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    優(yōu)勢降酚菌的篩選及其生長條件優(yōu)化研究

    2010-06-04 07:57:06王祖佑,馬慶霞,陳怡
    化學(xué)與生物工程 2010年4期
    關(guān)鍵詞:苯酚氮源菌種

    苯酚及其衍生物是重要的有機化工原料,主要用于生產(chǎn)酚醛樹脂、己內(nèi)酰胺、雙酚A、己二酸、苯胺、烷基酚以及水楊酸等,存在于許多工業(yè)廢水中[1],已被列入優(yōu)先控制的污染物[2]。

    目前,含酚廢水的處理方法很多[3],其中生物法因經(jīng)濟、高效且無二次污染等優(yōu)點而得到越來越廣泛的應(yīng)用[4],利用純菌種和混合菌種降解酚類物質(zhì)一直受到關(guān)注[5],并已發(fā)現(xiàn)和分離了多種降酚菌株。然而這些研究往往集中于菌種降解苯酚的工藝條件,對培養(yǎng)過程中優(yōu)勢菌的生長情況涉及較少。事實上,決定微生物生長和降解活力的環(huán)境因素對保持其高降解活性起著十分重要的作用[6]。

    鑒于苯酚具有酚類化合物的各種理化性質(zhì),且毒性大、含量高、用途廣,故作者在此以苯酚作為含酚廢水中酚類物質(zhì)的典型化合物進行優(yōu)勢降酚菌的篩選,并以所選菌株為研究對象,以O(shè)D600作為菌株生長狀況的考察指標,確定菌株的最佳生長條件,擬為降解菌株大規(guī)模培養(yǎng)與實際應(yīng)用提供理論依據(jù)。

    1 實驗

    1.1 材料

    1.1.1 菌種

    菌種,篩選自某石化廠的活性污泥。

    1.1.2 培養(yǎng)基

    富集培養(yǎng)基:牛肉膏5 g,蛋白胨10 g,氯化鈉5 g,加蒸餾水定容至1 L,pH值7.2~7.6,用于菌種的富集和保存。

    篩選培養(yǎng)基:KH2PO40.5 g,K2HPO40.5 g,MgSO4·7H2O 0.2 g,CaCl20.1 g,NaCl 0.2 g,MnSO4·H2O 微量,F(xiàn)eSO4·7H2O微量,NH4NO31.0 g,根據(jù)需要,加入苯酚若干,加蒸餾水定容至1 L,pH值7.0。

    固體培養(yǎng)基:于富集培養(yǎng)基和篩選培養(yǎng)基中加入質(zhì)量濃度為1.5%的瓊脂,用于菌種的分離與保存。

    1.2 方法

    1.2.1 含酚廢水的配制

    在篩選培養(yǎng)基中加入一定量的苯酚,配制成苯酚濃度為1000 mg·L-1的含酚廢水。

    1.2.2 菌種的選育

    活性污泥經(jīng)馴化、分離及篩選,得到一株苯酚降解菌,命名為JF-6,初步鑒定為Diaphorobacter屬。該菌株具有很強的降酚能力,在接種量為6%(體積分數(shù))、培養(yǎng)24 h的條件下,對500 mg·L-1、800 mg·L-1、1000 mg·L-1、和1200 mg·L-1的苯酚降解率分別是100%、100%、100%和89%,并且在苯酚濃度為1800 mg·L-1的液體培養(yǎng)基中生長良好(OD600為0.763,含1000 mg·L-1苯酚的液體培養(yǎng)基的OD600為0.949,兩者相差不大)。

    1.2.3 菌株生長條件的優(yōu)化

    考察溫度、pH值、外加氮源、NaCl濃度和溶解氧(裝液量)等環(huán)境條件對苯酚降解率的影響,具體方法為:取配制好的含酚廢水50 mL于100 mL三角瓶中,加菌懸液3 mL,以溫度30℃、pH值7.0、外加氮源為蛋白胨、鹽濃度(即NaCl濃度,不包括培養(yǎng)基中的鹽)200 mg·L-1、轉(zhuǎn)速150 r·min-1的恒溫水浴振蕩搖床培養(yǎng)為初始條件,用控制變量法(即每次只變化一個因素,其它因素保持不變)進行單因素實驗,以O(shè)D600為考察指標,確定菌株最適生長條件。

    1.3 苯酚降解率的測定

    采用4-氨基安替吡啉直接吸光光度法[7]測定苯酚降解率。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 溫度對苯酚降解率的影響

    溫度對微生物生長的影響具體表現(xiàn)在[8]:(1)影響酶的活性,溫度變化影響酶促反應(yīng)速率。溫度過高,會降低酶的活力甚至使酶失活;溫度過低,酶的活力也會受到影響。(2)影響細胞質(zhì)膜的流動性。溫度高,流動性大,有利于物質(zhì)的運輸;溫度低,流動性降低,不利于物質(zhì)的運輸,因而溫度變化影響到營養(yǎng)物質(zhì)的吸收和代謝物質(zhì)的分泌。

    不同溫度下,JF-6菌株培養(yǎng)24 h時的生長情況見圖1。

    圖1 溫度對JF-6菌株生長的影響

    由圖1可以看出,50℃時菌株生長量極低,OD600僅為0.1左右;20~40℃范圍內(nèi)菌株生長狀況較好。因此,確定最適溫度為20~40℃。

    2.2 pH值對苯酚降解率的影響

    微生物的生命活動、物質(zhì)代謝與pH值密切相關(guān)。pH值對細菌生長的影響主要通過細胞膜的透性、膜結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性、物質(zhì)的溶解性或電離性來影響營養(yǎng)物質(zhì)的吸收,從而影響細菌的生長速率。

    不同pH值下,JF-6菌株培養(yǎng)24 h時的生長情況見圖2。

    圖2 pH值對JF-6菌株生長的影響

    由圖2可以看出,當pH值為3和10時,OD600較低,菌株生長狀況較差,同時培養(yǎng)基顏色較清,不混濁,說明JF-6菌株基本停止生長;當pH值為4~9時,JF-6菌株生長較好。因此,確定JF-6菌株的適宜pH值為4~9。

    2.3 外加氮源對苯酚降解率的影響

    在難降解廢水生物處理過程中,投加補充氮源是經(jīng)常采用的一種補救措施,以提高污泥數(shù)量和性能。外加氮源對JF-6菌株生長狀況的影響見圖3。

    圖3 外加氮源對JF-6菌株生長的影響

    由圖3可以看出,以蛋白胨為外加氮源時,JF-6菌株生長狀況極好。因此,確定最適外加氮源為蛋白胨。

    2.4 NaCl濃度對苯酚降解率的影響

    含酚廢水中常常含有很高濃度的鹽分,鹽濃度過高會抑制微生物的生長。因此,為了微生物的生長繁殖,應(yīng)將含酚廢水中的鹽分控制在一定范圍。

    NaCl濃度對JF-6菌株生長的影響見圖4。由圖4可以看出,隨著NaCl濃度的增加,抑制作用逐漸增強。NaCl濃度大于4.0%時,JF-6菌株基本停止生長;NaCl濃度低于4.0%時,JF-6菌株生長良好。因此,確定最適NaCl濃度≤4.0%。

    圖4 NaCl濃度對JF-6菌株生長的影響

    2.5 溶解氧(裝液量)對苯酚降解率的影響

    溶解氧(即裝液量)是好氧微生物生長的重要生長條件。

    不同溶解氧下,菌株培養(yǎng)24 h時的生長情況見圖5。

    圖5 裝液量對JF-6菌株生長的影響

    由圖5可以看出,隨著裝液量的增加,OD600相應(yīng)降低,說明JF-6菌株的生長受到抑制;但裝液量為40~100 mL·(250 mL)-1時,生長抑制不明顯;當裝液量增加到120~150 mL·(250 mL)-1時,OD600下降顯著。這可能是由于JF-6菌株為兼性厭氧菌的緣故。因此,確定最佳裝液量為40~100 mL·(250 mL)-1。

    3 結(jié)論

    (1)JF-6菌株在以1800 mg·L-1苯酚為唯一碳源的培養(yǎng)基中生長良好。

    (2)JF-6菌株在培養(yǎng)24 h、接種量為6%(體積分數(shù))的條件下,對500 mg·L-1、800 mg·L-1、1000 mg·L-1和1200 mg·L-1的苯酚降解率分別達到100%、100%、100%和89%。

    (3)JF-6菌株適宜的生長條件為:溫度20~40℃、pH值4~9、NaCl濃度≤4.0%、外加氮源為蛋白胨、裝液量為40~100 mL·(250 mL)-1。

    參考文獻:

    [1] 楊建設(shè), 張冬梅, 陳茂壕,等. 不同苯酚濃度下耐酚優(yōu)勢菌的活力比較[J]. 茂名學(xué)院學(xué)報, 2002, 12(4):13-17.

    [2] 劉瓊玉, 李太友. 含酚廢水的無害化處理技術(shù)進展[J]. 環(huán)境污染治理技術(shù)與設(shè)備, 2002, 3(2): 62-66.

    [3] Bandyopadhyay K,Das D, Maiti B R. Kinetics of phenol degradation usingPseudomonasputidaMTCC 1194[J].Bioprocess and Biosystems Engineering, 1998, 18(5):373-377.

    [4] Banat F A, Al-Bashir B, Al-Asheh S, et al. Adsorption of phenol by bentonite[J]. Environmental Pollution, 2000, 107(3):391-398.

    [5] Abd-El-Haleem D, Moawad H, Zaki E A, et al. Molecular characterization of phenol-degrading bacteria isolated from different Egyptian ecosystems[J]. Microbial Ecology, 2002, 43(2):217-224.

    [6] Bastos A E R, Tornisielo V L, Nozawa S R, et al. Phenol metabolism by two microorganisms isolated from Amazonian forest soil samples[J]. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2000, 24(6):403-409.

    [7] 牛世全, 胡正嘉. 高效解酚細菌的篩選[J]. 環(huán)境科學(xué)與技術(shù), 1991, (2):44-47.

    [8] 周群英, 高廷耀. 環(huán)境工程微生物學(xué)[M].北京:高等教育出版社, 2002:121.

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