李公超 任秀智 王延宙 魯艷芹 徐 超 韓金祥
1.山東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院山東省醫(yī)藥生物技術(shù)研究中心,山東省現(xiàn)代醫(yī)用藥物與技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東 濟(jì)南 250062;2。天津醫(yī)院,天津 300211;3 山東省省立醫(yī)院,山東 濟(jì)南 250033
雙磷酸鹽是抑制破骨細(xì)胞活性的強(qiáng)有力的骨吸收抑制劑,在臨床上被廣泛應(yīng)用于骨質(zhì)疏松,骨肉瘤等病理性骨量丟失疾病。最近幾年雙磷酸鹽類藥物開始應(yīng)用于成骨不全的臨床治療中。成骨不全(Osteogenesis Imperfecta)是一種由于間充質(zhì)組織發(fā)育不全,膠原形成障礙而造成的先天性遺傳性疾病,其發(fā)病率大約是1/ 10000[1]。其主要臨床表現(xiàn)是青少年骨質(zhì)疏松,骨脆性增加,易于骨折。目前針對(duì)成骨不全癥手術(shù)治療后的藥物輔助治療主要是采用雙磷酸鹽類藥物。目前對(duì)雙磷酸鹽類藥物作用機(jī)理的研究大多針對(duì)正常的成骨細(xì)胞或者成骨細(xì)胞系,本實(shí)驗(yàn)采用體外原代培養(yǎng)的成骨不全患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞,取髖關(guān)節(jié)脫位患者原代培養(yǎng)成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞為對(duì)照,研究第二代雙磷酸鹽帕米磷酸鈉對(duì)成骨不全患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞增殖分化功能的影響,探討其在成骨不全癥治療中與臨床治療骨質(zhì)疏松及骨肉瘤等疾病的異同性,為進(jìn)一步探討帕米磷酸鈉在成骨不全癥的藥物治療中的作用機(jī)制提供基礎(chǔ)。
1.1 試劑與儀器 帕米磷酸鈉標(biāo)準(zhǔn)品;膠原酶I(sigma);青鏈霉素、胰蛋白酶、培養(yǎng)液DMEM(Gibco公司);胎牛血清;地塞米松;Trizol(invitrogen)堿性磷酸酶染色試劑盒(碧云天);ALP活性檢測(cè)ELISA試劑盒;MTT(QIAGEN公司);倒置顯微鏡;酶免疫檢測(cè)儀;CO2培養(yǎng)箱;
1.2 實(shí)驗(yàn)方法 1.2.1 細(xì)胞分離與培養(yǎng) 經(jīng)山東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)以及受試者知情同意,術(shù)中取成骨不全患者和髖關(guān)節(jié)脫位患者股骨松質(zhì)骨和大腿皮膚組織,分別至于含20ml無血清DMEM培養(yǎng)液(含10%青鏈霉素)。無菌條件下,取組織置于直徑6cm一次性培養(yǎng)皿中,PBS清洗兩遍除凈血液,清除骨膜、血管及骨縫等結(jié)締組織,剪碎骨組織至1mm×1mm大小, PBS液充分沖洗。膠原酶I 37℃消化5h, 離心去上清, 沉淀的細(xì)胞中加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液, 吹打成細(xì)胞懸液,置于25cm2 培養(yǎng)瓶中在5%CO2、37℃飽和濕度條件下培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。采用第三代成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞。
1.2.2 成骨細(xì)胞鑒定 取原代培養(yǎng)的第三代成骨不全患者和髖關(guān)節(jié)患者成骨細(xì)胞,細(xì)胞長(zhǎng)滿約85%時(shí)傾去培養(yǎng)液,PBS清洗兩遍,95%乙醇固定10min,堿性磷酸酶染色試劑盒染色液37℃避光孵育15min,傾去染色液PBS清洗兩遍,倒置顯微鏡下觀察并拍照。
1.2.3 藥物配制及分組 帕米磷酸鈉粉末用PBS溶解,0.1N NaOH調(diào)整PH值至7.4,過濾除菌,儲(chǔ)備液濃度為10-2M。取儲(chǔ)備液逐級(jí)稀釋至實(shí)驗(yàn)所需藥物濃度10-3M-10-10M。設(shè)地塞米松濃度為10-9M為陽性對(duì)照。
取三例原代培養(yǎng)的成骨不全患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞為實(shí)驗(yàn)組,以三例原代培養(yǎng)的髖關(guān)節(jié)脫位患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞為正常對(duì)照組。
1.2.4 細(xì)胞增殖測(cè)定(MTT法) 取傳代至3代得實(shí)驗(yàn)組和正常對(duì)照組成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞以2x103/孔的密度鋪板于96孔板中。每孔加含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液200ul,細(xì)胞過夜貼壁后更換含藥培養(yǎng)基,陽性對(duì)照組換地塞米松培養(yǎng)基,對(duì)照組換普通培養(yǎng)基,每個(gè)濃度4個(gè)復(fù)孔,于加藥后48h和72h進(jìn)行MTT檢測(cè),每孔加入20μ lMTT(5mg/ml),37℃孵育15min和30min后在酶免疫檢測(cè)儀上測(cè)定各孔光吸收值(OD值),波長(zhǎng)490nm,取其均值,計(jì)算細(xì)胞增殖率。以藥物濃度為橫軸,細(xì)胞增殖率為縱坐標(biāo)繪制折線圖。
1.2.5 堿性磷酸酶活性測(cè)定 實(shí)驗(yàn)組和正常對(duì)照組成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞以1x104/孔的密度鋪板于24孔板中,每組每例樣本兩種細(xì)胞各鋪一板。細(xì)胞過夜貼壁后更換相應(yīng)藥物培養(yǎng)基,每個(gè)濃度2個(gè)復(fù)孔,加藥后72h收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液凍存與-20℃,貼壁細(xì)胞用PBS清洗2遍,加80ul Trizol充分裂解細(xì)胞收集裂解液。實(shí)驗(yàn)組和正常對(duì)照組成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞每個(gè)復(fù)孔各取20ul細(xì)胞裂解液用于ELISA檢測(cè),酶免疫檢測(cè)儀上測(cè)定各孔光吸收值(OD值),波長(zhǎng)450nm,取其均值,通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算ALP活性值,以藥物濃度為橫坐標(biāo)軸,ALP活性值為縱坐標(biāo)繪制ALP活性變化折線圖。
1.2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 各組數(shù)據(jù)應(yīng)用SPSS12.0軟件處理,應(yīng)用方差分析以及Spearman等級(jí)相關(guān)分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 細(xì)胞形態(tài)及鑒定 成纖維細(xì)胞剛貼壁時(shí)呈長(zhǎng)梭形或多邊形(圖1),細(xì)胞貼壁后7-10天長(zhǎng)滿(圖2),10-14天細(xì)胞成簇狀集落生長(zhǎng)(圖3)。成骨細(xì)胞貼壁后呈短梭形、三角形或多邊形。堿性磷酸酶染色后大部分細(xì)胞被染成暗紅色(圖4),成纖維細(xì)胞堿性磷酸酶染色后,只有很少量細(xì)胞被染成淡紅色(圖5)。
2.2 細(xì)胞增殖檢測(cè) 藥物作用48h后,細(xì)胞增殖差異多數(shù)不顯著(P>0.05),72h時(shí)各濃度間差異顯著(表1),顯著性P<0.01。
當(dāng)藥物濃度為10-3M,10-4M時(shí),均抑制實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組兩種細(xì)胞的增殖。成骨不全成纖維細(xì)胞最佳增殖濃度為10-6M,成骨細(xì)胞最佳增殖濃度為10-8M。對(duì)照組成纖維和成骨細(xì)胞最佳增殖濃度分別為10-5M和10-7M。72h時(shí)各細(xì)胞增殖率對(duì)應(yīng)藥物濃度變化曲線見表2,表3。
表1 不同濃度藥物處理對(duì)細(xì)胞增殖率的影響(±s,n=3)
表1 不同濃度藥物處理對(duì)細(xì)胞增殖率的影響(±s,n=3)
濃度 10-3M 10-4M 10-5M 10-6M 10-7M 10-8M 10-9M 10-10M 地塞米松實(shí)驗(yàn)組FB (-14.4±1.3)% (-9.7±1.2)% (25.7±0.4)% (37.7±1.2)% (18.9±1.9)% (16.0±0.9)% (10.8±1.5)% (0.2±0.03)% (11.4±0.9)%實(shí)驗(yàn)組OB (-20.4±0.4)% (-12.1±1.4)% (12.9±0.9)% (20.8±0.3)% (34.5±0.7)% (42.8±0.4)% (14.6±0.6)% (13.9±0.5)% (13.8±0.3)%對(duì)照組FB (-11.5±0.2)% (-8.4±0.6)% (27.1±0.7)% (18.2±0.7)% (13.8±0.5)% (7.7±0.4)% (4.3±0.1)% (0.17±0.01)% (5.6±0.3)%對(duì)照組OB (-13.1±0.4)% (-4.7±0.4)% (13.7±0.7)% (22.5±0.4)% (36.7±0.4)% (32.4±0.5)% (16.4±0.3)% (15.7±0.7)% (11.8±0.5)%
表2 藥物作用72h實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組成纖維細(xì)胞不同濃度下增殖率比較
表3 藥物作用72h實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組成骨細(xì)胞不同濃度下增殖率比較
表4 不同濃度藥物處理72h對(duì)細(xì)胞ALP活性的影響(ALP濃度U/L ±s,n=3)
表4 不同濃度藥物處理72h對(duì)細(xì)胞ALP活性的影響(ALP濃度U/L ±s,n=3)
濃度 10-3M 10-4M 10-5M 10-6M 10-7M 10-8M 10-9M 10-10M 地塞米松 對(duì)照實(shí)驗(yàn)組FB 9.2±0.1 12.8±0.2 26.0±0.1 35.6±0.2 24.9±0.4 23.9±0.2 20.3±0.2 18.2±0.2 31.1±0.4 17.4±0.3實(shí)驗(yàn)組OB 24.2±0.4 30.2±0.6 65.3±0.8 72.4±0.5 95.0±0.8 101.9±0.6 66.8±0.9 60.7±0.5 84.6±0.3 38.6±0.4對(duì)照組FB 11.9±0.2 15.6±0.3 34.6±0.3 28.8±0.6 25.1±0.7 22.9±0.2 18.8±0.2 16.1±0.2 31.3±0.1 17.8±0.2對(duì)照組OB 31.4±0.4 39.9±0.3 56.9±0.7 60.5±0.5 100.5±0.7 88.6±0.5 58.3±0.2 56.8±0.3 77.6±0.7 50.1±0.1
表5 藥物作用72h實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組成纖維細(xì)胞不同濃度下ALP活性比較
表6 藥物作用72h實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組成骨細(xì)胞不同濃度下ALP活性比較
2.3 細(xì)胞ALP活性檢測(cè) 兩組樣本兩種細(xì)胞經(jīng)藥物處理后,在一定濃度范圍內(nèi)細(xì)胞ALP活性均增強(qiáng)(表4)。
其中實(shí)驗(yàn)組成骨細(xì)胞、成纖維細(xì)胞ALP活性最高值對(duì)應(yīng)藥物濃度分別為10-8M和10-6M,而對(duì)照組兩種細(xì)胞ALP活性最高值對(duì)應(yīng)藥物濃度分別為10-7M和10-5M。以上兩組樣本兩種細(xì)胞ALP活性變化趨勢(shì)與細(xì)胞增殖趨勢(shì)相對(duì)應(yīng),且各濃度間在藥物作用72h時(shí)差異顯著,顯著性P<0.01。各組細(xì)胞ALP活性比較見表5、表6。
雙磷酸鹽類藥物可降低骨轉(zhuǎn)換,抑制骨吸收,臨床上常被用于治療一些骨吸收亢進(jìn)疾病,如絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松癥、Puget’s病等。以往對(duì)雙磷酸鹽的研究主要對(duì)破骨細(xì)胞的影響其對(duì)破骨細(xì)胞的影響機(jī)制主要是通過抑制破骨細(xì)胞內(nèi)甲羥戊酸通路的關(guān)鍵酶使胞內(nèi)的小G蛋白無法異戊二烯化,從而影響破骨細(xì)胞的生長(zhǎng)和分化,促其凋亡[2]。近幾年的研究發(fā)現(xiàn)雙磷酸鹽可通過成骨細(xì)胞間接抑制破骨細(xì)胞[3,4]。Igarashi[5]等發(fā)現(xiàn)3種不同的二磷酸鹽在成骨樣細(xì)胞株MC3T3-E1中抑制內(nèi)生性前列腺素E2的產(chǎn)生,增強(qiáng)ALP的表達(dá)和礦化作用。Giuliani等[6]發(fā)現(xiàn)在鼠和人骨髓體外培養(yǎng)中, 二磷酸鹽刺激成骨細(xì)胞前體細(xì)胞和礦化小瘤的形成。目前,針對(duì)雙磷酸鹽對(duì)成纖維細(xì)胞的作用機(jī)制探討主要集中對(duì)雙磷酸鹽引起的頜骨壞死疾?。˙RONJ)的探討中,研究者發(fā)現(xiàn)采用不同劑量的唑來膦酸處理成纖維細(xì)胞,其中高于10 μM濃度的唑來磷酸鹽即可引起成纖維細(xì)胞的程序性死亡,這種死亡機(jī)制部分是由胞內(nèi)的甲羥戊酸途徑介導(dǎo)的,而較低劑量的唑來磷酸鹽則促進(jìn)細(xì)胞增殖及IL-6,IL-8等細(xì)胞因子的表達(dá)[7]。Giuliani等[8]等發(fā)現(xiàn)雙磷酸鹽類藥物促進(jìn)集落生長(zhǎng)的間充質(zhì)干細(xì)胞表達(dá)成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子。同時(shí)有研究發(fā)現(xiàn),采用三種含氮的雙磷酸鹽(伊班磷酸鹽、帕米磷酸鹽、唑來磷酸鹽)處理人成骨細(xì)胞、成纖維細(xì)胞和臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞,低劑量的藥物可促進(jìn)細(xì)胞活力和遷移能力[9]。成骨不全癥是由膠原合成相關(guān)基因突變導(dǎo)致的骨脆性增加,骨量丟失的遺傳性疾病,病人臨床體征呈現(xiàn)骨質(zhì)疏松、肌無力、皮膚松弛等相關(guān)癥狀。從臨床對(duì)成骨不全術(shù)后應(yīng)用雙磷酸鹽藥物治療x光片顯示,患者干骺端骨骨密度增高,說明該藥物有利于患者骨質(zhì)增強(qiáng),同時(shí),由于患者膠原蛋白的缺失引起的皮膚松弛,疤痕體質(zhì)明顯等癥狀在適當(dāng)計(jì)量的雙磷酸鹽作用下也會(huì)有一定改善。
目前 ,對(duì)于雙磷酸鹽在體內(nèi)的濃度變化很難做到有效的動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)。有報(bào)道患者靜注帕米磷酸鈉后血液中的濃度可一過性達(dá)到10-5M[10],而在局部的骨吸收區(qū)域濃度更可高達(dá)10-3M[11]。本實(shí)驗(yàn)選用不同濃度梯度(10-3M~10-10M)的帕米磷酸鈉作用于成骨不全癥患者原代培養(yǎng)的成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞,并以髖關(guān)節(jié)脫位患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞為對(duì)照,研究結(jié)果顯示,帕米磷酸鈉對(duì)細(xì)胞的毒性作用在濃度≥10-4M時(shí)出現(xiàn),實(shí)驗(yàn)組兩種細(xì)胞最佳增殖濃度均比對(duì)照組兩種細(xì)胞低十倍,而且實(shí)驗(yàn)組兩種細(xì)胞增殖率均大于對(duì)照組,即實(shí)驗(yàn)組明顯的表現(xiàn)出對(duì)藥物劑量的敏感性高于對(duì)照組細(xì)胞。
ALP是骨形成所必需的酶,是識(shí)別和評(píng)價(jià)成骨細(xì)胞分化程度的早期指標(biāo),其活性反映成骨細(xì)胞的活性。ALP可催化分解有機(jī)磷酸釋放無機(jī)磷,增加局部無機(jī)磷酸的濃度是啟動(dòng)礦化的必備條件。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在促進(jìn)細(xì)胞增殖的藥物濃度范圍內(nèi),細(xì)胞ALP活性也有相應(yīng)的提高,且ALP活性最高值也對(duì)應(yīng)出現(xiàn)在細(xì)胞最佳增殖濃度。這說明一定劑量的帕米磷酸鈉可以促進(jìn)患者細(xì)胞堿性磷酸酶的表達(dá),有利于患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞的分化。
綜上所述,一定劑量濃度的帕米磷酸鈉可以促進(jìn)患者成骨細(xì)胞和成纖維細(xì)胞的增殖并增強(qiáng)細(xì)胞ALP活性。但是,雙磷酸鹽類藥物針對(duì)成骨細(xì)胞的活性調(diào)節(jié)機(jī)制尚不明確,而且體外細(xì)胞試驗(yàn)結(jié)果只能給臨床該藥物的給藥劑量及給藥途徑提供一定的理論支持。真正意義上的兩者結(jié)合還需要進(jìn)一步的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)來解決。
1.R.Gueguen, P.jonny, F.Guillemin,C.KuntZ,J.Pourel, G.Siest,Segregation analysis and variance components analysis of bone mineral density inhealthy families [J]. BoneMiner. Res.10(1995). 2017-2022.
2.Rogers MJ,Benford HL, Coxon JP, et al. Cellular and molecu-larmechanisms of action of bisphosphonates. Cancer, 2000, 88(12Supp l) : 2961-2978.
3.Vitte C,Fleish H, Guenther HL.Bisphosphonates induce osteoblasts to secrete an inhibitor of osteoclastmediated resorption[J]. Endocrinology,1996,137:2324-2333.
4.Nishikawa M, Akatsu T, Katayama Y, et al. Bisphosphonates act on osteoblastic cells and inhibit osteoclast formation in mouse marrow cultures[J] .Bone,1996 ,18 :9-14.
5.Igarashi K,Hirafuji M,Adachi H,et al.Effects of bisphosphonates on alkaline phosphatase activity, mineralization, prostaglandin E2 synthesis in the clonal osteoblast-like cell line MC3T3-E1[J]. Prostaglandins Leukot Essent FattyAcids,1997,56:121-125.
6.Giuliani N, Pedrazzoni M, Negri G, et al. Biphosphonates stimulate formation of osteoblast precursors and mineralized nodules in murine and human bone marrowcultures in vitro and promote early osteoblastogenesis in young and aged mice in vivo[J]. Bone, 1998, 22(5):455- 461.
7.Kim RH,Lee RS,Williams D,et al. Bisphosphonates Induce Senescence in Normal Human Oral Keratinocytes[J]. Dent Res. 2011 Mar;90(5):194-19.
8.Giuliani N,Pedrazzoni M,Passeri G,et al. Bisphosphonates stimulate the production of basic fibroblast growth factor and the formation of bone marrow precursors of osteoblasts[J]. New findings about their mechanism of action. Minerva Med. 1998 Jul-Aug; 89(7-8):249-58.
9.Walter C,Pabst A,Ziebart T,et al. Bisphosphonates affect migration ability and cell viability of HUVEC, fibroblasts and osteoblasts in vitro[J]. Oral Dis. 2011 Mar;17(2):194-9.
10.Berenson J R, Rosen L,Vescio R,et al.Pharmacokinetics of pamidronate disodium in patients with cancer with normal or impaired renal function[J]. J Clin Pharmacol ,1997,37: 285-290.
11.Sato M, Grosser W, Endo N, et al. Bis phosphonate action.Alendronate localization in rat bone and effects on osteoclast ul 2t rast ructure[J]. J Clin Invest, 1991,88 :2095-2105.