以HIV-1 IN-LEDGF/p75相互作用為靶點(diǎn)的抑制劑篩選

許曉雙，張大為

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以HIV-1 IN-LEDGF/p75相互作用為靶點(diǎn)的抑制劑篩選

許曉雙，張大為

213001 常州，江蘇理工學(xué)院生物信息與醫(yī)藥工程研究所

晶狀體上皮源性生長(zhǎng)因子 p75 蛋白（LEDGF/p75）與 HIV-1 整合酶（IN）之間的蛋白-蛋白相互作用是開(kāi)發(fā)抗 HIV-1 藥物的有效靶點(diǎn)，本文旨在尋找以 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用為靶點(diǎn)的小分子抑制劑。

采用均相時(shí)間分辨熒光技術(shù)（HTRF）篩選了 799 個(gè)化合物，比對(duì) IN-LEDGF/p75 相互作用的抑制活性。

發(fā)現(xiàn) 5 個(gè)化合物——腎上腺酮、6-溴-1,2-二氫萘-1,2-二酮、頭孢噻吩、根皮含柘樹(shù)呫噸酮 L 和迷迭香酸對(duì)該相互作用表現(xiàn)出不同程度的抑制作用，其 IC50值分別為 12.3、22.7、26.2、18.5 和 1.13 μmol/L。

為 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用抑制劑的發(fā)現(xiàn)以及新的抗 HIV-1 藥物的開(kāi)發(fā)提供了重要基礎(chǔ)。

HIV 整合酶； HIV 整合酶抑制劑； LEDGF/p75； 均相時(shí)間分辨熒光技術(shù)； 蛋白-蛋白相互作用

人類(lèi)免疫缺陷病毒（human immunodeficiency virus，HIV）是引起獲得性免疫缺陷綜合征（acquired immune deficiency syndrome，AIDS）的病原體。HIV 屬于逆轉(zhuǎn)錄病毒科（）慢病毒屬（），是一類(lèi)潛伏期很長(zhǎng)的病毒。人群中流行的 HIV 病毒主要有 2 種亞型：HIV-1 和 HIV-2。HIV-1 具有較高的毒力，更容易傳播同時(shí)也導(dǎo)致了全球大多數(shù)國(guó)家的 HIV 感染[1]。目前，針對(duì)該病毒缺乏有效的疫苗或者治愈手段，而針對(duì)病毒復(fù)制不同階段開(kāi)發(fā)的化學(xué)治療藥物仍然是防治艾滋病的有效途徑[2]。

HIV-1 整合酶（integrase，IN）介導(dǎo)逆轉(zhuǎn)錄后形成的病毒 DNA 與宿主細(xì)胞基因組的整合，是病毒復(fù)制所必需的關(guān)鍵酶，也是研究抗艾滋病藥物的重要靶標(biāo)[3]。目前，經(jīng)美國(guó) FDA 批準(zhǔn)上市的 IN 抑制劑有 3 個(gè)，包括雷特格韋（raltegravir，RAL）、埃替格韋（elvitegravir，EVG）和度魯特韋（dolutegravir，DTG），均為 IN 鏈轉(zhuǎn)移反應(yīng)抑制劑（integrase strand transfer inhibitors，INSTIs）[4-5]。隨著 3 種 INSTIs 在臨床的應(yīng)用，針對(duì)它們的耐藥性突變病毒株已經(jīng)出現(xiàn)[6]。因此，尋找新的作用機(jī)制靶點(diǎn)以開(kāi)發(fā)新的 IN 抑制劑顯得尤為迫切和重要。

HIV-1 自身編碼的蛋白質(zhì)數(shù)量有限，需要依賴(lài)宿主細(xì)胞蛋白及其信號(hào)通路完成自身復(fù)制。其中參與整合的宿主蛋白稱(chēng)為整合輔因子（integration cofactors，INCFs）[7]。目前，研究最為清楚的 INCF 為晶狀體上皮源性生長(zhǎng)因子 p75 蛋白（lens epithelium-derived growth factor，LEDGF/p75）[8]。LEDGF/p75 也是首個(gè)被發(fā)現(xiàn)的能與 HIV-1 IN 發(fā)生蛋白-蛋白相互作用（protein-protein interaction，PPI）的宿主蛋白。該 PPI 主要由 LEDGF/p75 蛋白 C 端 IN 結(jié)合區(qū)（integrase-binding domain，IBD）與 HIV-1 IN 催化核心區(qū)（catalytic core domain，CCD）作用形成，研究表明該蛋白-蛋白相互作用是開(kāi)發(fā)抗 HIV-1 藥物的有效靶點(diǎn)[8]。

目前，盡管文獻(xiàn)已經(jīng)報(bào)道了許多 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用抑制劑，但還沒(méi)有一個(gè)該類(lèi)抑制劑上市用于抗病毒治療。因此，積極尋找和設(shè)計(jì)新的 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用抑制劑，具有重要的臨床意義和廣闊的應(yīng)用前景。本文以 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用為靶點(diǎn)，采用均相時(shí)間分辨熒光（homogeneous time resolved fluorescence，HTRF）技術(shù)，篩選了 799 個(gè)化合物抑制相互作用的活性，旨在尋找更多的 HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用的抑制劑，為開(kāi)發(fā)新的抗 HIV-1 藥物奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株及質(zhì)粒 大腸桿菌（）菌株 BL21（DE3）購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司；pMD-18-T 載體購(gòu)自寶生物工程（大連）有限公司；表達(dá)載體 pET28a、pGEX-4T-1、重組質(zhì)粒 pET28a-IN-dm（表達(dá) N 端融合 6 × His 標(biāo)簽含有 F185K/C280S 可溶型雙突變 IN）和 pGEX-4T-p75（表達(dá) N 端融合 GST 標(biāo)簽的 p75 蛋白）由本實(shí)驗(yàn)室保存。

1.1.2 試劑與儀器 小分子化合物購(gòu)自國(guó)家小分子化合物資源中心，其中399 個(gè)來(lái)自 InterBioScreen 公司（簡(jiǎn)稱(chēng)IB）的活性化合物庫(kù)，400 個(gè)來(lái)自 BioBioPha 公司（簡(jiǎn)稱(chēng)BBP）的結(jié)構(gòu)類(lèi)型多樣的天然產(chǎn)物庫(kù)；Ni-NTA 與 GST 純化柱填料購(gòu)自常州天地人和生物科技有限公司；Anti-6His-XL665 受體磁珠和 Anti-GST-Cryptate 供體磁珠購(gòu)自法國(guó) Cisbio 公司；384 孔聚丙烯淺孔微孔板和 Envision 2102 multilabel reader 多功能酶標(biāo)儀購(gòu)自美國(guó)Perkin Elmer 公司；BE-9008 微孔板恒溫振蕩器購(gòu)自其林貝爾儀器制造有限公司。

1.2 方法

1.2.1 GST-IBD 的表達(dá)純化 以構(gòu)建好的重組質(zhì)粒 pGEX-4T-p75 為母本質(zhì)粒，PCR 擴(kuò)增 p75 IBD 結(jié)構(gòu)域（第 347-429 為氨基酸殘基）表達(dá)序列，克隆至表達(dá)載體 pGEX-4T-1 的H I-I 位點(diǎn)。正確構(gòu)建的含 p75 IBD 編碼基因的重組表達(dá)質(zhì)粒命名為 pGEX-4T-IBD，然后轉(zhuǎn)化至BL21（DE3），培養(yǎng)過(guò)夜挑取單個(gè)克隆，37 ℃振蕩培養(yǎng)過(guò)夜，按 1:100 的比例擴(kuò)大培養(yǎng)至對(duì)數(shù)中期，0.5 mmol/L IPTG 30 ℃誘導(dǎo)表達(dá) 3 h，收集菌體。裂解液[50 mmol/L Tris-HCl（pH 7.2），500 mmol/L NaCl，1 mmol/L DTT，1 mmol/L EDTA，1 mmol/L PMSF]重懸菌體，超聲破菌，離心收集上清。利用GST 瓊脂糖凝膠 FF 親和色譜柱純化 LEDGF/p75融合蛋白。用洗脫 buffer[50 mmol/L Tris-HCl（pH 8.0），500 mmol/L NaCl，1 mmol/L DTT，20 mmol/L 還原型谷胱甘肽]洗脫目的蛋白，具體純化步驟參考文獻(xiàn)[9]。采用 SDS-PAGE 檢測(cè)蛋白表達(dá)純化，BCA 法測(cè)定蛋白質(zhì)含量。

1.2.2 IN-HIS 的表達(dá)純化 以重組質(zhì)粒 pET28a-N-IN-dm 為母本質(zhì)粒，PCR 擴(kuò)增 IN CCD 結(jié)構(gòu)域（第 50-212 為氨基酸殘基）表達(dá)序列，克隆至表達(dá)載體 pET28a 的I-I 位點(diǎn)。正確構(gòu)建的含 IN CCD 編碼基因的重組表達(dá)質(zhì)粒命名為 pET28a-IN-CCD，然后轉(zhuǎn)化至BL21（DE3），培養(yǎng)過(guò)夜挑取單個(gè)克隆，37 ℃振蕩培養(yǎng)過(guò)夜。按照 1:100 的比例擴(kuò)大培養(yǎng)至對(duì)數(shù)中期，1 mmol/L IPTG 30 ℃誘導(dǎo)表達(dá) 4 h，收集菌體。裂解液[20 mmol/L HEPES（pH 7.3），1 mol/L NaCl，2 mmol/L β-ME，10% 丙三醇，0.1% NP-40]重懸菌體，超聲破菌，離心收集上清。利用 Ni-瓊脂糖凝膠 6FF 親和色譜柱純化 IN-HIS 融合蛋白。用洗脫 buffer[20 mmol/L HEPES（pH 7.3），1 mol/L NaCl，2 mmol/L β-ME，10% 丙三醇，250 mmol/L 咪唑]洗脫目的蛋白，檢測(cè)方法同 1.2.1。

1.2.3 基于 HTRF 的 IN-IBD 相互作用抑制劑的篩選方法 當(dāng) C-端帶有 His標(biāo)簽的 HIV-1 IN（IN-HIS）和 N 端帶有 GST 標(biāo)簽的 IBD（GST-IBD）蛋白相互作用時(shí)（空間距離小于10 nm），Anti-6His-XL665 受體磁珠和Anti-GST-Cryptate 供體磁珠也會(huì)相應(yīng)靠近，從而發(fā)生共振能量轉(zhuǎn)移（FRET）現(xiàn)象[10]。供體磁珠熒光分子的激發(fā)將誘發(fā)受體分子發(fā)出熒光，同時(shí)供體熒光分子自身的熒光強(qiáng)度衰減。當(dāng)抑制劑分子阻斷 IN-HIS 和 GST-IBD 的相互作用時(shí)，F(xiàn)RET 現(xiàn)象減弱。因此 FRET 現(xiàn)象的強(qiáng)弱可以反映抑制劑分子對(duì)兩個(gè)蛋白相互作用抑制作用的強(qiáng)弱，從而該方法可以用于 IN 與 IBD 相互作用抑制劑的篩選。

HTRF 實(shí)驗(yàn)在 384 孔板進(jìn)行，所用蛋白和化合物均用反應(yīng) buffer[25 mmol/L Tris-HCl（pH 7.5），150 mmol/L NaCl，1 mg/ml BSA，0.1% NP40，2 mmol/L MgCl2]稀釋。將以下成分加入 384 孔板中：4 μl 50 nmol/L IN、4 μl 25 nmol/L IBD、2 μl 化合物，混勻后 25 ℃、200 r/min 反應(yīng) 30 min。然后加入 5 μl 0.8 nmol/L 的 GST-Cryptate 供體磁珠和 5 μl 4 nmol/L 的 Anti-6His-XL665 受體磁珠（含 100 mmol/L KF），混勻后 25 ℃，200 r/min 反應(yīng) 1 h。使用多功能酶標(biāo)儀，以 320 nm 為激發(fā)光，讀取 665 nm 和 620 nm 處的發(fā)射光。以 BI-224436 作為陽(yáng)性對(duì)照。

1.2.4 Z 因子的測(cè)定 為了評(píng)價(jià)所構(gòu)建的 HTRF 篩選 GST-IBD 與 IN-HIS 相互作用抑制劑方法的質(zhì)量與穩(wěn)定性，分別測(cè)定了 Z 因子、信號(hào)窗（signal window，SW）和 CV 等主要參數(shù)。當(dāng) Z 因子> 0.5、SW > 2、CV < 20% 時(shí)，該篩選方法的結(jié)果正確可信。此外，高通量篩選方法的信號(hào)噪音比（signal-to-ratio，S/N）> 10，信號(hào)背景比（signal-to-background，S/B）值> 3，該高通量篩選方法才具有高靈敏度和高特異性。Z 因子、S/N、S/B 的計(jì)算公式如下：

Z = 1 –3 ×（SDmax– SDmin） |Mmax– Mmin|

S/N =Mmax– Mmin SDmin

S/B =Mmax Mmin

Mmax：最大信號(hào)值的平均值；Mmin：最小信號(hào)值的平均值；SDmin：最小信號(hào)值的標(biāo)準(zhǔn)偏差；SDmax：最大信號(hào)值的標(biāo)準(zhǔn)偏差。

1.3 數(shù)據(jù)處理

分別計(jì)算各孔 665 nm 和 620 nm 處熒光強(qiáng)度的比值（Ration 665/620），并計(jì)算各孔的相對(duì)抑制率。活性樣品進(jìn)行濃度稀釋后檢測(cè)相對(duì)抑制率，使用軟件 Graphpad 6.0 作圖計(jì)算半數(shù)抑制濃度 IC50值。

2 結(jié)果

2.1 GST-IBD 與 IN-HIS 的表達(dá)純化結(jié)果

圖 1A 為 GST-IBD 在大腸桿菌 BL21（DE3）中的表達(dá)結(jié)果，GST-IBD 在經(jīng) 0.5 mmol/L 的 IPTG 誘導(dǎo)后，目的蛋白（36.89 kD）蛋白量明顯增多，通過(guò) GST 柱純化，并用 20 mmol/L 谷胱甘肽洗脫檢測(cè)得到 GST-IBD 蛋白，蛋白條帶清晰可見(jiàn)，沒(méi)有非特異性條帶，以 BSA 作為標(biāo)準(zhǔn)品，使用 BCA 法測(cè)得 GST-IBD 蛋白的濃度約為 0.28 mg/ml。

圖 1B 為IN-HIS 在大腸桿菌 BL21（DE3）中的表達(dá)結(jié)果，IN-HIS 在經(jīng) 1 mmol/L 的 IPTG 誘導(dǎo)后，蛋白（32.96 kD）表達(dá)量明顯增多，通過(guò) Ni-NTA 柱純化，并用 250 mmol/L 咪唑洗脫檢測(cè)得到 IN-HIS 蛋白，蛋白條帶清晰可見(jiàn)，沒(méi)有非特異性條帶，以 BSA 作為標(biāo)準(zhǔn)品，使用 BCA 法測(cè)得 IN-HIS 蛋白的濃度約為 0.37 mg/ml。

2.2 HTRF 方法穩(wěn)定性分析

Z 因子、信號(hào)窗（SW）和 CV 是評(píng)價(jià)藥物篩選方法均一性和穩(wěn)定性的重要參數(shù)。如圖 2 所示，Z 因子、SW 值、CV 值分別為 0.89、21.05、4.09%，符合 Z 因子 > 0.5、SW > 2、CV < 20%，說(shuō)明篩選結(jié)果是正確可信的；S/N 與 S/B 的值分別為 172.07 與 3.83，符合 S/N > 10，S/B > 3，說(shuō)明該篩選方法具有高靈敏度和高特異性。

2.3 IB 庫(kù)中 IN-LEDGF/p75 抑制劑篩選結(jié)果

將 IB 庫(kù)中 399 個(gè)化合物進(jìn)行抑制 IN-LEDGF/p75 活性篩選，每個(gè)化合物初篩體系終濃度為 50 μmol/L，重復(fù) 2 次。初篩結(jié)果顯示，化合物腎上腺酮（adrenalone）、6-溴-1,2-二氫萘-1,2-二酮（bonaphton）、頭孢噻吩（cefalotin）對(duì) IN-LEDGF/p75 抑制活性均達(dá)到 90% 以上。將這 3 個(gè)化合物在反應(yīng)體系中的終濃度以 50 μmol/L 作為起始濃度進(jìn)行倍比稀釋?zhuān)瑴y(cè)定3 個(gè)化合物對(duì) IN-LEDGF/p75 的抑制百分率，通過(guò)非線(xiàn)性擬合得到 IC50值（圖 3 ~圖 5）。結(jié)果顯示，腎上腺酮、6-溴-1,2-二氫萘-1,2-二酮、頭孢噻吩的 IC50值分別為 12.3、22.7和 26.2 μmol/L。

圖 1 SDS-PAGE 檢測(cè) GST-IBD 與 IN-HIS 的表達(dá)純化結(jié)果[A：GST-IBD（M：分子量標(biāo)準(zhǔn)；1：上清；2：誘導(dǎo)后；3：誘導(dǎo)前；4：20 mmol/L GSH洗脫）；B：IN-HIS（1：誘導(dǎo)前；2：誘導(dǎo)后；3：上清；4：250 mmol/L 咪唑洗脫；M：分子量標(biāo)準(zhǔn)）]

Figure 1 Expression and purification results of GST-IBD and IN-HIS were detected by SDS-PAGE [A: GST-IBD (M: Marker;1: Supernatant; 2: After induction; 3: Before induction; 4: 20 mmol/L GSH elution); B: IN-HIS (1: Before induction; 2: After induction; 3: Supernatant; 4: 250 mmol/L imidazole elution; M: Marker)]

圖 2 HTRF 測(cè)試 GST-IBD 與 IN-HIS 相互作用方法評(píng)價(jià)結(jié)果

Figure 2 Evaluation results of GST-IBD and IN-HIS interaction by HTRF

2.4 BBP 庫(kù)中 IN-LEDGF/p75 抑制劑篩選結(jié)果

同樣，將 BBP 庫(kù)中 400 個(gè)化合物進(jìn)行抑制 IN-LEDGF/p75 活性篩選，每個(gè)化合物初篩體系終濃度為 50 μmol/L，重復(fù) 2 次。初篩結(jié)果顯示，化合物根皮含柘樹(shù)呫噸酮 L（cudraxanthone L）與迷迭香酸（rosmarinic acid）對(duì) IN-LEDGF/p75 抑制活性均達(dá)到 90% 以上。將這 2 個(gè)化合物在反應(yīng)體系中的終濃度以 50 μmol/L 作為起始濃度進(jìn)行倍比稀釋?zhuān)瑴y(cè)定 2 個(gè)化合物對(duì) IN-LEDGF/p75 的抑制百分率，通過(guò)非線(xiàn)性擬合得出 2 個(gè)化合物對(duì) IN-LEDGF/p75 抑制的 IC50值（圖 6 和圖 7）。結(jié)果顯示，根皮含柘樹(shù)呫噸酮 L 和迷迭香酸的 IC50值分別為 18.5 和 1.13 μmol/L。

圖 3 化合物腎上腺酮的 IC50（A）與化學(xué)結(jié)構(gòu)式（B）

Figure 3 IC50(A) and chemical structure formula (B) of compound adrenalone

圖 4 化合物6-溴-1，2-二氫萘-1，2-二酮的 IC50（A）與化學(xué)結(jié)構(gòu)式（B）

Figure 4 IC50(A) and chemical structure formula (B) of compound bonaphton

圖 5 化合物頭孢噻吩的 IC50（A）與化學(xué)結(jié)構(gòu)式（B）

Figure 5 IC50(A) and chemical structure formula (B) of compound cefalotin

圖 6 化合物根皮含柘樹(shù)呫噸酮 L 的 IC50（A）與化學(xué)結(jié)構(gòu)式（B）

Figure 6 IC50(A) and chemical structure formula (B) of compound cudraxanthone L

圖 7 化合物迷迭香酸的 IC50（A）與化學(xué)結(jié)構(gòu)式（B）

Figure 7 IC50(A) and chemical structure formula (B) of compound rosmarinic acid

3 討論

HIV-1 IN-LEDGF/p75 蛋白之間的相互作用對(duì)于 IN 進(jìn)入細(xì)胞核以及染色體定位是必需的，是篩選抗病毒藥物的重要靶點(diǎn)[8]。晶體結(jié)構(gòu)顯示，二聚化的整合酶 CCD 形成的結(jié)合口袋與 LEDGF/p75 的 IBD 發(fā)生了相互作用。研究表明，抑制 CCD-IBD 相互作用的小分子化合物也能夠抑制它們各自全長(zhǎng)蛋白，即 IN 和 LEDGF/p75 之間的相互作用。因此，本文采用全長(zhǎng)的 IN 與 IBD 之間的相互作用來(lái)進(jìn)行 IN-LEDGF/p75 之間的相互作用篩選。

腎上腺酮是兩棲綱、爬行綱、鳥(niǎo)綱和哺乳類(lèi)中的嚙齒目動(dòng)物的主要糖皮質(zhì)激素，具有調(diào)節(jié)應(yīng)激反應(yīng)、免疫反應(yīng)的功能。此外，腎上腺酮還是目前公認(rèn)的心臟復(fù)蘇首選藥的合成前體[11]。6-溴-1,2-二氫萘-1,2-二酮是一種新的抗病毒化療藥物。研究表明，6-溴-1,2-二氫萘-1,2-二酮能明顯降低鼻內(nèi)接種 A2 型流感（香港）68 病毒的小鼠的嚴(yán)重致死率[12]。頭孢噻吩臨床上作為耐青霉素金葡菌（耐甲氧西林者除外）所致的呼吸道感染、軟組織感染、尿路感染、敗血癥等的選用藥物[13]，可用于 AIDS 引起的細(xì)菌感染。根皮含柘樹(shù)呫噸酮 L 為氧雜蒽酮類(lèi)化合物，廣泛存在于一些天然中草藥中，具有利尿、抗微生物、抗病毒、強(qiáng)心、抗結(jié)核、抗癌、抗肝毒等藥理活性[14]。目前未見(jiàn)關(guān)于這 4 個(gè)化合物具有抑制 IN-LEDGF/p75 相互作用的活性的報(bào)道。因此，本研究首次報(bào)道了這 4 個(gè)化合物具有抑制IN-LEDGF/p75 相互作用的活性。

迷迭香酸廣泛分布于唇形科、紫草科、葫蘆科等植物資源中，具有抗菌消炎、抑制 HIV 整合酶、抑制透明質(zhì)酸酶、抗抑郁、抗血栓、抗腫瘤等藥理作用[15]。Tewtrakul 等[16]發(fā)現(xiàn)，提取于紫蘇的迷迭香酸在體外抑制 HIV-IN 活性的 IC50值為5 μmol/L，而本文發(fā)現(xiàn)迷迭香酸在體外抑制 IN-LEDGF/p75 相互作用的 IC50為 1.13 μmol/L，表明迷迭香酸是一種蛋白-蛋白相互作用抑制劑，為發(fā)現(xiàn) HIV-1 IN-LEDGF/p75 相互作用抑制劑提供了重要基礎(chǔ)。

[1] Gilbert PB, Mckeague IW, Eisen G, et al. Comparison of HIV-1 and HIV-2 infectivity from a prospective cohort study in Senegal. Stat Med, 2003, 22(4):573-593.

[2] Zhang X. Anti-retroviral drugs: current state and development in the next decade. Acta Pharm Sin B, 2018, 8(2):131-136.

[3] Dayam R, Al-Mawsawi LQ, Neamati DN. HIV-1 integrase inhibitors: an emerging clinical reality. Drugs R D, 2007, 8(3):155-168.

[4] Hazuda DJ. HIV integrase as a target for antiretroviral therapy. Curr Opin HIV AIDS, 2012, 7(5):383-389.

[5] Hazuda DJ, Felock P, Witmer M, et al. Inhibitors of strand transfer that prevent integration and inhibit HIV-1 replication in cells. Science, 2000, 287(5453):646-650.

[6] Métifiot M, Vandegraaff N, Maddali K, et al. Elvitegravir overcomes resistance to raltegravir induced by integrase mutation Y143. AIDS, 2011, 25(9):1175-1178.

[7] Van Maele B, Busschots K, Vandekerckhove L, et al. Cellular co-factors of HIV-1 integration. Trends Biochem Sci, 2006, 31(2):98- 105.

[8] Maertens G, Cherepanov P, Pluymers W, et al. LEDGF/p75 is essential for nuclear and chromosomal targeting of HIV-1 integrase in human cells. J Biol Chem, 2003, 278(35):33528-33539.

[9] De Rijck J, Vandekerckhove L, Gijsbers R, et al. Overexpression of the lens epithelium-derived growth factor/p75 integrase binding domain inhibits human immunodeficiency virus replication. J Virol, 2006, 80(23):11498-11509.

[10] Wang HJ, Zhou ZH, Xu JC, et al. HTRF-based method for determination of HSP90-HOP inhibition activity and its application. Acta Pharm Sinica, 2017, 52(4):592-597. (in Chinese)

王慧潔, 周子涵, 徐嘉辰, 等. 基于均相時(shí)間分辨熒光技術(shù)(HTRF)的HSP90-HOP相互作用抑制劑活性測(cè)試方法的構(gòu)建及其應(yīng)用. 藥學(xué)學(xué)報(bào), 2017, 52(4):592-597.

[11] Fotopoulou MA, Ioannou PC. Post-column terbium complexation and sensitized fluorescence detection for the determination of norepinephrine, epinephrine and dopamine using high-performance liquid chromatography. Anal Chimica Acta, 2002, 462(2):179-185.

[12] Nikolaeva IS, Kutchak SN, Bogdanova NS, et al. Pathomorphological study of antiviral chemotherapeutic effectiveness of bonaphthon under experimental conditions. Farmakol Toksikol, 1976, 39(3):336-341.

[13] Carranza-Torres JM, Vargas-Daza ER, Villarreal-Ríos E, et al. Effectiveness of the scheme reimpregnation maintenance schedule vs. ceftazidime/cephalothin in dialysis patients with peritonitis. Nefrologia, 2016, 36(4):448-450.

[14] Lian SS. Research progress on xanthones. Guangdong Chem Ind, 2014, 41(2):46-47. (in Chinese)

連雙雙. 氧雜蒽酮類(lèi)化合物的研究進(jìn)展. 廣東化工, 2014, 41(2):46- 47.

[15] You R, Ma XQ, Wu BH, et al. Advance in pharmacological effects of Rosmarinic Acid. Sichuan J Physiol Sci, 2015, 37(2):93-96. (in Chinese)

尤茹, 馬雪倩, 吳炳火, 等. 迷迭香酸藥理作用研究進(jìn)展. 四川生理科學(xué)雜志, 2015, 37(2):93-96.

[16] Tewtrakul S, Miyashiro H, Nakamura N, et al. HIV-1 integrase inhibitory substances from Coleus parvifolius. Phytother Res, 2003, 17(3):232-239.

Screening of inhibitors targeting HIV-1 IN-LEDGF/p75 interaction

XU Xiao-shuang, ZHANG Da-wei

Institute of Bioinformatics and Medical Engineering, Jiangsu University of Technology, Changzhou 213001, China

The protein-protein interaction between the cellular chromatin associated protein lens epithelium-derived growth factor (LEDGF/p75) and the HIV-1 integrase (IN) is an effective target for the development of anti-HIV-1 drugs. This work aims to find small molecular inhibitors targeting the HIV-1 IN-LEDGF/p75 interaction.

The inhibitory activity of 799 compounds (from 2 compounds libraries: InterBioScreen and BioBioPha) on the interaction of IN-LEDGF/p75 was screened by a homogeneous time resolved fluorescence (HTRF)-based assay.

It was found that five compounds, adrenalone, bonaphton, cefalotin, cudraxanthone L and rosmarinic acid, showed different inhibitory effect on the interaction of HIV-1 IN-LEDGF/p75, and their IC50values were 12.3, 22.7, 26.2, 18.5 and 1.13 μmol/L, respectively.

This work provides an important basis for the discovery of HIV-1 IN-LEDGF/p75 interaction inhibitors and the development of new anti-HIV-1 drugs.

HIV integrase; HIV integrase inhibitors; LEDGF/p75; Homogeneous time resolved fluorescence; Protein-protein interaction

ZHANG Da-wei, Email: zhangdw517@gmail.com

國(guó)家自然科學(xué)基金（31700297）

張大為，Email：zhangdw517@gmail.com

2018-07-09

10.3969/j.issn.1673-713X.2018.06.003