林妙端 陳建森 佘菲菲 陳 豪
(福建醫(yī)科大學(xué)病原生物學(xué)系福建省感染與腫瘤重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福州350004)
幽門(mén)螺桿菌(Hp)感染是慢性活動(dòng)性胃炎、消化性潰瘍的主要病因,并與胃腺癌和胃粘膜相關(guān)淋巴樣組織(MALT)淋巴瘤的發(fā)生密切相關(guān)[1]。全世界約有50%的人患有 Hp相關(guān)性胃腸疾病,聯(lián)合應(yīng)用質(zhì)子泵抑制劑和抗生素的三聯(lián)療法是目前控制 Hp感染的主要方案,但存在細(xì)菌耐藥,抗生素治療后細(xì)菌的球形變異、藥物不良反應(yīng)及藥效經(jīng)濟(jì)學(xué)等問(wèn)題[2]。因此,研制 Hp疫苗是預(yù)防和治療Hp感染切實(shí)有效的方法。近年有關(guān)核酸疫苗的研究倍受關(guān)注。核酸疫苗作為一種新型疫苗,能使機(jī)體對(duì)質(zhì)粒所編碼抗原產(chǎn)生強(qiáng)烈而持久的體液免疫應(yīng)答和細(xì)胞免疫應(yīng)答,具有安全,高效,成本相對(duì)較低,性質(zhì)比較穩(wěn)定等優(yōu)點(diǎn)[3]。
oipA(outer inflammatory protein)基因編碼前炎癥外膜蛋白,相對(duì)分子質(zhì)量為34 kD,是一種較強(qiáng)的Hp致病基因,特別在 Hp感染的炎癥過(guò)程中起著重要的作用。許多研究表明,OipA與活動(dòng)性胃炎、消化性潰瘍、胃癌有明顯的相關(guān)性[4,5]。我們以往的研究結(jié)果表明oipA DNA重組質(zhì)粒,經(jīng)肌注途徑免疫,具有抗 Hp的免疫保護(hù)作用,但是保護(hù)率較低,僅50%[6]。本研究對(duì)oipA基因序列進(jìn)行密碼子優(yōu)化,K ozak前導(dǎo)序列添加、CpG序列優(yōu)化,擬構(gòu)建攜帶oipA優(yōu)化基因真核表達(dá)載體的SL7207重組菌株,并研究其對(duì)C57BL/6小鼠抗 Hp感染的免疫保護(hù)作用,以獲得高效的口服疫苗。
1.1 菌株、細(xì)胞株及質(zhì)粒 幽門(mén)螺桿菌國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)株J99及SS1株購(gòu)自中國(guó)疾病預(yù)防控制中心傳染病研究所;大腸桿菌DH5α(Invitrogen公司);鼠傷寒沙門(mén)菌LB5000和aroA基因缺陷的減毒鼠傷寒沙門(mén)氏菌SL7207由本實(shí)驗(yàn)室保存;胃腺癌細(xì)胞系(AGS)購(gòu)自中科院上海細(xì)胞庫(kù);真核表達(dá)載體pVAX1(Invitrogen公司)。
1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 C57BL/6小鼠60只,6周齡,雌性,體重(18±2)克,購(gòu)自上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào)為0056435,福建醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室SPF級(jí)小鼠飼養(yǎng)室飼養(yǎng),許可證號(hào)為SYXK(閩)2008-0001,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后用于免疫實(shí)驗(yàn)。
1.3 pVAX1-oipA重組子的構(gòu)建 從 GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中獲取 HpJ99 oipA全長(zhǎng)基因序列(基因號(hào):NC 000921),應(yīng)用DNAMAN分析基因和pVAX1的酶切圖譜,應(yīng)用Oligo 6軟件設(shè)計(jì)引物序列,在上游引物的的5′端引入 PstⅠ酶切位點(diǎn),下游引物的3′端引入XhoⅠ酶切位點(diǎn),引物由上海博尚生物技術(shù)有限公司合成 ,序列如下 :oipA-F:5′-AAAACTGCAGATG AAAAAAGTCCTCTTACTAAC-3′;oipA-R :5′-CCGCTCG AGTTAATGTTTGTTTTTTAAAGTTA-3′。以 提 取 的J99基因組為模板,用上述合成的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)條件:94℃2分鐘;(94℃30秒,54℃45秒,72℃90秒)×30;72℃7分鐘。取25μl PCR產(chǎn)物(924 bp)電泳回收后,用PstⅠ和XhoⅠ對(duì)目的基因和載體pVAX1進(jìn)行雙酶切,將目的基因和經(jīng)過(guò)CIP處理過(guò)的載體pVAX1連接后轉(zhuǎn)化入DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,在含有卡那霉素(50μg/ml)的LB選擇培養(yǎng)基上培養(yǎng),隨機(jī)挑取單克隆菌落過(guò)夜培養(yǎng),小量提取質(zhì)粒進(jìn)行PCR,酶切鑒定,并將初步鑒定含陽(yáng)性重組子的細(xì)菌克隆送上海博尚生物技術(shù)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定。
1.4 oipA基因序列的優(yōu)化和pVAX1-optioipA重組子的構(gòu)建 在保持oipA基因全部氨基酸不變的原則下,由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司應(yīng)用軟件將其密碼子改為小鼠偏愛(ài)的密碼子,進(jìn)行 CpG序列優(yōu)化,并在基因的上游引入PstⅠ酶切位點(diǎn)以及K ozak序列,下游引入XhoⅠ酶切位點(diǎn),最后將合成的oipA優(yōu)化基因(942 bp)重組入真核表達(dá)載體pVAX1,命名為pVAX1-optioipA。
1.5 重組子瞬時(shí)轉(zhuǎn)染AGS細(xì)胞 將含重組子和空質(zhì)粒的菌體大規(guī)模培養(yǎng),用Qiagen Plasmid Midi K it提取pVAX1-oipA,pVAX1-optioipA,pVAX1,調(diào)整濃度為1 mg/ml。應(yīng)用含10%胎牛血清(FBS)的F12培養(yǎng)基(Sigma公司),37℃、5%CO2常規(guī)培養(yǎng)AGS細(xì)胞,至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期以0.25%的胰蛋白酶消化細(xì)胞,計(jì)數(shù)并轉(zhuǎn)種入6孔板,5×105/孔,培養(yǎng)約24小時(shí)至細(xì)胞密度為90%~95%。更換不含F(xiàn)BS的培養(yǎng)基,分別取4μg質(zhì)粒按比例與LipofectamineTM2000(In-vitrogen公司)和不含 FBS的培養(yǎng)基混合,室溫孵育20分鐘后均勻加入AGS細(xì)胞培養(yǎng)孔中,5小時(shí)后更換完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48小時(shí),棄去上清液,細(xì)胞以RIPA裂解液(碧云天公司)裂解,裂解細(xì)胞溶液放置-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.6 Western印跡法檢測(cè)表達(dá)蛋白免疫原性 BCA法測(cè)定三組蛋白濃度后,取裂解細(xì)胞溶液加入1×SDS-PAGE上樣緩沖液煮沸10分鐘后,以相同蛋白量上樣,采用12%SDS-PAGE進(jìn)行電泳,轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜(NC膜),3%牛血清白蛋白(BSA)封閉4小時(shí),加入兔抗oipA抗體(Abmart公司為本室制備)4℃孵育過(guò)夜,洗滌3次后加AP標(biāo)記的羊抗兔 IgG(北京中杉金橋生物公司)室溫孵育2小時(shí),洗滌3次后涂CDP-Star,曝光,顯影,掃描。
1.7 重組減毒鼠傷寒沙門(mén)菌核酸疫苗構(gòu)建和穩(wěn)定性檢測(cè) 挑取減毒鼠傷寒沙門(mén)菌SL7207單個(gè)菌落于LB培養(yǎng)液中振蕩(200 r/min)培養(yǎng)過(guò)夜,按1∶100接種500μl菌液于50 ml LB培養(yǎng)液中繼續(xù)培養(yǎng)至OD值至0.6~0.7,用滅菌雙蒸水洗滌1次后再用10%滅菌甘油洗滌2次(4℃,4 000 r/min,10分鐘),最后加入2 ml 10%滅菌甘油重懸菌制成SL7207感受態(tài)細(xì)胞,分裝后放置-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。通過(guò)氯化鈣法將重組子pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA,和空質(zhì)粒pVAX1轉(zhuǎn)入鼠傷寒沙門(mén)菌LB5000,提取經(jīng)過(guò)甲基化修飾的pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA,pVAX1分別加入80μl SL7207感受態(tài)細(xì)胞,冰浴5分鐘后轉(zhuǎn)移至電擊杯(1 mm)中 ,電轉(zhuǎn)化條件:2 000 V電壓,25μF電容,200Ω電阻,放電時(shí)間4~5秒。電擊后將轉(zhuǎn)化液加入1 ml LB培養(yǎng)中靜置培養(yǎng)2小時(shí),吸取100μl培養(yǎng)液接種于LB平板(50μg/ml卡那霉素)中37℃培養(yǎng)過(guò)夜,挑取陽(yáng)性克隆抽提質(zhì)粒進(jìn)行鑒定,培養(yǎng)制備成疫苗菌SL7207/pVAX1-oipA,SL7207/pVAX1-optioipA,和空質(zhì)粒菌SL7207/pVAX1,用滅菌的PBS調(diào)成2.5×109CFU/ml備用。將構(gòu)建好的SL7207/pVAX1-oipA,SL7207/pVAX1-optioipA,在卡那霉素(+)和卡那霉素(-)的LB培養(yǎng)液中分別培養(yǎng)傳代50次,每10代提取一次質(zhì)粒,酶切鑒定。
1.8 重組減毒鼠傷寒沙門(mén)菌核酸疫苗的免疫保護(hù)作用
1.8.1 口服免疫小鼠 小鼠隨機(jī)分成5組:①PBS組(10只);②SL7207組(10只);③SL7207/pVAX1組(10只);④SL7207/pVAX1-oipA疫苗組(15只);⑤SL7207/pVAX1-optioipA疫苗組(15只)。小鼠禁食一夜,禁水4小時(shí),先以無(wú)菌3%NaHCO3100μl灌胃以中和胃酸,30分鐘后再予 200μl菌液(5×108CFU/只)灌胃,PBS對(duì)照組予200μl PBS,2小時(shí)后恢復(fù)飲食、飲水。2周后加強(qiáng)免疫一次。
1.8.2 間接ELISA法測(cè)小鼠血清中抗 HpoipA特異性抗體 末次免疫2周后從小鼠眼內(nèi)眥采血制備血清。以終濃度為5μg/ml的oipA抗體(Abmart公司為本室合成)包被96孔酶標(biāo)板,100μl/孔,4℃過(guò)夜,PBS(含3%BSA)37℃封閉2小時(shí),以含 0.05%Tween 20的PBS緩沖液(PBST)洗滌后加待測(cè)血清(1∶100),每份標(biāo)本均測(cè)3個(gè)復(fù)孔,37℃孵育2小時(shí),洗滌后加HRP標(biāo)記羊抗鼠IgG(美國(guó)Santa Cruz公司1∶500),37°C孵育2小時(shí),洗滌后于各反應(yīng)孔中加入臨時(shí)配制TMB底物反應(yīng)液,室溫放置30分鐘顯色,加入反應(yīng)終止液(2 mmol/L H2SO4),于OD490nm波長(zhǎng)測(cè)定各反應(yīng)孔OD值,以oipA抗體為陽(yáng)性對(duì)照,3%BSA/PBST孔做陰性對(duì)照調(diào)零。血清抗 HpoipA IgG抗體濃度以O(shè)D490表示。
1.8.3 Hp攻擊免疫小鼠后胃組織細(xì)菌學(xué)檢測(cè) 末次免疫4周后,以 HpSS1株菌液(5×108CFU/只)灌胃攻擊,隔天1次,共3次。末次攻擊4周后,禁食24小時(shí),處死小鼠,無(wú)菌取胃,沿胃大彎剪開(kāi),用生理鹽水漂洗后,取一小塊胃粘膜行快速尿素酶試驗(yàn),另取胃組織采用半定量細(xì)菌培養(yǎng)法,胃組織稱(chēng)重后,制成勻漿 ,用布氏肉湯 1∶10、1∶100、1∶1 000 倍比稀釋后,各取100μl涂于布氏血瓊脂平板上,37℃微需氧條件下(5%O2、10%CO2、85%N2)培養(yǎng) 3~5 天 ,細(xì)菌作快速尿素酶(三強(qiáng)生物化工有限公司)試驗(yàn),涂片革蘭氏染色鏡檢及PCR鑒定(用上述oipA引物)。鑒定正確后進(jìn)行菌落計(jì)數(shù),計(jì)算單位胃組織的定植細(xì)菌密度。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 各組間率的比較用SPSS13.0 for Windows統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行Fisher精確檢驗(yàn),計(jì)量資料以±s表示,各組之間進(jìn)行One Way Anova檢驗(yàn),以P<0.05和P<0.01提示差異顯著和極顯著。
2.1 真核表達(dá)載體的構(gòu)建及鑒定 以 pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA為模板利用上述引物PCR擴(kuò)增出大約為1 kb的片段(圖1);應(yīng)用 PstⅠ/Xho Ⅰ分別酶切pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA,經(jīng) 1%瓊脂糖凝膠電泳顯示雙酶切后,可見(jiàn)釋放目標(biāo)片段,目標(biāo)片段約1 kb(圖2);pVAX1-oipA序列測(cè)定(上海博尚生物技術(shù)有限公司)結(jié)果顯示其核酸序列與 GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)公布的 HpJ99 oipA全長(zhǎng)基因序列完全一致,pVAX1-optioipA序列測(cè)定(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司)與本研究原先設(shè)計(jì)的核酸序列完全一致,證明已成功構(gòu)建了pVAX1-oipA,pVAX1-optioipA重組子。
2.2 目的基因在AGS細(xì)胞中表達(dá)的檢測(cè) Western印跡法結(jié)果顯示:在 pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA、pVAX1瞬時(shí)轉(zhuǎn)染AGS細(xì)胞48小時(shí)后,細(xì)胞裂解液能檢測(cè)到OipA蛋白(34 kD)的表達(dá)。而空載體pVAX1未見(jiàn)目的蛋白條帶。與pVAX1-oipA相比,pVAX1-optioipA蛋白表達(dá)量較高(圖3),這證明經(jīng)過(guò)密碼子優(yōu)化,K ozak前導(dǎo)序列添加等優(yōu)化措施可以提高OipA蛋白在真核細(xì)胞中的表達(dá)量。
圖1 重組質(zhì)粒pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA PCR鑒定Fig.1 Identification of pVAX1-oipA、pVAX1-optioip A recombinant plasmid by PCR
圖2 重組質(zhì)粒pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA的酶切鑒定Fig.2 Identification of pVAX1-oipA,pVAX1-optioip A recombinant plasmid by digestion with restriction enzymes PstⅠand XhoⅠ
圖3 pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA表達(dá)OipA蛋白的 Western印跡圖Fig.3 Western blot analysis of OipA protein expressed by pVAX1-oipA,pVAX1-optiopA
圖4 重組減毒鼠傷寒沙門(mén)菌核酶疫苗的酶切鑒定Fig.4 Identification of Attenuated Salmonella typhimurium containing recombinant plasmid by digestion with restriction enzymes PstⅠand XhoⅠ
2.3 重組減毒鼠傷寒沙門(mén)菌核酸疫苗構(gòu)建和鑒定重組疫苗菌SL7207/pVAX1-oipA、SL7207/pVAX1-
optioipA和空質(zhì)粒菌SL7207/pVAX1抽提質(zhì)粒,經(jīng)電泳后均獲得相應(yīng)的電泳條帶,重組疫苗菌SL7207/pVAX1-oipA,SL7207/pVAX1-optioipA抽提質(zhì)粒經(jīng)PstⅠ/XhoⅠ酶切后獲得一條約1 kb的電泳條帶,其大小與oipA全長(zhǎng)序列相符(圖4),重組疫苗菌SL7207/pVAX1-oipA和SL7207/pVAX1-optioipA血清凝集試驗(yàn)結(jié)果均為A-F多價(jià)、O4菌體和H1鞭毛抗原陽(yáng)性。證明成功構(gòu)建攜帶Hp oipA基因和oipA優(yōu)化后基因真核表達(dá)載體的SL7207重組菌株。將構(gòu)建好的SL7207/pVAX1-oipA,SL7207/pVAX1-optioipA,在卡那霉素(+)和卡那霉素(-)的LB培養(yǎng)液中分別培養(yǎng)傳代50次,每10代提取一次質(zhì)粒,酶切鑒定結(jié)果都能獲得一條約1 kb的電泳條帶,其大小與oipA全長(zhǎng)序列相符,證明在沒(méi)有抗生素選擇壓力下重組減毒沙門(mén)氏菌能保持其穩(wěn)定性。
表1 小鼠血清抗 HpoipA特異性抗體ELISA檢測(cè)結(jié)果Tab.1 The result of ELISA detected the mice serum anti-Hp oipA antibodies
表2 小鼠胃組織細(xì)菌學(xué)檢測(cè)結(jié)果Tab.2 The result of bacteriology test of gastric mucosa
2.4 間接ELISA法測(cè)小鼠血清中抗 HpoipA特異性抗體結(jié)果 口服免疫2周后,小鼠血清抗 HpoipA特異性抗體 ELISA檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)表1,疫苗接種組(SL7207/pVAX1-oipA和SL7207/pVAX1-optioipA)小鼠血清中抗oipA抗體的OD值顯著高于對(duì)照組(P<0.01),表明了oipA在體內(nèi)表達(dá)了相應(yīng)的蛋白,該蛋白具有刺激機(jī)體產(chǎn)生免疫應(yīng)答的免疫原性。其中SL7207/pVAX1-optioipA疫苗組小鼠血清中抗oipA抗體的OD值顯著高于SL7207/pVAX1-oipA疫苗組(P<0.01),推測(cè)經(jīng)過(guò)優(yōu)化的oipA基因其蛋白在小鼠體內(nèi)得到較高水平的表達(dá)。
2.5 免疫保護(hù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果 Hp感染的科研診斷標(biāo)準(zhǔn)是:Hp培陽(yáng)性或Hp形態(tài)學(xué)、尿素酶依賴(lài)試驗(yàn)、血清學(xué)試驗(yàn)、特異性PCR,4項(xiàng)中任2項(xiàng)陽(yáng)性,即可判定為 Hp感染陽(yáng)性。本實(shí)驗(yàn)采用小鼠胃粘膜組織快速尿素酶試驗(yàn)及細(xì)菌定量培養(yǎng)來(lái)檢測(cè) Hp感染狀況,結(jié)果見(jiàn)表 2。疫苗接種組(SL7207/pVAX1-oipA和SL7207/pVAX1-optioipA)的Hp感染率顯著低于對(duì)照組(P<0.01)。其中SL7207/pVAX1-oipA疫苗組的Hp感染率為60%,SL7207/pVAX1-optioipA疫苗組的Hp感染率為26.67%,對(duì)感染陽(yáng)性的小鼠,我們進(jìn)行了 Hp定植密度的分析,發(fā)現(xiàn)3組對(duì)照組 Hp的定植密度都在105CFU/g以上,明顯高于疫苗接種組(P<0.01),其中 SL7207/pVAX1-oipA疫苗組 Hp定植密度高于 SL7207/pVAX1-optioipA疫苗組(P<0.01),表明oipA核酸疫苗對(duì) Hp感染小鼠具有一定的免疫保護(hù)作用,優(yōu)化oipA基因有助于提高免疫保護(hù)的效果。
核酸疫苗是繼減毒、滅活和亞單位疫苗之后的第3代疫苗,被譽(yù)為預(yù)防醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的第3次疫苗革命。與以往的減毒、滅活等蛋白疫苗相比,核酸疫苗雖然具有無(wú)法比擬的優(yōu)點(diǎn),但仍需優(yōu)化。針對(duì)目前的技術(shù)水平來(lái)說(shuō),沒(méi)有修飾的裸露DNA質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染細(xì)胞后蛋白的表達(dá)不夠理想,誘導(dǎo)的免疫反應(yīng)較弱,因此為了得到更理想的免疫效果,進(jìn)行核酸疫苗的優(yōu)化是十分必要的[3]。
核酸疫苗主要由保護(hù)性抗原及真核表達(dá)載體構(gòu)成,保護(hù)性抗原的篩選是構(gòu)建核酸疫苗的關(guān)鍵,我們實(shí)驗(yàn)室以往的研究結(jié)果表明編碼OipA蛋白的核酸疫苗肌注BALB/c小鼠具有抗 Hp的免疫保護(hù)作用,但是保護(hù)效率比較低[6]。究其原因,可能與機(jī)體細(xì)胞吸收核酸疫苗的效率很低,抗原表達(dá)量少,難以達(dá)到足夠的免疫刺激劑量有關(guān)。對(duì)于疫苗而言,抗原蛋白的表達(dá)水平對(duì)其免疫原性起著十分關(guān)鍵的作用[7]。而提高核酸疫苗在機(jī)體中抗原的表達(dá),其中重要的環(huán)節(jié)之一是通過(guò)抗原密碼子優(yōu)化。細(xì)菌、植物、動(dòng)物各有自己偏好的密碼子,對(duì)已知氨基酸序列的抗原來(lái)說(shuō),可以通過(guò)優(yōu)化密碼子,使用宿主偏好的密碼子,從而提高抗原在宿主中的表達(dá)水平。有相當(dāng)多的文獻(xiàn)報(bào)道,抗原基因密碼子的優(yōu)化可以顯著的改善蛋白的表達(dá)效率[8,9]。另一環(huán)節(jié)可以通過(guò)K ozak前導(dǎo)序列添加來(lái)提高抗原表達(dá)量。K ozak序列是 K ozak M發(fā)現(xiàn)的,他詳細(xì)研究了起始密碼子ATG周邊堿基定點(diǎn)突變后對(duì)轉(zhuǎn)錄和翻譯所造成的影響,并總結(jié)出在真核生物中,起始密碼子周邊序列為CCACCATGG時(shí)轉(zhuǎn)錄和翻譯效率最高,該序列被廣泛應(yīng)用于真核表達(dá)載體的構(gòu)建中。謝慶軍等[10]在人p53腫瘤抑制基因編碼區(qū)前設(shè)計(jì)了一個(gè)K ozak序列,從而在蛋白翻譯水平提高基因的表達(dá)量。
近年來(lái)研究證實(shí)減毒鼠傷寒沙門(mén)菌是良好的重組質(zhì)粒承載系統(tǒng),作為疫苗載體接種安全無(wú)毒,效果優(yōu)于直接接種抗原蛋白或重組質(zhì)粒,且無(wú)需其他粘膜免疫佐劑(佐劑均有一定不良反應(yīng)),具有廣闊的應(yīng)用前景[11]。隨著對(duì)沙門(mén)菌毒力遺傳以及重組DNA技術(shù)的深入了解,已經(jīng)研制出許多遺傳確定的新型弱毒傷寒株作為口服活疫苗的候選菌株,其中研究最廣泛的是營(yíng)養(yǎng)缺陷型弱毒株如aro基因缺失株,cya/crp基因缺失株,Dam和phoP/phoQ基因缺失株等[12]。本研究采用aroA基因缺陷的減毒鼠沙門(mén)菌SL7207為載體,aroA編碼5-烯醇丙酮酰莽草酸-3-磷酸合成酶,該酶催化2,4-二羥基苯甲酸鹽的分支酸途徑的中間反應(yīng),產(chǎn)生芳香族氨基酸。而哺乳動(dòng)物不具備該合成途徑,故細(xì)菌從宿主體內(nèi)獲得這些化合物的可能性極小,使得aroA突變株在體外培養(yǎng)時(shí)依賴(lài)上述化合物生長(zhǎng),但在宿主體內(nèi)只能有限生長(zhǎng)繁殖從而得到減毒。國(guó)內(nèi)外學(xué)者廣泛選用減毒鼠沙門(mén)菌SL7207作為核酸疫苗的載體菌[13-15]。
為了提高oipA核酸疫苗抗 Hp的免疫保護(hù)作用,研制高效的 Hp疫苗,本研究對(duì)oipA基因進(jìn)行了一系列優(yōu)化,包括添加了 GCCACC前導(dǎo)序列,選擇小鼠偏愛(ài)的密碼子,并合理調(diào)整CG的含量達(dá)到CpG序列優(yōu)化,以期通過(guò)提高抗原在宿主中的表達(dá)水平,同時(shí)發(fā)揮CpG免疫佐劑的作用,提高宿主對(duì)oipA核酸疫苗的免疫應(yīng)答進(jìn)而提高oipA核酸疫苗抗 Hp的免疫保護(hù)作用。本實(shí)驗(yàn)將oipA基因和oipA優(yōu)化基因克隆入 pVAX1真核表達(dá)載體,獲得重組子pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA。因?yàn)槿祟?lèi)、嚙齒類(lèi)以及豬這3種哺乳動(dòng)物對(duì)絕大多數(shù)密碼子的偏嗜性是相同或相似[16],所以采用人胃腺癌AGS細(xì)胞對(duì)重組子的表達(dá)進(jìn)行體外檢測(cè)。將上述重組子與空載體pVAX1一起瞬時(shí)轉(zhuǎn)染人胃腺癌AGS細(xì)胞,應(yīng)用Western blot檢測(cè)轉(zhuǎn)染細(xì)胞中優(yōu)化前后OipA蛋白的表達(dá),研究發(fā)現(xiàn)pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA均可在AGS細(xì)胞中表達(dá),且pVAX1-optioipA蛋白表達(dá)量高于pVAX1-oipA。在驗(yàn)證了重組子表達(dá)蛋白的基礎(chǔ)上,將pVAX1-oipA、pVAX1-optioipA轉(zhuǎn)入減毒鼠沙門(mén)菌SL7207,經(jīng)過(guò)鑒定制成穩(wěn)定的口服核酸疫苗。最后體內(nèi)實(shí)驗(yàn)表明,優(yōu)化后的oipA基因在小鼠體內(nèi)表達(dá)的蛋白量高于未優(yōu)化的oipA基因,小鼠接種疫苗菌后均獲得一定的免疫保護(hù),Hp感染率明顯低于對(duì)照組,而 Hp感染的疫苗組小鼠胃組織中Hp定植密度顯著降低,其中優(yōu)化后oipA核酸疫苗組獲得更好的免疫保護(hù)效果。
綜上所述,本研究成功構(gòu)建了攜帶 HpoipA核酸疫苗和優(yōu)化后oipA核酸疫苗的SL7207重組菌株,體外實(shí)驗(yàn)證實(shí)其可表達(dá)具有免疫原性的抗原蛋白,體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證實(shí)其對(duì)小鼠 Hp感染具有免疫保護(hù)性,優(yōu)化oipA基因可提高核酸疫苗的免疫保護(hù)效果,這為對(duì) Hp核酸疫苗作更深入的實(shí)驗(yàn)研究及其臨床應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。
1 Ahmed N,Majeed A A,Ahmed Iet al.genoBASE pylori:a genotype search tool and database of the human gastric pathogen Helicobacter pylori[J].Infect Genet Evol,2007;7(4):463-468.
2 Dzieniszewski J,Jarosz M.Guidelines in the medical treatment of Helicobacter pylori infection[J].J Physiol Pharmacol,2006;57(3):143-154.3 DonnellyJ J,Wahren B,Liu M A.DNA vaccines:progress and challenges[J].J Immunol,2005;175(2):633-639.
4 Kudo T,Nurgalieva Z Z,Conner M Eet al.Correlation between Helicobacter pylori OipA protein expression and oipA gene switch status[J].J Clin Microbiol,2004;42(5):2279-2281.
5 Yamaoka Y,Ojo O,Fujimoto Set al.Helicobacter pylori outer membrane proteins and gastroduodenal disease[J].Gut,2006;55(6):775-781.
6 吳小茜,佘菲菲,丁 惠 et al.幽門(mén)螺桿菌oipA DNA重組質(zhì)粒的構(gòu)建及免疫保護(hù)作用[J].中國(guó)免疫學(xué)雜志,2006;22(8):696-699.
7 Wang S,Farfan-Arribas DJ,Shen Set al.Relative contributions of codon usage,promoter efficiency and leader sequence to the antigen expression and immunogenicity of HIV-1 Env DNA vaccine[J].Vaccine,2006;24(21):4531-4540.
8 Kheyar A,Jabrane A,Zhu Cet al.Alternative codon usage of PRRS virus ORF5 gene increases eucaryotic expressionof GP(5)glycoprotein and improves immune response in challenged pigs[J].Vaccine,2005;23(31):4016-22.
9 K o HJ,K o S Y,K im YJet al.Optimization of codon usage enhances the immunogenicityof a DNA vaccine encoding mycobacterial antigen ag85B[J].Infect Immun,2005;73(9):5666-5674.
10 謝慶軍,范凌云,李季風(fēng) et al.K ozak序列引導(dǎo)的人p53基因重組智能腺病毒載體的構(gòu)建與表達(dá)[J].中國(guó)生物制品學(xué)雜志,2008;21(2):107-110.
11 Xu F,Ulmer J B.Attenuated salmonella and Shigella as carriersfor DNA vaccines[J].J Drug Target,2003;11(8-10):481-488.
12 徐引弟,郭愛(ài)珍,陳煥春.減毒沙門(mén)菌疫苗研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2008;29(8):52-56.
13 Ivaylo Gentschev,Joachim Fensterle,Andreas Schmidtet al.Use of a recombinant Salmonella enterica serovar Typhimurium strain expressing CRaf for protection against C-Raf induced lungadenoma in mice[J].BMC Cancer,2005;5:15.
14 Pan Z,Zhang X,Geng Set al.Priming with a DNA vaccine delivered by attenuated Salmonella typhimurium and boosting with a killed vaccine confers protection of chickens against infectionwith the H9 subtype of avian influenza virus[J].Vaccine,2009;27(7):1018-1023.
15 楊 恒,劉佳文,曹三杰 et al.攜帶TGEVDNA疫苗減毒沙門(mén)氏菌的構(gòu)建及安全性與免疫性分析[J].微生物學(xué)報(bào),2009;49(1):72-77.
16 J?rgensen F G,Hobolth A,Hornsh Het al.Comparative analysis of protein coding sequences from human,mouse and the domesticated pig[J].BMC Biology,2005;3:2-5.