鄭麗,李銀燕,劉軍,潘艷艷,李瑩,延娟,曹雅明*
(1.中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,遼寧沈陽110001;2.中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院超聲科,遼寧沈陽110001)
瘧疾是瘧原蟲經(jīng)媒介按蚊傳播的嚴(yán)重威脅人類健康的寄生原蟲感染性疾病。瘧原蟲裂殖子快速識(shí)別并入侵適宜其發(fā)育的宿主紅細(xì)胞的侵襲過程是一個(gè)復(fù)雜的多蛋白參與并有序協(xié)調(diào)合作的過程[1]。裂殖子借助其表面蛋白家族(MSPs)成員,頂端復(fù)合體表面抗原-1(AMA-1)以及棒狀體內(nèi)含有的多種蛋白(RhopH complex)完成瘧原蟲黏附、侵入紅細(xì)胞這一復(fù)雜過程[2-4]。由于紅內(nèi)期各蛋白在侵襲過程中暴露于宿主免疫系統(tǒng),所以它們是發(fā)病阻斷疫苗理想的候選抗原,也因此成為近年來國內(nèi)外學(xué)者研究的熱點(diǎn)課題。一氧化氮(nitric oxide,NO)作為非特異性免疫效應(yīng)分子,在抗多種病原生物感染的過程中發(fā)揮著重要的防御作用[5]。前期的研究結(jié)果顯示NO是控制和消除紅內(nèi)期蟲體血癥的重要免疫效應(yīng)分子[6-7]。NO通過細(xì)胞毒效應(yīng)可明顯抑制感染人類和嚙齒類的紅內(nèi)期原蟲的生長及發(fā)育[8-9]。同時(shí),NO還可通過抑制感染惡性瘧原蟲的紅細(xì)胞對(duì)微血管內(nèi)皮細(xì)胞的黏附保護(hù)易感宿主[10]。由此推測(cè),NO可能通過某種機(jī)制改變瘧原蟲與宿主紅細(xì)胞間的相互作用有關(guān),從而減弱瘧原蟲裂殖子的致病力,然而NO這種影響侵襲力的分子機(jī)制目前尚不清楚。本研究通過NO長效和短效發(fā)生劑體內(nèi)對(duì)致死型約氏瘧原蟲進(jìn)行處理,探討NO對(duì)介導(dǎo)裂殖子黏附、侵入紅細(xì)胞的關(guān)鍵分子MSP-1、AMA-1和RhopH complex轉(zhuǎn)錄水平的影響,以期明確宿主與寄生蟲相互作用的本質(zhì)特征和宿主抗瘧原蟲保護(hù)性免疫的相關(guān)機(jī)制。
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物6~8周齡雌性BALB/c小鼠(中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物研究所提供,許可證編號(hào):SCXK6京2004-0001)。
1.1.2 主要試劑NOC5(347-06881,和光純藥工業(yè)株式會(huì)社,半衰期25 min);NOC18(344-06911,和光純藥工業(yè)株式會(huì)社,半衰期18 h);TRIzol?Reagent:invitrogen產(chǎn)品;SYBR?Prime-ScriptTMRT-PCR Kit試劑盒(TaKaRa,日本)。
1.1.3 主要儀器PCR儀(pTC-200,peltierThermalCyeler);ABI PRISM 7900 HT(USA)。
1.2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物感染與NO發(fā)生劑體內(nèi)處理30只雌性,6~8周齡BALB/c小鼠,每只經(jīng)腹腔感染1×106P.y17XL寄生的紅細(xì)胞(日本愛媛大學(xué)分子寄生蟲學(xué)教研室惠贈(zèng)),小鼠隨機(jī)分為3組,第1組單純感染對(duì)照組(10只);第2組NOC18 25 mmol/L處理組(10只);第3組NOC5 25 mmol/L處理組(10只)。感染后第2天,第2組小鼠尾靜脈注射25 mmol/L NOC18,每只小鼠100 μL,每隔20 h注射1次,連續(xù)注射3次。感染后第6天第3組小鼠腹腔注射25 mmol/L NOC5,每只小鼠100 μL,30 min后處死小鼠。感染不同時(shí)間的小鼠經(jīng)尾靜脈采血,制備薄血膜,Giemsa染色,鏡檢計(jì)數(shù)紅細(xì)胞感染率。
1.2.2 成熟裂殖體純化心臟取血采集P.y17XL感染的BALB/c小鼠感染血液(感染率達(dá)60%~80%),與等倍PBS混合后通過滅菌纖維素CF11除去白細(xì)胞,以50%Percoll(體積比)分離、收集。細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)裂殖體數(shù)量。取1×108個(gè)裂殖體儲(chǔ)存于1 mL Trizol中,-20℃保存,供總RNA提取。
1.2.3 Real-time PCR檢測(cè)NO發(fā)生劑體內(nèi)處理MSP-1、AMA-1和RhopH complex轉(zhuǎn)錄水平①PCR引物:利用引物設(shè)計(jì)軟件Primer5設(shè)計(jì)約氏瘧原蟲β-actin、MSP-1、AMA-1和RhopH complex特異性引物(表1);②實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè):采用TRIZOL一步法提取瘧原蟲總RNA,并經(jīng)紫外分光光度儀檢測(cè)純度,RNA A260/A280比值在1.8~2.0之間;按照TaKaRa SYBR?PrimeScriptTMRT-PCR Kit試劑盒步驟以總RNA為模板進(jìn)行cDNA合成,反應(yīng)體積20 μL(5×PrimeScriptTMBuffer 4 μL,PrimeScriptTMRT Enzyme Mix I 1 μL,Oligo dT Primer(50 μmol/L)1 μL,Random 6 mers(100 μmol/L)1 μL,RNase Inhibitor 0.5 μL,Total RNA 1 μg,反應(yīng)體積用RNA free H2O補(bǔ)至20 μL);反應(yīng)條件:37℃15 min,85℃5 s,Real time PCR擴(kuò)增反應(yīng)采用SYBR Green I嵌合熒光法反應(yīng),反應(yīng)體積20 μL(SYBRPremixExTapTM(2×)10 μL,ROX Reference Dye(50×)0.4 μL,F(xiàn)orward Primer(10 μmol/L)0.8 μL,Reverse Primer(10 μmol/L)0.8 μL,模板(cDNA溶液)0.2 μL,ddH2O 7.8 μL);反應(yīng)條件:95℃30 s預(yù)變性,95℃5 s,60℃30 s反應(yīng)40個(gè)循環(huán)。并檢測(cè)融解曲線;③實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析:反應(yīng)結(jié)束確認(rèn)Real Time PCR的擴(kuò)增曲線和融解曲線,以β-actin值為內(nèi)參,通過2-△△CT計(jì)算表達(dá)倍數(shù)。
表1 用于實(shí)時(shí)定量PCR擴(kuò)增的引物序列Table 1 The primer sequences for real-time PCR
1.2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理應(yīng)用SPSS 11.5統(tǒng)計(jì)學(xué)分析軟件,單因素方差分析比較各組均值的顯著性差異,P<0.05為差異顯著。
圖1 NOC18和NOC5處理后瘧原蟲AMA-1轉(zhuǎn)錄水平的變化Fig.1 The transcription levels of AMA-1 after NOC18 or NOC5 treatment
如圖1所示,P.y 7XL感染BALB/c小鼠過程中,瘧原蟲頂端膜分子抗原AMA-1轉(zhuǎn)錄水平存在差異。與NO未處理組相比長效NO發(fā)生劑NOC18處理后未見AMA-1轉(zhuǎn)錄水平受到影響,而短效NO發(fā)生劑NOC5處理后可見AMA-1分子的轉(zhuǎn)錄水平下調(diào),并具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
通過NO發(fā)生劑體內(nèi)處理P.y17XL感染小鼠可見MSP1轉(zhuǎn)錄水平受到一定程度的影響。如圖2所示,與NO未處理組相比長效NO發(fā)生劑NOC18處理后可見MSP-1轉(zhuǎn)錄水平上調(diào),而短效NO發(fā)生劑NOC5處理后可見MSP-1分子的轉(zhuǎn)錄水平下調(diào),兩者均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
圖2 NOC18和NOC5處理后瘧原蟲MSP-1轉(zhuǎn)錄水平的變化Fig.2 The transcription levels of MSP-1 after NOC18 or NOC5 treatment
圖3 NOC18和NOC5處理后瘧原蟲RhopH complex轉(zhuǎn)錄水平的變化Fig.3 The transcription levels of RhopH complex after NOC18 or NOC5 treatment
通過長效或短效NO發(fā)生劑體內(nèi)處理P.y17XL感染小鼠可見RhopH complex轉(zhuǎn)錄水平受到一定程度的影響。如圖3所示,與NO未處理組相比長效NO發(fā)生劑NOC18處理后未見RhopH complex轉(zhuǎn)錄水平受影響,而短效NO發(fā)生劑NOC5處理后可見RhopH complex分子的轉(zhuǎn)錄水平下調(diào),并具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
在瘧原蟲的各生活周期中,裂殖子期原蟲破裂宿主紅細(xì)胞和重新入侵的周期性過程是宿主寒戰(zhàn)、發(fā)熱和貧血等一系列瘧原蟲感染后病理癥狀產(chǎn)生的基礎(chǔ)[11]。紅內(nèi)期循環(huán)啟動(dòng)的關(guān)鍵點(diǎn)是裂殖子快速識(shí)別并入侵適宜其發(fā)育的宿主紅細(xì)胞。與大多數(shù)具有頂端復(fù)合體結(jié)構(gòu)的原蟲(如弓形蟲)相似,形成于紅內(nèi)期晚期的頂端結(jié)構(gòu)可通過釋放其內(nèi)部特異性分泌器官—棒狀體、微線體和致密顆粒幫助裂殖子侵襲宿主紅細(xì)胞。其中,棒狀體和微線體在裂殖子侵襲過程中分泌大量侵襲相關(guān)蛋白。這些蛋白或釋放于裂殖子表面,或進(jìn)入宿主紅細(xì)胞內(nèi)部,在這些部位,它們幫助裂殖子在極短的時(shí)間內(nèi)(<60 s)完成對(duì)宿主細(xì)胞的識(shí)別,配-受體連接,入侵激活以及侵入后納蟲泡的形成。由于頂端復(fù)合體內(nèi)的各蛋白在侵襲過程中暴露于宿主免疫系統(tǒng),所以它們是發(fā)病阻斷疫苗理想的候選抗原。也因此成為近年來國內(nèi)外學(xué)者研究的熱點(diǎn)課題[12-13]。
MSP-1、AMA-1和RhopH complex是瘧原蟲紅內(nèi)期表達(dá)的關(guān)鍵蛋白,在瘧原蟲侵入過程中發(fā)揮重要作用。通過MSP-1、AMA-1和RhopH complex為抗原誘導(dǎo)的抗體對(duì)瘧原蟲入侵紅細(xì)胞均具有一定抑制作用[14-17]。前期的研究結(jié)果顯示,應(yīng)用NO發(fā)生劑(NOC5或NOC18)體外處理瘧原蟲成熟裂殖體后,裂殖子對(duì)紅細(xì)胞的侵襲能力顯著減弱或喪失。而且,NO對(duì)裂殖子的抑制效應(yīng)呈明顯的時(shí)間和劑量依賴性[18]。盡管NO作為非特異性免疫效應(yīng)分子,在抗腫瘤發(fā)生、誘導(dǎo)瘤細(xì)胞凋亡和抗菌、抗病毒及胞內(nèi)寄生性原蟲等多種病原生物感染過程中,發(fā)揮著重要的免疫介導(dǎo)和防御作用,但是血紅蛋白對(duì)NO的耗竭具有極強(qiáng)的作用,而頂端復(fù)合體內(nèi)的各蛋白在侵襲過程中暴露于宿主免疫系統(tǒng)下,因此本研究通過實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)了侵襲過程中重要的瘧原蟲侵襲相關(guān)分子MSP-1、AMA-1以及RhopH complex水平。從轉(zhuǎn)錄水平看,短效NO發(fā)生劑NOC5體內(nèi)處理P.y17XL感染的BALB/c小鼠,對(duì)瘧原蟲MSP-1、AMA-1以及RhopH complex分子具有明顯抑制作用,而長效NO發(fā)生劑NOC18則未見這一現(xiàn)象。這一結(jié)果推測(cè)在DBA/2和BALB/c小鼠感染P.y17XL的鼠瘧自然模型里DBA/2在感染早期存在NO短時(shí)間的高水平釋放,因而對(duì)瘧原血癥有一定控制作用。因此本研究結(jié)果提示,宿主體內(nèi)存在的NO短時(shí)間、高水平的釋放對(duì)宿主控制瘧原血癥具有一定的作用。
綜上所述,NO對(duì)瘧原蟲侵襲相關(guān)分子的轉(zhuǎn)錄水平有一定影響,通過高劑量、短期的NO干預(yù)可影響決定瘧原蟲侵入的關(guān)鍵蛋白MSP-1、AMA-1以及RhopH complex的轉(zhuǎn)錄水平,進(jìn)而可能影響瘧原蟲的侵入過程。
[1] Kaneko O.Erythrocyte invasion:vocabulary and grammar of the Plasmodium rhoptry[J].Parasitol Int,2007,56(4):255-262.
[2] Gilson PR and Crabb BS.Morphology and kinetics of the three distinct phases of red blood cell invasion by Plasmodium falciparum merozoites[J].Int J Parasitol,2009,39(1):91-96.
[3] Kats LM,Black CG,Proellocks NI,et al.Plasmodium rhoptries:how things went pear-shaped[J].Trends Parasitol,2006,22(6):269-276.
[4] Kaneko O,Tsuboi T,Ling IT,et al.The high molecular mass rhoptry protein,RhopH1,is encoded by members of the clag multigene family in Plasmodium falciparum and Plasmodium yoelii[J].Mol Biochem Parasitol,2001,118(2):223-231.
[5] Bogdan C.Nitric oxide and the immune response[J].Nat Immunol,2001,2(10):907-916.
[6] Wu Y,Wang QH,Zheng L,et al.Plasmodium yoelii:distinct CD4(+)CD25(+)regulatory T cell responses during the early stages of infection in susceptible and resistant mice[J].Exp Parasitol,2007,115(3):301-304.
[7] Chen G,F(xiàn)eng H,Liu J,et al.Characterization of immune responses to single or mixed infections with P.yoelii 17XL and P.chabaudi AS in different strains of mice[J].Parasitol Int,2010,59(3):400-406.
[8] Balmer P,Phillips HM,Maestre AE,et al.The effect of nitric oxide on the growth of Plasmodium falciparum,P.chabaudi and P.berghe in vitro[J].Parasite Immunol,2000,22(2):97-106.
[9] Sharma A,Eapen A and Subbarao SK.Parasite killing in Plas-modium vivax malaria by nitric oxide:implication of aspartic protease inhibition[J].J Biochem,2004,136(3):329-334.
[10] Rowe JA,Claessens A,Corrigan RA,et al.Adhesion of Plasmodium falciparum-infected erythrocytes to human cells:molecular mechanisms and therapeutic implications[J].Expert Rev Mol Med,2009,26;11:e16.
[11] Msellem MI,M?rtensson A,Rotllant G et al.Influence of rapid malaria diagnostic tests on treatment and health outcome in fever patients,Zanzibar:a crossover validation study[J].PLoS Med,2009,6(4):e1000070.
[12] Baum J,Gilberger TW,F(xiàn)rischknecht F,et al.Host-cell invasion by malaria parasites:insights from Plasmodium and Toxoplasma[J].Trends Parasitol,2008,24(12):557-563.
[13] Chitnis CE and Blackman MJ.Host cell invasion by malaria parasites[J].Parasitol Today,2000,16(10):411-415.
[14] Hodder AN,Crewther PE,and Anders RF,et al.Specificity of the protective antibody response to apical membrane antigen 1[J].Infect Immun,2001,69(5):3286-3294.
[15] Yoshida S,Nagumo H,Yokomine T.,et al.Plasmodium berghei circumvents immune responses induced by merozoite surface protein 1-and apical membrane antigen 1-based vaccines[J].PLoS One,2010,5(10):e13727.
[16] Kennedy MC,Wang J,Zhang Y,et al.In vitro studies with recombinant Plasmodium falciparum apical membrane antigen 1(AMA1):production and activity of an AMA1 vaccine and generation of a multiallelic response[J].Infect Immun,2002,70(12):6948-6960.
[17] Kocken CH,Withers-Martinez C,Dubbeld MA.,et al.Highlevel expression of the malaria blood-stage vaccine candidate Plasmodium falciparum apical membrane antigen 1 and induction of antibodies that inhibit erythrocyte invasion[J].Infect Immun,2002,70(8):4471-4476.
[18] Wang QH,Liu YJ,Liu J,et al.Plasmodium yoelii:assessment of production and role of nitric oxide during the early stages of infection in susceptible and resistant mice[J].Exp Parasitol,2009,121(3):268-273.