周潔,彭金良,徐宇虹#(.上海交通大學(xué)藥學(xué)院分子藥劑學(xué)實(shí)驗(yàn)室,上海市 200240;2.上海交通大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,上海市 200240)
對(duì)于2型糖尿病病癥,胰高血糖素受體(GCGR)與胰高血糖素之間的相互作用對(duì)于血糖調(diào)節(jié)具有重要意義。一方面,胰高血糖素可促進(jìn)糖異生和糖原分解;另一方面,胰高血糖素可間接影響胰島素分泌情況。因此通過抑制GCGR發(fā)揮作用可以緩解高血糖癥狀。有研究[1]發(fā)現(xiàn)GCGR的基因敲除后模型小鼠中血糖濃度明顯降低,并且小鼠的糖耐量得到了很好的提高,這一發(fā)現(xiàn)也證實(shí)了GCGR在降糖中的重要地位。
為了達(dá)到降糖的目的,需要有效的手段以抑制肝臟中GCGR的表達(dá)。近年來小分子藥物GCGR拮抗藥被報(bào)道具有很好的降糖穩(wěn)定作用[2];GCGR的反義抑制核苷酸也被證實(shí)能夠有效地改善糖尿病模型小鼠的高血糖癥狀[3]。而近年來,siRNA類藥被認(rèn)為是一種更有效的抑制特定基因表達(dá)的藥物,具有極大的應(yīng)用前景[4]?;诖?,在本研究中,筆者設(shè)計(jì)和研發(fā)了針對(duì)糖尿病小鼠模型GCGR的siRNA,考察了經(jīng)高壓快速靜脈注射系統(tǒng)給藥后,siRNA類藥在緩解模型小鼠血糖癥狀中的作用情況。
Milli-Q型純水機(jī)(美國Millipore公司);BS210S電子天平(德國Sartorius公司);UV-21.2PC可見-紫外分光光度計(jì)(尤尼柯上海儀器有限公司);pHS-2S型數(shù)顯酸度計(jì)(上海天達(dá)儀器有限公司);Centrifuge 5415R離心機(jī)(德國Eppendorf公司);BCM-100生物潔凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備有限公司);DK-S24電熱恒溫水槽(上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司)。
四氧嘧啶(Alloxan monohydrate,美國Sigma公司,色譜純);葡萄糖測(cè)定試劑盒(上海榮盛生物技術(shù)有限公司,批號(hào):20030101);靶向GCGR的3條長度為21 bp的siRNA雙鏈序列(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司,色譜純化單鏈凍干粉,純度:>97%);焦磷酸二乙酯(DEPC)處理除去RNA酶的磷酸鹽緩沖溶液(PBS,自制)。
健康昆明鼠,♂,6周齡,體質(zhì)量30 g左右,由上海斯萊克試驗(yàn)動(dòng)物責(zé)任有限公司提供(許可證號(hào):SCXK(滬)-2007-0005)。于上海交通大學(xué)藥學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心20℃明暗交替環(huán)境中適應(yīng)性預(yù)培養(yǎng)1周后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
設(shè)計(jì)針對(duì)小鼠GCGR的siRNA。根據(jù)GCGR的refseq序列NM_008101,根據(jù)siRNA設(shè)計(jì)原理,使用siRNA設(shè)計(jì)軟件[5],設(shè)計(jì)格式為AA19NTT、長度為21 bp的siRNA。挑選3條分別靶向于GCGR基因不同位點(diǎn)的siRNA,結(jié)果如下:GCGR siRNA-1靶序列AAAGCTCTTCAGGAGGAAAGGTT(GCGR基因1451~1473 bp處),正義鏈5′-AGCUCUUCAGGAGGAAAGGUU,反義鏈3′-UUUCGAGAAGUCCUCCUUUCC;siRNA-2靶序列AAAGTGCAGCACCGCCTAGTGTT(455~477 bp處),正義鏈5′-AGUGCAGCACCGCCUAGUGUU,反義鏈3′-UUUCACGUCGUGGCGGAUCAC;siRNA-3靶序列AACTACATCCATGGGAACCTGTT(707~729 bp處),正義鏈 5′-CUACAUCCAUGGGAACCUGUU 反義鏈 3′-UUGAUGUAGGUACCCUUGGAC。對(duì)照組非靶向性siRNA正義鏈5′-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT,反義鏈3′-TTAAGAGGCUUGCACAGUGCA。siRNA的合成均由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司完成。
將合成得到的4條siRNA序列用DEPC處理過的pH7.4、平衡后的PBS溶解,濃度為1 nmol·mL-1,備用。整個(gè)實(shí)驗(yàn)操作過程在無菌操凈臺(tái)上進(jìn)行,移液槍槍頭耗材等均使用DEPC處理過。
本文中數(shù)據(jù)處理以及作圖采用Microsoft Office Excel 2003,組內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)差計(jì)算采用Excel標(biāo)準(zhǔn)計(jì)算函數(shù)Stdev。
2.2.1 糖尿病模型小鼠建立及其健康狀況監(jiān)測(cè)。本研究中采用2%(W%)四氧嘧啶/PBS誘導(dǎo)建立小鼠糖尿病模型:取小鼠20只,適應(yīng)飼養(yǎng)環(huán)境1周并測(cè)正常小鼠空腹4 h后的體質(zhì)量以及血糖含量;小鼠禁食不禁水12 h后,配制新鮮的四氧嘧啶誘導(dǎo)劑溶液,給藥方式為一次性腹腔注射(ip),劑量為200 mg·kg-1(體質(zhì)量)。注射完畢后為小鼠補(bǔ)充飲水以及食物,并且更換墊料。注射誘導(dǎo)劑72 h后,測(cè)量空腹4 h以后的小鼠體質(zhì)量以及血糖含量,檢測(cè)建模成功率并且進(jìn)行分組。20只小鼠誘導(dǎo)前血糖含量均值為(7.1±3.0)mmol·L-1,誘導(dǎo)后死亡2只,血糖含量大于15 mmol·L-1的小鼠共12只,血糖含量均值(34.6±3.9)mmol·L-1,誘導(dǎo)建模成功率為60%。
將12只建模成功后的小鼠分為4組,每組3只,各組血糖含量平均值分別為A組(38.4±3.3)mmol·L-1、B組(29.2±4.6)mmol·L-1、C 組(34.8±3.8)mmol·L-1、D 組(36.1±2.1)mmol·L-1。
建模后16 d內(nèi),檢測(cè)各組小鼠體質(zhì)量情況以了解其健康狀態(tài),結(jié)果見表1。
表1 建模后不同時(shí)間各組小鼠體質(zhì)量變化數(shù)據(jù)(g,,n=3)Tab 1 Changes of body weight of mice after modeling(g,,n=3)
表1 建模后不同時(shí)間各組小鼠體質(zhì)量變化數(shù)據(jù)(g,,n=3)Tab 1 Changes of body weight of mice after modeling(g,,n=3)
1631.2±2.636.4±2.236.9±4.031.5±3.4組別A組B組C組D組時(shí)間/d 033.9±0.533.6±3.431.5±0.732.6±1.5124835.4±4.333.9±1.934.8±3.831.2±1.932.4±1.934.1±3.031.8±2.530.1±1.631.1±0.833.4±2.932.3±3.730.5±1.131.7±1.835.9±2.734.8±3.732.3±0.61230.5±1.936.5±2.237.9±4.529.5±0.4
由表1可知,誘導(dǎo)后糖尿病模型小鼠體質(zhì)量較為穩(wěn)定,健康狀態(tài)良好。
2.2.2 血糖含量檢測(cè)方法的建立。小鼠禁食不禁水4 h后,盡量保持小鼠情緒平靜,迅速用毛細(xì)玻璃管于小鼠眼底取血100 μL左右(3~4滴血),置于0.5 mL離心管中。血液樣本于4℃冰箱中冷藏放置至離心管底部出現(xiàn)血液凝結(jié)后,立即于4℃離心(3000 r·min-1,5 min),取上層血清作葡萄糖含量檢測(cè)。
將葡萄糖檢測(cè)試劑盒中的R1、R2工作液等比例混合作為測(cè)試液。取血清樣本4μL加入1 mL的測(cè)試液中,充分混勻,立即置于37℃電熱恒溫水槽中放置15 min,使之顯色。在紫外波長505 nm處,以空白測(cè)試液加蒸餾水作對(duì)照調(diào)零,讀取樣本管的吸光度值。同時(shí),制備5~30 mmol·L-1梯度濃度的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液,制作吸光度值-葡萄糖濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線從而讀取樣本的葡萄糖濃度。
本實(shí)驗(yàn)條件下葡萄糖系列濃度回歸方程為葡萄糖濃度(mmol·L-1)=59.265×吸光度值-2.250(R2=0.9962),按照此回歸方程可測(cè)算血液中的葡萄糖濃度。
2.3.1 給藥。造模成功后,模型小鼠正常飼養(yǎng)第2天,按照“2.2.1”項(xiàng)下分組情況分別給藥:A組siRNA-1,B組siRNA-2,C組siRNA-3,D組非靶向性siRNA。
取“2.1”項(xiàng)中濃度為1 nmol·mL-1的4種siRNA溶液,按照溶液體積為小鼠體質(zhì)量的10%進(jìn)行給藥,例如,1只體質(zhì)量為30 g的小鼠給藥劑量約為3 nmol siRNA物;給藥劑量參考文獻(xiàn)[6],進(jìn)行小鼠肝靶向體內(nèi)靜脈給藥實(shí)驗(yàn)。給藥方式采用尾靜脈高壓快速推注法一次性給藥;給藥完畢后密切觀察小鼠,及時(shí)補(bǔ)充水和飼料。
2.3.2 給藥后血糖含量-時(shí)間變化情況。分別于給藥后第1、2、4、8 d時(shí)按照“2.2.2”項(xiàng)下方法測(cè)量4組中各小鼠血糖含量,得到不同siRNA序列給藥后小鼠血糖含量變化曲線,見圖1。
圖1 給藥后不同時(shí)間各組小鼠血糖含量變化Fig 1 Level of blood glucose in diabetic rats at different time points after treatment
由圖1可見,A組給藥后第1天血糖含量(5.4±1.5)mmol·L-1,與給藥前比較降低了86.0%,此后的幾天內(nèi)血糖含量有所回升,但第8天血糖含量依然低于給藥前血糖,為(11.7±3.5)mmol·L-1,與給藥前比較降低了69.4%;B組給藥后第1天血糖含量(17.1±1.4)mmol·L-1,與給藥前比較降低了41.4%,此后的幾天血糖含量回升;C組給藥后第1天血糖含量(27.1±7.8)mmol·L-1,與給藥前比較降低了22.2%,此后的幾天血糖回升;D組給藥后第1天血糖含量(37.8±4.2)mmol·L-1,與給藥前比較升高了4.7%,此后的幾天血糖逐漸升高,第8天時(shí)與給藥前比較升高了32%。
2.3.3 糖耐量試驗(yàn)。在siRNA給藥后第2天,所有4組小鼠禁食4 h后取血測(cè)血糖含量,并定為零時(shí)刻數(shù)據(jù),ip葡萄糖,劑量為2 g·kg-1。于給糖后30、60、90、120 min時(shí)間點(diǎn)分別取血測(cè)量4組小鼠血糖含量,得到血糖含量-時(shí)間曲線,見圖2。
圖2 腹腔注射葡萄糖后不同時(shí)間點(diǎn)各組小鼠血糖含量變化Fig 2 Level of blood glucose in diabetic rats at different time points after intraperitoneally injected with glucose
計(jì)算得出A、B、C、D 4組血糖含量-時(shí)間曲線下面積(AUC)分別為964.5、3216.1、2606.9、4173.9 min·mmol·L-1。此值可反映小鼠對(duì)葡萄糖的利用程度,AUC的值越小,證明其越能有效地利用葡萄糖。其中A、B、C組的AUC值分別為D組的23.11%、77.1%、62.5%。
通過對(duì)給藥后模型小鼠血糖含量的監(jiān)測(cè),證實(shí)siRNA對(duì)模型小鼠具有一定的緩解高血糖癥狀的效果。其中,siRNA-1的降糖效果最為顯著,給藥后第1天血糖含量與給藥前比較降低達(dá)86.0%,siRNA-2和siRNA-3也有不同程度的降糖作用,并以在給藥后第1天作用最明顯,第3天后血糖含量有所回升,這可能與siRNA在小鼠體內(nèi)發(fā)生降解有關(guān)。此外,siRNA-1在給藥后8 d內(nèi)血糖并未回升到給藥前水平,這可能是siRNA-1給藥后具有改善小鼠機(jī)體功能的作用,引發(fā)了小鼠體內(nèi)自主降糖的生理過程所致。siRNA-1、siRNA-2、siRNA-3對(duì)模型小鼠的不同降糖作用說明,針對(duì)GCGR基因的不同位點(diǎn)進(jìn)行轉(zhuǎn)錄后可能產(chǎn)生各異的作用。
在糖耐量實(shí)驗(yàn)中,由AUC結(jié)果可知,siRNA給藥后與對(duì)照組比較能更好地改善小鼠利用葡萄糖情況,說明siRNA不僅能夠有效地緩解高血糖癥狀,還能夠改善糖尿病小鼠對(duì)于葡萄糖的生物利用率,該過程機(jī)制還需要進(jìn)一步的研究。
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