[3]Reglero A,Bravo I G,F(xiàn)ernandez-Martínez V.Sialic acids:ocurrence,metabolism and biological functions[J].An.R.Acad.Nac.Farm.2007,73:833-871.
[4]Abad J A,Robotti A,Neurochem J.Regulation of axonal developmentbyplasma membranegangliosides[J].Neurochem.2007,103:47-55.
[5]寧娜,陳乃宏.神經(jīng)節(jié)苷脂的生物學(xué)活性[J].生理科學(xué)進(jìn)展,2009,40(1):24-30.
[6]王海龍,孫潤(rùn)廣,張靜,等.神經(jīng)節(jié)苷脂的紅外、紫外光譜分析及其多聚體結(jié)構(gòu)的原子力顯微鏡觀測(cè)[J].光譜學(xué)與光譜分析,2009,29(4):1045-1049.
[7]Varki N M,Varki A.A second uniquely human mutation affecting sialic acid biology[J].Lab.Invest.,2007,87:851-857.
[8]Pérez-AguilarR,Genta S,SánchezS.Renal gangliosides are involved in lead intoxication[J].J.Appl.Toxicol.,2008,28:122-131.
[9]SusilFrancis Fernando,Brad William Woonton.Quantitation of N-acetylneuraminic(sialic)acid in bovine glycomacropeptide[J].Food Composition and Analysis.,2010,4(23):359-366.
[10]Ortner K,Buchberger W,Electrophoresis.Determination of sialic acids released from glycoproteins using capillary zone electrophoresis/electrospray ionization mass spectrometry[J].Electrophoresi.,2008,29:2233-2237.
[11]Galuska S P,Geyer R,Muhlenhoff M,Geyer H.Characterization of oligo-and polysialic acid by MALDI-TOFMS[J].Anal.Chem.,2007(79):7161-7169.
[12]王華,徐媛,梁鋒,等.高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法分離鑒定單唾液酸四己糖神經(jīng)節(jié)苷脂中的雜質(zhì)[J].色譜,2009,27(1):29-33.
[13]尕瑞,鄭永彪.高效液相色譜法分離測(cè)定神經(jīng)節(jié)苷脂GM1中唾液酸的含量[J].青海醫(yī)藥雜志,2009,39(3):49-50.
[14]Hara S,Takemori Y,Yamaguchi M,et al.Fluorometric high-performance liquid chromatography of N-acetyl-and N-glycolylneuraminic acids and its application to their microdetermination in human and animal sera,glycoproteins and glycolipids[J].Anal.Biochem,1987,164:138-145.
[15]Hashii N,Kawasaki N,Nakajima N,et al.Study on the quality control of cell therapy products[J].J.Chromatogr.A 2007,1160:263-269.
[16]Sánchez-Juanes F,Alonso J M,Zancada L,P.Hueso.Glycosphingolipids from bovine milk and milk Fat globule membranes:a comparative study.Adhesion to enterotoxigenic escherichia coli strains[J].Biol.Chem.,2009(390):31-40.
[17]Ferreira L,Villar E,Munoz-Barroso I.Conformational changes of newcastle disease disease virus envelope glycoproteins triggered by gangliosides[J].Int.J.Biochem.Cell Biol.,2004,36:2344-2356.
[18]Gabius H J.Glycans:bioactive signals decoded by lectins[J].Biochem.Soc.Trans.,2008,36:1491-1496.
[19]Distler U,Hülsewig M,Souady J,K,J.Haier,N.Senninger,A.W.Friedrich,H.Karch,F(xiàn).Hillenkamp,S.Berkenkamp.Gangliosides are potential targets for adjuvant therapy in panceratic cancer[J].Cancer Ther.,2008,80:1835-1846.
[20]馬莉莎,劉仲華,隋彩珍.單唾液酸四己糖神經(jīng)節(jié)苷脂治療急性腦梗死64例療效觀察[J].山東醫(yī)藥,2009,(5):44.
[21]劉長(zhǎng)鎖,陳乃宏.中國(guó)資源生物技術(shù)與糖工程學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集[C].山東:山東省科學(xué)技術(shù)協(xié)會(huì),2005.
[22]Matsuno K,Suzuki S.Simple fluorimetric method for quantification of sialic acids in glycoproteins[J].Anal.Biochem.,2008,375:53-59.