秦朝鳳,李 姣,郝經(jīng)文,卜雅琴,李 勝,陳乃東,3,*
(1.安徽中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,安徽 合肥 230012;2.皖西學(xué)院生物與制藥工程學(xué)院,安徽 六安 237012;3.中藥質(zhì)量評(píng)價(jià)與品質(zhì)提升安徽省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,安徽 六安 237012)
糖尿病屬于慢性代謝性疾病,需要通過(guò)藥物治療才能有效地控制血糖[1]。據(jù)國(guó)際糖尿病聯(lián)盟統(tǒng)計(jì),成年糖尿病人數(shù)從2000年的1.51億增長(zhǎng)至2017年的4.25億,預(yù)計(jì)2045年將達(dá)6.29億[2]。其中,2型糖尿病被認(rèn)為是糖尿病的主要類型,它是由于胰島素分泌不足而導(dǎo)致的餐后高血糖[3]。此外,有研究表明,持續(xù)的餐后高血糖往往會(huì)引起多種并發(fā)癥,尤其是心腦血管疾病的發(fā)生[4]。因此,控制餐后高血糖已成為治療糖尿病及其并發(fā)癥的重要手段。淀粉作為最重要的碳水化合物來(lái)源之一,在人類飲食中貢獻(xiàn)了約40%~60%的能量。然而,體內(nèi)對(duì)淀粉的快速消化會(huì)導(dǎo)致餐后血糖的快速增加,這與代謝性疾病2型糖尿病呈正相關(guān)[5-6]。因此,減少淀粉的消化速度吸引了越來(lái)越多研究人員的關(guān)注。其中,α-葡萄糖苷酶抑制劑可以通過(guò)抑制小腸中的糖苷酶活性,延緩對(duì)所攝入的碳水化合物的消化,進(jìn)而降低對(duì)葡萄糖的吸收,從而達(dá)到對(duì)血糖水平的控制[7]。
蘆薈大黃素即1,8-二羥基-3-羥甲基-9,10蒽醌,是多種中草藥的天然生物活性蒽醌類化合物,主要來(lái)源于百合科蘆薈葉片、蓼科大黃根莖、巴天酸模、山扁豆等植物[8]。蘆薈大黃素被用作中藥已有2 000多年的歷史,來(lái)源廣泛,具有安全、經(jīng)濟(jì)、高效的優(yōu)點(diǎn),目前仍存在于各種中藥制劑[9]。蘆薈大黃素已被證實(shí)具有廣泛的藥理作用,包括抗腫瘤、抗病毒、抗炎、抗菌、抗寄生蟲(chóng)、神經(jīng)保護(hù)和肝保護(hù)等,因此,它已被廣泛用于治療流感病毒、炎癥、敗血癥、阿爾茨海默病、青光眼、瘧疾、肝纖維化、銀屑病、2型糖尿病、生長(zhǎng)障礙和幾種癌癥等[10]。對(duì)于糖尿病方面,有研究表明,蘆薈大黃素能夠在胰島素抵抗(insulin resistance,IR)和不抵抗情況下激活糖原合成通路;從而降低培養(yǎng)基中葡萄糖水平,增加糖原合成,實(shí)現(xiàn)降低血糖的目的[11]。此外,Lu Ling等[12]研究得出蘆薈大黃素可能通過(guò)抑制干擾素調(diào)節(jié)因子4、Notch1、磷脂酰肌醇3-激酶-蛋白激酶B信號(hào)通路,降低腎組織膠原活性,從而減緩糖尿病腎病癥狀,減輕對(duì)腎組織的損害。
蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶活性是否有抑制作用以及如何發(fā)揮抑制作用目前均尚未明確,并缺乏對(duì)其聯(lián)合抑制作用的探討。鑒于此,本研究擬系統(tǒng)探究蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制效果和抑制機(jī)制。主要采用酶抑制動(dòng)力學(xué)、紫外光譜、傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectrometer,F(xiàn)TIR)、熒光猝滅等多種手段,從體外分子水平探究蘆薈大黃素抑制α-葡萄糖苷酶的作用機(jī)理,并探究蘆薈大黃素與阿卡波糖的聯(lián)合抑制作用效果,為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用蘆薈大黃素作為調(diào)節(jié)人體血糖的保健食品配方提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
蘆薈大黃素(≥98%)購(gòu)自南京道斯夫生物科技有限公司,來(lái)源于蘆薈葉片,土黃色結(jié)晶粉末。其水溶性較低,本研究用含二甲基亞楓的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)溶解(反應(yīng)液中二甲基亞砜的體積分?jǐn)?shù)不超過(guò)5%),無(wú)異常氣味。
α-葡萄糖苷酶(酶活力≥71.2 U/mg)、對(duì)硝基苯-α-D-吡喃葡糖苷(4-nitrophenyl-α-D-glucopyranoside,PNPG)(≥99%)、阿卡波糖(≥95%)合肥博美生物科技有限公司;對(duì)硝基苯酚(≥99%)、二甲基亞楓(≥99.9%)、磷酸氫二鉀(≥99%)、磷酸二氫鉀(≥99%)、溴化鉀(≥99.95%)上海阿拉丁生化科技股份有限公司;其他試劑均為分析純;溶液均采用雙蒸水配制。
Synergy H1型酶標(biāo)儀 美國(guó)伯騰儀器有限公司;TU-1950型雙光束紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;F-4600型熒光分光光度計(jì) 日立科學(xué)儀器(北京)有限公司;Thermo Scientific Nicolet iS10型FTIR儀 美國(guó)賽默飛世爾科技公司。
1.3.1 蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制活性測(cè)定
參照文獻(xiàn)[13-14]方法并稍作改動(dòng)。具體操作步驟為:α-葡萄糖苷酶和PNPG溶解在PBS(0.1 mol/L、pH 6.8)中。將80 μL不同質(zhì)量濃度(25、50、100、150、200 μg/mL)的蘆薈大黃素溶液和20 μLα-葡萄糖苷酶溶液(28 μg/mL)混合,在37 ℃條件下預(yù)孵育10 min平衡反應(yīng)后,將8 mmol/L的PNPG溶液(40 μL)作為底物加入預(yù)孵育混合液體系中引發(fā)反應(yīng)。37 ℃條件下反應(yīng)30 min后,立刻加入1 mol/L碳酸鈉溶液60 μL以停止反應(yīng)。最后使用酶標(biāo)儀測(cè)定405 nm波長(zhǎng)處的吸光度。將阿卡波糖作為陽(yáng)性對(duì)照,按下式計(jì)算α-葡萄糖苷酶抑制率:
式中:A樣品、A樣品空白、A對(duì)照及A對(duì)照空白分別表示添加蘆薈大黃素和酶反應(yīng)的吸光度、添加蘆薈大黃素反應(yīng)的吸光度、添加酶反應(yīng)的吸光度及蘆薈大黃素和酶均未添加反應(yīng)的吸光度。
1.3.2 蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)
按照1.3.1節(jié)所述方法,當(dāng)α-葡萄糖苷酶質(zhì)量濃度為28 μg/mL時(shí),分別測(cè)定不同質(zhì)量濃度(0、40、80、120、160 μg/mL)的蘆薈大黃素在底物PNPG濃度分別為0.5、1、2、4、6、8 mmol/L時(shí)酶的反應(yīng)初速率。按照式(2)以1/V對(duì)1/[S]作圖,得出Lineweaver-Burk曲線圖,并計(jì)算其抑制動(dòng)力學(xué)常數(shù)米氏常數(shù)(Km)和最大反應(yīng)速率(Vmax),以此判定蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制類型[15-16]。利用式(3)進(jìn)行二次作圖,得到蘆薈大黃素與酶的解離常數(shù)Ki及蘆薈大黃素與酶-底物結(jié)合的復(fù)合物的解離常數(shù)Ki’,根據(jù)Lineweaver-Burk曲線特征及Ki、Ki’大小判斷其具體抑制類型,分析其抑制作用機(jī)制。
式中:[S] 和[I] 分別表示底物和抑制劑的濃度/(mmol/ L);V表示初始反應(yīng)速率/(mmol/(L·min));Km和Vmax分別表示米氏常數(shù)/(mmol/L)和最大反應(yīng)速率/(mmol/(L·min));Ki和Ki’均為解離常數(shù)/(μg/mL)。
1.3.3 紫外分析
參照文獻(xiàn)[17-18]方法并稍作修改,將300 μL不同質(zhì)量濃度(0、20、40、60、80、100、120、140 μg/mL)的蘆薈大黃素加入到3 mLα-葡萄糖苷酶溶液(112 μg/mL)中,置于37 ℃條件下反應(yīng)10 min后,用紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)掃描240~310 nm范圍內(nèi)的吸收光譜。以未添加蘆薈大黃素的α-葡萄糖苷酶溶液作為對(duì)照。
1.3.4 FTIR分析
參照文獻(xiàn)[14,18]的方法,并稍作修改,將0.5 mLα-葡萄糖苷酶(1 mg/mL)和1 mL蘆薈大黃素(0.25 mg/mL)的混合溶液在37 ℃條件下孵育10 min。然后將反應(yīng)后的混合溶液冷凍干燥,進(jìn)行FTIR測(cè)定。對(duì)照組采用PBS代替蘆薈大黃素溶液。通過(guò)溴化鉀壓片法,利用FTIR對(duì)樣品進(jìn)行分析。在4 cm-1的分辨率下進(jìn)行60 次掃描,記錄4 000~400 cm-1波數(shù)范圍內(nèi)的吸光度。
1.3.5 熒光猝滅分析
參考文獻(xiàn)[14,16]的方法,并稍作修改,測(cè)量不同質(zhì)量濃度蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶熒光的猝滅作用。在3 mL 28 μg/mL的α-葡萄糖苷酶溶液中加入不同質(zhì)量濃度(0、20、40、60、80、100、120、140 μg/mL)的蘆薈大黃素溶液300 μL,分別在297.15、303.15、310.15 K溫度條件下反應(yīng)10 min,用等量PBS作為對(duì)照。在3 種不同溫度下,記錄300~500 nm波長(zhǎng)處的熒光光譜,激發(fā)波長(zhǎng)為280 nm,激發(fā)和發(fā)射帶寬均設(shè)置為5 nm。在發(fā)射光譜中扣除空白光譜(PBS)。蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的熒光猝滅類型由Stern-Volmer方程確定,公式如下:
式中:F0和F分別為無(wú)或有蘆薈大黃素時(shí)α-葡萄糖苷酶的熒光強(qiáng)度;Kq為猝滅速率常數(shù)/(L/(mol·s));Ksv為猝滅常數(shù)/(L/mol);[Q]為蘆薈大黃素的濃度/(mol/L);τ0為熒光團(tuán)的壽命/s;Ka和n分別為蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的結(jié)合常數(shù)/(L/mol)和結(jié)合位點(diǎn)數(shù)。
通過(guò)計(jì)算相關(guān)的熱力學(xué)參數(shù),以確定蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶之間相互作用的主要結(jié)合力類型[19]。焓變(ΔH0)、熵變(ΔS0)和自由能變化(ΔG0)3 個(gè)熱力學(xué)參數(shù)可由van’t Hoff方程確定,公式如下:
式中:T為溫度/K;R為氣體常數(shù)/(8.314 J/(mol·K));ΔG0、ΔH0和ΔS0分別為自由能變化/(kJ/mol)、焓變/(kJ/mol)和熵變/(kJ/(mol·K))。
1.3.6 協(xié)同抑制作用分析
參考文獻(xiàn)[20]的方法研究阿卡波糖與蘆薈大黃素聯(lián)合抑制-葡萄糖苷酶活性的作用。Va和Vb分別為阿卡波糖和蘆薈大黃素存在時(shí),α-葡萄糖苷酶的剩余活性。抑制劑阿卡波糖和蘆薈大黃素同時(shí)存在時(shí),α-葡萄糖苷酶的剩余活性定義為Vab。Vc表示預(yù)期的α-葡萄糖苷酶的剩余活性。假設(shè)兩種抑制劑的抑制作用是相互獨(dú)立的,則Vc等于VaVb。為了分析阿卡波糖與蘆薈大黃素的相互作用類型,將Vab-Vc值范圍在-0.1以下視為協(xié)同作用,在-0.1和0.1之間的值視為相加作用,超過(guò)0.1的值視為亞相加作用[21]。
如圖1所示,在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi),蘆薈大黃素和阿卡波糖對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制效果均隨著質(zhì)量濃度增加明顯增強(qiáng)。由Origin非線性擬合得到蘆薈大黃素的半抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)值為75.97 μg/mL,而阿卡波糖IC50為338.84 μg/mL。以上結(jié)果表明,蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用比阿卡波糖更強(qiáng),對(duì)α-葡萄糖苷酶有更好的抑制作用[22]。
圖1 蘆薈大黃素和阿卡波糖對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用Fig.1 Inhibitory effect of aloe emodin and acarbose on α-glucosidase
如圖2a所示,Lineweaver-Burk雙倒數(shù)圖中所有直線交于第3象限。隨著蘆薈大黃素質(zhì)量濃度的增加,橫截距越小、縱截距均越大,即Vmax和Km均呈下降趨勢(shì),此結(jié)果說(shuō)明蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制類型是一種非競(jìng)爭(zhēng)與反競(jìng)爭(zhēng)的混合型抑制。
圖2 蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制作用的Lineweaver-Burk圖Fig.2 Lineweaver-Burk plot for the inhibitory effect of aloe emodin on α-glucosidase
由圖2b、c可知,抑制劑與α-葡萄糖苷酶作用的解離常數(shù)Ki值為88.78 μg/mL,而抑制劑與α-葡萄糖苷酶-PNPG的復(fù)合物作用的解離常數(shù)Ki’值為25.90 μg/mL,說(shuō)明蘆薈大黃素更傾向于與α-葡萄糖苷酶-底物復(fù)合物結(jié)合。詳細(xì)的動(dòng)力學(xué)參數(shù)如表1所示。
表1 蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制動(dòng)力學(xué)參數(shù)Table 1 Kinetic parameters for α-glucosidase inhibition by aloe emodin
紫外-可見(jiàn)吸收光譜法是一種可以簡(jiǎn)單、快速、準(zhǔn)確地評(píng)價(jià)在抑制劑作用下,酶的結(jié)構(gòu)及復(fù)合物形成的一種新方法。α-葡萄糖苷酶在280 nm波長(zhǎng)處有一特征吸收峰,是由于其芳香族氨基酸發(fā)生π→π*躍遷所引起的[23]。由圖3可以看出,α-葡萄糖苷酶的紫外吸收峰在沒(méi)有或存在蘆薈大黃素時(shí)存在顯著差異。隨著蘆薈大黃素質(zhì)量濃度的增加,特征峰的位置并沒(méi)有顯著地移動(dòng),但α-葡萄糖苷酶的吸收峰強(qiáng)度大幅增加,吸收峰強(qiáng)度變化具有濃度依賴性,這說(shuō)明蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶之間存在相互作用,形成了新的復(fù)合物。該現(xiàn)象表明α-葡萄糖苷酶-蘆薈大黃素復(fù)合物的形成可能會(huì)有利于分子間和分子內(nèi)聚集,破壞Trp和Tyr芳香族氨基酸殘基的微環(huán)境空間結(jié)構(gòu),可能導(dǎo)致酶的構(gòu)象變化和疏水基團(tuán)的暴露,這與沈荷玉等[17]研究沒(méi)食子酸與α-淀粉酶/α-葡萄糖苷酶結(jié)合的紫外光譜圖結(jié)果相似。
圖3 蘆薈大黃素質(zhì)量濃度對(duì)α-葡萄糖苷酶紫外光譜的影響Fig.3 Effect of aloe emodin concentration on UV spectra of α-glucosidase
紅外光譜分析是研究蘆薈大黃素誘導(dǎo)α-葡萄糖苷酶結(jié)構(gòu)變化的重要手段。蛋白質(zhì)的FTIR由幾個(gè)特征吸收峰組成,包括N—H拉伸振動(dòng)(3 300~2 070 cm-1)峰,酰胺I 鍵(1 700~1 600 cm-1)、酰胺II 鍵(1 600~1 500 cm-1)和酰胺III鍵(1 400~1 200 cm-1)特征峰[24]。據(jù)報(bào)道,酰胺I鍵(C=O拉伸振動(dòng))對(duì)蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化比其他鍵更敏感[25]。因此,為了進(jìn)一步確定化合物對(duì)α-葡萄糖苷酶的影響,使用FTIR儀檢測(cè)樣品的酰胺I鍵特征峰。如圖4所示,在蘆薈大黃素的存在下,α-葡萄糖苷酶的特征峰數(shù)量沒(méi)有增加,說(shuō)明酶與抑制劑相互作用過(guò)程中沒(méi)有形成新的共價(jià)鍵[26]。另一方面,在α-葡萄糖苷酶溶液中加入蘆薈大黃素后,酰胺I鍵的吸收峰強(qiáng)度明顯增加,且酰胺I鍵由1 654.58 cm-1藍(lán)移到1 650.11 cm-1,表明蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶發(fā)生了相互作用并對(duì)其構(gòu)象產(chǎn)生了影響。
圖4 蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶紅外光譜的影響Fig.4 Effect of aloe emodin on IR spectra of α-glucosidase
熒光光譜法常被用于研究蛋白質(zhì)與小分子之間的相互作用[27]。因?yàn)楹蠺rp、Tyr和Phe等芳香族氨基酸,所以α-葡萄糖苷酶會(huì)產(chǎn)生一種內(nèi)源性熒光,而熒光的強(qiáng)度和位置與這些芳香族氨基酸殘基所處的微環(huán)境有著緊密的聯(lián)系[28]。如圖5所示,當(dāng)激發(fā)波長(zhǎng)為280 nm時(shí),α-葡萄糖苷酶的最大發(fā)射特征峰位于340 nm處,隨著蘆薈大黃素的加入(0~140 μg/mL),該體系的熒光強(qiáng)度降低,但最大發(fā)射波長(zhǎng)并無(wú)明顯變化,這說(shuō)明蘆薈大黃素能夠通過(guò)與酶的相互作用強(qiáng)烈地猝滅α-葡萄糖苷酶的固有熒光,且使其芳香族氨基酸殘基的微環(huán)境發(fā)生變化。
圖5 蘆薈大黃素質(zhì)量濃度對(duì)α-葡萄糖苷酶熒光光譜的影響Fig.5 Effect of aloe emodin concentration on fluorescence spectra of α-glucosidase
從圖6a可以看出,蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶熒光強(qiáng)度的線性關(guān)系良好。由表2可知,Ksv值隨著溫度的升高而減小,由2.101×103L/mol降低至1.755×103L/mol;Kq值遠(yuǎn)大于生物大分子的最大散射碰撞猝滅常數(shù)2.0×1010L/(mol·s),其值均大于1.5×1011L/(mol·s),說(shuō)明蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的熒光猝滅不是動(dòng)態(tài)碰撞引起的,而是通過(guò)酶-配體復(fù)合物的形成引起的靜態(tài)猝滅。
表2 蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶相互作用及熱力學(xué)參數(shù)Table 2 Thermodynamic parameters for the interaction between aloe emodin and α-glucosidase
圖6 蘆薈大黃素猝滅α-葡萄糖苷酶的Stern-Volmer圖Fig.6 Stern-Volmer plots of fluorescence quenching of α-glucosidase by aloe emodin
為了進(jìn)一步確定蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的相互作用機(jī)制,可以通過(guò)式(5)計(jì)算確定結(jié)合常數(shù)(Ka)和結(jié)合位點(diǎn)數(shù)(n),結(jié)果如圖6b所示。由表2可知,隨著溫度的升高,結(jié)合常數(shù)Ka也隨之增加,由1.898×102L/mol增加至3.927×105L/mol,說(shuō)明溫度越高,蘆薈大黃素與酶結(jié)合的親和力越強(qiáng),即蘆薈大黃素與酶形成的復(fù)合物穩(wěn)定性提高;同時(shí),結(jié)果表明在大部分溫度下蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的相互作用位點(diǎn)趨向于1。
根據(jù)van’t Hoff公式計(jì)算ΔH0、ΔS0及ΔG0的變化,從而確定蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的作用力。配體與蛋白質(zhì)之間的非共價(jià)相互作用力一般有4 種類型,即靜電相互作用、氫鍵、范德華力和疏水相互作用[29]。如表2 所示,ΔG0為負(fù)值,證明了蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的相互作用是一個(gè)自發(fā)的過(guò)程。而ΔH0為452.03 kJ/mol,ΔS0為1.562 kJ/(mol·K),表明其相互作用力主要是疏水相互作用。
許多研究表明,兩種或兩種以上的抑制劑聯(lián)合使用可以協(xié)同抑制α-葡萄糖苷酶的活性。本研究采用報(bào)道的方法計(jì)算組合作用的類型,根據(jù)聯(lián)用后α-葡萄糖苷酶的剩余活性Vab與預(yù)期的α-葡萄糖苷酶的剩余活性Vc的差值判斷,差值在-0.1以下為協(xié)同作用,在-0.1和0.1之間的值為相加作用[21],相應(yīng)結(jié)果見(jiàn)表3。蘆薈大黃素與阿卡波糖組合的Vab-Vc值范圍均在-0.1以下,表明蘆薈大黃素與阿卡波糖低質(zhì)量濃度和高質(zhì)量濃度的組合對(duì)α-葡萄糖苷酶的活性均具有協(xié)同抑制作用,即蘆薈大黃素與阿卡波糖的結(jié)合可以增強(qiáng)對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用。因此,可以推測(cè)出蘆薈大黃素與阿卡波糖聯(lián)用時(shí),對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用優(yōu)于單一抑制劑,能有效地提高抑制能力并降低阿卡波糖的不良反應(yīng)。
表3 阿卡波糖與蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制活性的協(xié)同作用Table 3 Synergistic effect of acarbose combined with aloe emodin on α-glucosidase activity
α-葡萄糖苷酶是2型糖尿病的治療靶點(diǎn),其抑制劑可以通過(guò)阻礙膳食碳水化合物的消化,將餐后血糖維持在正常水平。大量研究表明,自然界中存在的天然產(chǎn)物是α-葡萄糖苷酶抑制劑的重要來(lái)源,包括黃酮類化合物、酚酸、單寧酸、類胡蘿卜素、萜類、糖類和生物堿等[30-31]。因此,從天然產(chǎn)物中尋找抑制α-葡萄糖苷酶活性的有效藥物對(duì)調(diào)節(jié)血糖濃度和控制餐后高血糖具有重要意義。本實(shí)驗(yàn)以蒽醌化合物中的蘆薈大黃素為研究對(duì)象,發(fā)現(xiàn)其對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用強(qiáng)于阿卡波糖。另外,研究可知蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制類型是非競(jìng)爭(zhēng)與反競(jìng)爭(zhēng)的混合型抑制,其抑制類型與阿卡波糖不同。
Zheng Yuxue等[14]通過(guò)紅外光譜、圓二色光譜和熒光光譜研究阿魏酸對(duì)α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑制機(jī)理,證實(shí)了阿魏酸與α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶以非共價(jià)鍵結(jié)合,猝滅其固有熒光強(qiáng)度,并證實(shí)隨著阿魏酸的加入,α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生改變。沈荷玉等[17]采用紫外光譜和圓二色光譜分析表明,沒(méi)食子酸的加入導(dǎo)致酶構(gòu)象發(fā)生變化,熒光光譜結(jié)果表明沒(méi)食子酸以靜態(tài)猝滅的方式強(qiáng)烈猝滅酶的內(nèi)源性熒光,改變氨基酸殘基Trp和Tyr所處的微環(huán)境。本實(shí)驗(yàn)也采用多種光譜分析方法研究蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的抑制機(jī)理。首先運(yùn)用紫外光譜法初步分析蛋白質(zhì)分子構(gòu)象,得出蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶之間形成一種新的復(fù)合物。再運(yùn)用紅外光譜法得出蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶發(fā)生相互作用使其構(gòu)象發(fā)生改變。最后利用熒光光譜法深入探究?jī)烧叩淖饔脵C(jī)制,其結(jié)果表明蘆薈大黃素通過(guò)靜態(tài)猝滅的方式猝滅α-葡萄糖苷酶的內(nèi)源性熒光,且結(jié)合方式以疏水作用力為主。
單藥大劑量的使用常常會(huì)產(chǎn)生多種不良反應(yīng)或藥物抗性,而將兩種或兩種以上具有協(xié)同治療作用的藥物組合使用時(shí),可明顯降低藥物的劑量和毒性。聯(lián)合用藥所產(chǎn)生的協(xié)同效果一般具有以下的優(yōu)勢(shì):在顯著增加治療效果的同時(shí),可以減少藥物使用的劑量,即能夠增加或保持相同療效以減緩毒副作用的發(fā)生以及減少或減緩耐藥性的發(fā)生。當(dāng)具有不同機(jī)制或作用模式的藥物直接作用于單一靶點(diǎn)或某一種疾病時(shí),可以起到更有效的治療效果。阿卡波糖是一種典型的α-葡萄糖苷酶競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑,臨床常用來(lái)治療餐后高血糖[32]。但大量或長(zhǎng)期服用阿卡波糖可引起腹脹、腹瀉等副作用。越來(lái)越多的證據(jù)表明,天然降糖產(chǎn)品與阿卡波糖聯(lián)合使用可以提高阿卡波糖的療效,延長(zhǎng)其降糖活性[33]。因此,針對(duì)糖尿病的治療方案,迫切需要對(duì)傳統(tǒng)藥物和天然產(chǎn)物的聯(lián)合使用進(jìn)行研究。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)將蘆薈大黃素與阿卡波糖以不同質(zhì)量濃度聯(lián)合使用,結(jié)果表明蘆薈大黃素與阿卡波糖具有協(xié)同抑制α-葡萄糖苷酶的作用,即蘆薈大黃素與阿卡波糖聯(lián)合使用能更好地改善降糖效果。目前,越來(lái)越多的研究表明兩種不同類型的抑制劑同時(shí)使用時(shí)具有協(xié)同抑制α-葡萄糖苷酶的效果。Yang Jichen等[20]曾報(bào)道過(guò)4 種黃酮類化合物(芹菜素、野黃芩素、高車前素和澤蘭黃酮)與阿卡波糖聯(lián)合抑制α-葡萄糖苷酶活性具有協(xié)同作用,其中,芹菜素與阿卡波糖組合的協(xié)同效果最好,低濃度和高濃度均有協(xié)同抑制作用,與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果相似。
本研究以蘆薈大黃素作為蒽醌類化合物代表,采用抑制動(dòng)力學(xué)、紫外光譜法、紅外光譜法和熒光光譜法系統(tǒng)研究蘆薈大黃素抑制α-葡萄糖苷酶的機(jī)理,并對(duì)蘆薈大黃素和阿卡波糖聯(lián)用的抑制作用進(jìn)行了研究。蘆薈大黃素IC50為75.97 μg/mL,阿卡波糖IC50為338.84 μg/mL,其對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用比阿卡波糖強(qiáng)。酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)結(jié)果顯示,蘆薈大黃素以非競(jìng)爭(zhēng)性和反競(jìng)爭(zhēng)性混合型抑制類型方式與α-葡萄糖苷酶結(jié)合,且更傾向于與酶-底物的復(fù)合物結(jié)合。紫外光譜分析結(jié)果表明,蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶之間形成了一種新的復(fù)合物。FTIR分析結(jié)果進(jìn)一步表明,蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶發(fā)生了相互作用并對(duì)其構(gòu)象產(chǎn)生影響。蘆薈大黃素對(duì)α-葡萄糖苷酶的熒光光譜分析結(jié)果顯示,蘆薈大黃素通過(guò)靜態(tài)猝滅的方式猝滅α-葡萄糖苷酶的內(nèi)源性熒光,使其所處的環(huán)境發(fā)生變化,進(jìn)而影響其活性。并且,蘆薈大黃素與α-葡萄糖苷酶的結(jié)合主要以疏水相互作用為主。同時(shí),蘆薈大黃素與阿卡波糖聯(lián)合使用抑制α-葡萄糖苷酶活性的結(jié)果顯示,兩者對(duì)α-葡萄糖苷酶的活性具有協(xié)同抑制作用。
綜上所述,蘆薈大黃素能夠很好地抑制α-葡萄糖苷酶的活性,從而有效地延緩了糖類的消化速度,這對(duì)于改善人體的血糖水平以及控制餐后高血糖都有非常重要的意義。因此,該研究可為天然α-葡萄糖苷酶抑制劑的研發(fā)利用提供一定的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。