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    牡丹花青素苷合成關(guān)鍵基因PsDFR啟動子活性分析

    2024-04-14 12:51:24張夢杰
    林業(yè)科學(xué)研究 2024年2期
    關(guān)鍵詞:花青素牡丹光照

    周 琳,袁 夢,齊 宇,2,張夢杰,王 雁*

    (1. 中國林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)研究所,國家林業(yè)和草原局林木培育重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100091;2. 山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,山東 濟(jì)南 250100)

    花色是觀賞植物重要的園藝性狀,也是吸引傳粉者的主要因素[1-3]。花青素苷對植物呈色起重要作用[4]。在其生物合成途徑中,二氫黃酮醇4-還原酶(dihydroflavonol 4-reductase,DFR)是下游階段的關(guān)鍵酶,可催化二氫黃酮醇還原為無色花青素苷元,進(jìn)而轉(zhuǎn)變成橙色到磚紅色的天竺葵素糖苷、紅色的矢車菊素糖苷和藍(lán)色到紫色的飛燕草素糖苷,與花色的產(chǎn)生直接相關(guān)[4]。目前,DFR基因的克隆及其功能分析已在亞洲百合(LiliumAsiatic hybrids)[5]、 玫 瑰 (Rosa rugosaThunb.)[6]、牽牛花(Ipomoea nil(L.) Roth.)[7]、一品紅(Euphorbia pulcherrimaWilld. ex Klotzsch)[8]、馬櫻杜鵑(Rhododendron delavayiFranch.)[9]和橙花龍膽(Gentiana luteaL. var.aurantiaca(M. Laínz) M. Laínz)[10]等多種觀賞植物中得到研究。

    對不同植物的研究發(fā)現(xiàn),DFR在轉(zhuǎn)錄水平上的調(diào)控機(jī)制十分復(fù)雜,受光照、溫度、激素等一系列外部環(huán)境和內(nèi)部因子的影響。孟祥春等[11]研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)過短暫光照處理的非洲菊(GerberahybridaHort.)花青素苷含量及DFR基因表達(dá)量均顯著增加,且基因表達(dá)水平與光照時間呈正相關(guān)。在蕪菁(Brassica rapaL.)中,與花青素苷積累相關(guān)的BrDFR對冷脅迫表現(xiàn)出明顯響應(yīng)[12]。紫花苜蓿(Medicago sativaL.)[13]、歐洲油菜(Brassica napusL.)[14]和金魚草(Antirrhinum majusL.)[15]中的DFR基因可分別響應(yīng)干旱、鹽和植物激素等非生物脅迫,轉(zhuǎn)錄水平發(fā)生明顯變化。

    牡丹(Paeonia suffruticosaAndr.)是我國的傳統(tǒng)名花,具有極高的觀賞價值和經(jīng)濟(jì)價值。研究表明,PsDFR在牡丹花色形成中起重要作用[16-18],不僅作為轉(zhuǎn)錄因子PsbHLH1 的靶基因參與調(diào)控花青素苷的生物合成,還可能與轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白PsGSTF3互作,與花青素苷的轉(zhuǎn)運(yùn)和積累相關(guān)[19-20]。啟動子是位于結(jié)構(gòu)基因上游的一段DNA 序列,包含控制基因表達(dá)的多種調(diào)控元件,能夠特異性結(jié)合RNA 聚合酶,在基因表達(dá)調(diào)控中起核心作用[21]。開展啟動子研究對于理解基因的時空表達(dá)模式[22]、環(huán)境響應(yīng)機(jī)制[23]等具有重要意義。

    本研究利用染色體步移法從牡丹花瓣中克隆了PsDFR的啟動子序列,對其順式作用元件進(jìn)行了分析,探究了不同長度缺失啟動子的活性及其對ABA、MeJA、光照等不同脅迫處理的響應(yīng),并初步確定了相關(guān)調(diào)控區(qū)域,為進(jìn)一步研究PsDFR啟動子的功能及其在牡丹花色形成中的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    以‘黑花魁’牡丹(P.Suffruticosa‘Hei Hua Kui’)盛花期花瓣為試材。于4 月中下旬,取自中國林業(yè)科學(xué)研究院玉泉山牡丹資源圃,用錫箔紙包好,經(jīng)液氮速凍后,保存于-80 ℃超低溫冰箱。大腸桿菌(Escherichia coli)DH5α、農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)GV3101 購自北京天根生化科技有限公司。煙草(Nicotiana benthamiana)野生型為本實(shí)驗(yàn)室保存,在 23 ℃、16 h/8 h 光暗周期下生長。

    1.2 PsDFR 啟動子的克隆和順式作用元件分析

    參照北京天根生化科技有限公司Plant Genomic DNA Kit 說明書提取‘黑花魁’花瓣基因組DNA。根據(jù)課題組已克隆的PsDFR基因cDNA 序列(Accession No:HQ283448)及前期獲得的牡丹花瓣轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫( Accession No:PRJNA594258), 利用生物學(xué)軟件Primer Premier 5.0 設(shè)計特異引物PsDFR-F/PsDFRR(表1),用于PsDFR基因的gDNA 全長序列擴(kuò)增。根據(jù)測序得到的DNA 序列,在啟動子下游不同位置設(shè)計3 條特異性嵌套反向引物SP1、SP2、SP3(表1),以花瓣基因組DNA 為模板,按照TaKaRa 公司的Genome Walking Kit 說明書,連續(xù)開展3 輪PCR 擴(kuò)增。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,切膠回收清晰條帶,連接到pMD-19T 載體上并轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α 感受態(tài)細(xì)胞,挑取轉(zhuǎn)化平板上的白色菌落進(jìn)行培養(yǎng),通過菌液PCR 和質(zhì)粒酶切鑒定陽性克隆后,委托生工生物公司(上海)測序。

    表1 PsDFR 啟動子克隆和活性分析相關(guān)引物 Table 1 The primers used in cloning and functional analysis of PsDFR promoters

    利用在線軟件PlantCARE(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)和PLACE(https://www.dna.affrc.go.jp/PLACE/?acti on=newplace)分析啟動子序列所包含的調(diào)控元件,并用TBtools 軟件繪制各順式作用元件分布圖;通過TSSP 在線網(wǎng)站(http://linux1.softberry.com/berry.phtml?topic=tssp&group=programs&subgro up=promoter)預(yù)測轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)。

    1.3 不同缺失表達(dá)載體的構(gòu)建

    根據(jù)PsDFR啟動子的全長序列,設(shè)計了5′端分別含有相應(yīng)側(cè)翼序列和酶切位點(diǎn)的擴(kuò)增引物1301-PsDFRp0-F 和1301-PsDFRp0-R(表1),以包含全長啟動子序列的質(zhì)粒為模板,通過同源重組方法將PsDFR啟動子構(gòu)建至pCAMBIA1301-GUS 表達(dá)載體上。根據(jù)PsDFR啟動子順式作用元件的分布情況,設(shè)計了4 條啟動子系列缺失引物,分別命名為PsDFR(1287)-F、PsDFR(980)-F、PsDFR(507)-F 和PsDFR(140)-F(表1)。以上述構(gòu)建好的PsDFR全長啟動子重組質(zhì)粒為模板,以1301-PsDFRp0-R 為共用反向引物,通過同源重組方法,構(gòu)建了不同長度啟動子片段的pCAMBIA1301-GUS 融合表達(dá)載體。最后,對含有 5 個不同長度啟動子片段,即1 687 bp (-1 623至 + 64)、1 287 bp (-1 223 至 + 64)、980 bp(-916 至 + 64)、507 bp(-443 至 + 64 )和140 bp(-76 至 + 64)的重組質(zhì)粒進(jìn)行菌液PCR 和測序驗(yàn)證后,用于啟動子瞬時表達(dá)分析。

    1.4 重組質(zhì)粒農(nóng)桿菌菌液轉(zhuǎn)化煙草的瞬時表達(dá)分析

    將構(gòu)建好的5 個不同長度啟動子融合表達(dá)載體的質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌GV3101 中。菌液PCR 驗(yàn)證后,取2 mL 接種于50 mL LB 液體培養(yǎng)基(含50 mg·L-1Rif 、50 mg·L-1Kan 和25 mg·L-1Gen)中過夜培養(yǎng)至OD600=1.0 左右。離心收集菌體,用懸浮液(含10 mmol·L-1MgCl2、10 mmol·L-1MES 和100 μmol·L-1AS)重懸至OD600約等于0.6,室溫避光靜置3 h 以上后,取2 mL 分別注射到4~5 葉期的煙草葉片中。72 h后取侵染后的葉片放入GUS 染色液進(jìn)行組織化學(xué)染色。70% 乙醇浸泡脫色后拍照記錄。以注射pCAMBIA1301-35S-GUS 空載體的葉片為陽性對照,注射無菌水的葉片為陰性對照。

    1.5 不同處理下PsDFR 啟動子的GUS 活性分析

    為分析PsDFR啟動子對不同激素的響應(yīng),取不同菌液注射2 d 后的煙草植株,對其葉片正反面分別噴灑外源茉莉酸甲酯(MeJA,100 μmol·L-1)和脫落酸(ABA,100 μmol·L-1)直到葉面呈滴水狀態(tài),其中MeJA 噴灑后進(jìn)行套袋密閉處理。以噴灑清水的煙草葉片為對照,每組設(shè)置5 個重復(fù),處理24 h 后取樣(每12 h 追加噴灑一次)。同時,為了解啟動子對光照誘導(dǎo)的響應(yīng),對侵染2 d 后的煙草植株分別進(jìn)行暗培養(yǎng)24 h 后取樣,以及暗培養(yǎng)24 h 后恢復(fù)全光照培養(yǎng)12 h 后再取樣兩種處理。每組設(shè)置5 個重復(fù)。所有樣品經(jīng)液氮速凍后,置于-80 ℃冰箱保存。參照陰霞等[24]的方法,利用熒光分光光度計檢測GUS 酶活。

    運(yùn)用SPSS19.0 的Duncan’s 新復(fù)極差法進(jìn)行顯著性分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 PsDFR 啟動子克隆及順式作用元件分析

    以牡丹基因組DNA 作為模板,利用染色體步移法進(jìn)行3 次巢式PCR 后,擴(kuò)增到1 條長為1 687 bp 的目的片段(圖1)。生物信息學(xué)預(yù)測結(jié)果顯示,PsDFR啟動子含有多個CAAT-box,轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)位于翻譯起始密碼子ATG 上游63 bp處。轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游16 bp 處有一個TATAbox 結(jié)構(gòu)(圖2)。

    圖1 牡丹PsDFR 啟動子的 PCR 擴(kuò)增Fig. 1 PCR production of PsDFR promoter from tree peony

    圖2 PsDFR 基因啟動子序列Fig. 2 The sequence of the PsDFR promoter

    如表2、圖3 所示,PsDFR啟動子除含有核心啟動子元件TATA-box 和CAAT-box 外,還包含參與大多數(shù)植物啟動子轉(zhuǎn)錄起始過程的Inr 元件INRNTPSADB 和大量光調(diào)控元件,有G-Box、Box 4、GA-motif、GATA-motif、TCCC-motif 、TCT-motif、GT1-motif 、I-Box 、SORLIP1AT 和TBOXATGAPB 等,以及多個激素和脅迫響應(yīng)相關(guān)元件。其中,激素響應(yīng)元件包括:ABA 響應(yīng)元件ABRE 和DPBFCOREDCDC3;細(xì)胞分裂素誘導(dǎo)相關(guān)元件ARR1AT;乙烯誘導(dǎo)相關(guān)元件ERE;GA 響應(yīng)元件GARE-motif 和TATCCAOSAMY;茉莉酸甲酯響應(yīng)元件TGACG-motif 等。逆境脅迫響應(yīng)元件包括: 水分脅迫相關(guān)響應(yīng)元件ACGTATERD1 和CBFHV ; 低溫響應(yīng)元件CRTDREHVCBF2 以及受傷和病原體應(yīng)答相關(guān)元件W box 等。值得注意的是,其他作用元件中類黃酮生物合成相關(guān)的調(diào)控元件或轉(zhuǎn)錄因子識別位點(diǎn)MYBCORE 、MYBPLANT 和MYCCONSEN-SUSAT 多達(dá)17 個。 這些元件的存在表明PsDFR在牡丹花青素苷的生物合成中發(fā)揮重要作用,并可能在轉(zhuǎn)錄水平上受到光照、激素(如GA、ABA、乙烯)和非生物脅迫(如干旱、低溫)等多種因素的調(diào)節(jié)。此外,在PsDFR啟動子序列中還發(fā)現(xiàn)了葉肉細(xì)胞特異表達(dá)作用元件 CACTFTPPCA1 、 花粉特異激活元件POLLEN1LELAT52 和GTGANTG10 等控制基因器官特異表達(dá)的作用元件,說明PsDFR在植物體內(nèi)的表達(dá)可能具有一定的器官特異性。

    圖3 PsDFR 啟動子順式作用元件分布圖Fig. 3 Distribution map of the cis-elements of PsDFR promoter

    2.2 啟動子不同缺失片段的表達(dá)載體構(gòu)建

    5 個不同長度的缺失片段(圖4)是根據(jù)PsDFR啟動子順式作用元件預(yù)測結(jié)果,從轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游1 623 bp 的5′端對啟動子序列進(jìn)行逐步刪除,最終獲得:1 687 bp(P0,-1 623 至+ 64)、1 287 bp(P1,-1 223 至 + 64)、980 bp(P2,-916 至 + 64)、507 bp(P3,-443 至+ 64 )和140 bp(P4;-76 至 + 64)。

    圖4 PsDFR 啟動子缺失片段Fig. 4 Schematic diagram of the PsDFR promoter deletions

    利用同源重組的方法將獲得的PsDFR啟動子全長序列P0構(gòu)建到pCAMBIA1301-GUS 表達(dá)載體上,菌液PCR 和測序結(jié)果證明該序列已經(jīng)替換了原有的35S 啟動子并與GUS 基因融合(圖5),重組質(zhì)粒被命名為pCAM-PsDFRp0。以該質(zhì)粒為模板,通過同樣的方法,經(jīng)菌液PCR 和測序驗(yàn)證,獲得了另外4 個不同缺失片段的pCAMBIA1301-GUS 融合表達(dá)載體pCAM-PsDFRp1、pCAMPsDFRp2、pCAM-PsDFRp3 和pCAM-PsDFRp4(圖5)。

    圖5 PsDFR 啟動子及其缺失片段的融合表達(dá)載體驗(yàn)證Fig. 5 Verification of PsDFR promoter and deletion fragment fusion expression vector

    2.3 啟動子缺失片段在煙草葉片中的瞬時表達(dá)及GUS 染色分析

    為研究PsDFR啟動子各區(qū)域的表達(dá)活性,將含有不同缺失片段的融合表達(dá)載體分別轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌后,注射至煙草葉片中進(jìn)行GUS 組織化學(xué)染色分析。結(jié)果由圖6 所示,注射無菌水的陰性對照的葉片沒有染色,而由啟動子CaMV35S 驅(qū)動的陽性對照GUS 染色最明顯。在不同PsDFR啟動子缺失片段的瞬時表達(dá)中,隨著啟動子5′端序列的缺失,染色程度由深到淺變化,染色部位也越來越小。特別是全長啟動子P0在相繼缺失了-1 623 至-1 223(P1)以及-1 223 至-916(P2)之間的區(qū)域后,缺失材料的GUS 染色明顯變淺,最后僅在葉脈周圍觀察到稀疏分散的藍(lán)色斑點(diǎn),表明5 個缺失片段均具有啟動子活性,但活性隨片段的縮短而減弱,-1 623 至-916 之間的區(qū)域?qū)τ谄浠钚跃哂兄匾饔谩?/p>

    圖6 PsDFR 啟動子缺失片段瞬時轉(zhuǎn)化煙草染色結(jié)果Fig. 6 Detection of transient expression of different PsDFR promoter deletion regions in tobacco leaves

    2.4 光照和激素對啟動子不同缺失片段活性的影響

    對不同農(nóng)桿菌侵染48 h 后的煙草分別進(jìn)行ABA、MeJA、黑暗和光照處理后,檢測葉片GUS活性,結(jié)果如圖7 所示,對照中,GUS 活性隨啟動子缺失片段的縮短而不斷降低,這與染色結(jié)果(圖6)相一致。黑暗處理后,所有啟動子缺失片段誘導(dǎo)的GUS 酶活性均受到不同程度抑制,恢復(fù)光照后,除P4外其余啟動子活性均有顯著升高(p<0.05);ABA 處理明顯抑制了P0和P1下游GUS 的表達(dá)活性,與對照相比,分別下降了51.85%和56.12%,但隨著5′端序列的逐漸缺失,ABA 對啟動子P2的抑制作用明顯降低,并反而促進(jìn)了P3的啟動子活性,約達(dá)對照的1.28倍;MeJA 明顯抑制了不同啟動子片段誘導(dǎo)的GUS 活性,與對照相比,均下降了40%以上。

    圖7 光照和激素誘導(dǎo)下PsDFR 啟動子缺失片段驅(qū)動的GUS 活性分析Fig. 7 Analysis of the GUS activity driven by PsDFR promoter deletion regions in response to light and hormone treatments

    3 討論

    本研究利用染色體步移法從牡丹花瓣中分離到PsDFR基因長1 687 bp 的啟動子序列。該序列位于轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游的-1 623 bp 處,除了包含調(diào)控轉(zhuǎn)錄起始精確度和效率的核心啟動子元件外,還具有光響應(yīng)元件、激素和逆境脅迫相關(guān)元件以及組織特異性表達(dá)相關(guān)元件等。

    前期研究發(fā)現(xiàn),隨著花朵的著色,PsDFR基因的表達(dá)量與花青素苷的含量呈正相關(guān),并且在花瓣中特異高表達(dá),在葉片、萼片、雄蕊和心皮中的表達(dá)水平很低[16,25]。然而,除一些花粉特異激活元件外,在PsDFR啟動子中未發(fā)現(xiàn)其他花器官相關(guān)特異元件。Roh 等[26]通過啟動子缺失發(fā)現(xiàn),花瓣特異性啟動子PISTILLATA(BnPI)中的光響應(yīng)元件G-box 可能與花瓣特異性表達(dá)有關(guān)。Imai 等[27]發(fā)現(xiàn)在菊花(Dendranthema morifolium(Ramat.)Tzvel.)CmCCD4a的ATG 上游存在一些與花瓣特異性表達(dá)相關(guān)的未知順式元件。在非洲菊中,不同花器官間的著色差異與DFR啟動子的結(jié)構(gòu)無關(guān),而是由調(diào)控其表達(dá)的上游轉(zhuǎn)錄因子啟動子上的空間特異性順式作用元件調(diào)控的[28]。因此,為了明確哪些順式元件在PsDFR的花瓣特異性高表達(dá)中起重要作用,還需對其啟動子或與其互作的轉(zhuǎn)錄因子啟動子進(jìn)行更全面、細(xì)致的片段缺失分析。

    在啟動子缺失片段的GUS 染色分析中,發(fā)現(xiàn)不同區(qū)域的PsDFR啟動子表達(dá)活性具有明顯差異。全長啟動子片段(P0)活性最高,但隨著5′端序列的逐步缺失,活性不斷降低。特別是刪除-1 623 至-916 之間707 bp 的片段后,啟動子活性迅速下降,推測該片段中可能含有與啟動子活性相關(guān)的核心元件。根據(jù)順式元件分析結(jié)果,發(fā)現(xiàn)該片段包含2 個Inr 元件(INRNTPSADB)。Nakamura等[29]證實(shí)該元件可在缺乏TATA-box 的情況下對轉(zhuǎn)錄激活起關(guān)鍵作用。在PsDFR啟動子中,Inr 元件是否在TATA-box 存在的情況下也具有激活轉(zhuǎn)錄起始的作用,還有待進(jìn)一步研究。

    光照是影響植物合成花青素苷的重要環(huán)境因子之一,不同光質(zhì)、光照強(qiáng)度和光周期信號可通過促進(jìn)或抑制類黃酮合成相關(guān)基因的表達(dá),調(diào)控花青素苷的合成和積累。Hartmann 等[30]在擬南芥(Arabidopsis thaliana(L.) Heynh.)CHS啟動子區(qū)域發(fā)現(xiàn)了一個由G-Box 核心元件(ACGT)和MYB 識別元件(ACCWACCNN)組成的光響應(yīng)單元LRU。小麥(Triticum aestivumL.)TaDFRB在花青素苷積累的部位高表達(dá),并受光誘導(dǎo)明顯上調(diào),也與其啟動子中包含這兩個元件有關(guān)[31]。本研究中,PsDFR啟動子也含有該元件組合(GBox 和MYBPZM),并同時具有Box4、GAmotif、TCT-motif、GT1-motif、I-Box 等多個光響應(yīng)元件。光處理后,不同啟動子缺失片段對光照變化均有明顯響應(yīng),即在黑暗條件下啟動子活性降低,恢復(fù)光照后啟動子活性升高,這與Gollop等[32]對葡萄(Vitis viniferaL.)DFR啟動子的研究結(jié)果一致,推測這些元件在牡丹花青素苷生物合成對光照的響應(yīng)中起重要作用。

    除光照外,DFR在表達(dá)過程中還受ABA、MeJA 等多種激素影響。如ABA 可上調(diào)草莓(Fragaria ananassaDuch.)[33]和葡萄[34]果實(shí)中DFR的表達(dá)水平,進(jìn)而促進(jìn)花青素苷的積累;紅肉蘋果(Malus sieversiif.niedzwetzkyana(Dieck) Langenf.)MdDFR的轉(zhuǎn)錄受MeJA 正調(diào)控,但受ABA 負(fù)調(diào)控[35]。目前,關(guān)于激素如何影響牡丹DFR的表達(dá)以及DFR的啟動子活性如何響應(yīng)激素處理的報道很少。在PsDFR啟動子中,發(fā)現(xiàn)了典型的ABA 響應(yīng)元件ABRE 和DPBFCOREDCDC3 以及MeJA 響應(yīng)元件TGACGmotif 和T/GBOXATPIN2 。ABA 處理抑制了P0和P1的啟動子活性,但對啟動子缺失片段P2的抑制作用明顯降低,而P3的啟動子活性顯著高于對照,推測這與啟動子-443 至-76 bp 序列區(qū)段存在ABA 應(yīng)答相關(guān)元件有關(guān),且-1 623 至-916 bp 之間可能存在抑制ABA 響應(yīng)的未知元件。在MeJA 方面,盡管MeJA 處理通常被認(rèn)為可促進(jìn)花青素苷的積累[36],但在擬南芥、甘薯(Ipomoea batatasLam.)等植物中發(fā)現(xiàn),受糖信號、品種及組織特異性或處理濃度的影響,MeJA 處理也會對DFR基因的表達(dá)及花青素苷合成起抑制作用[37-38]。本研究中,MeJA 處理后各缺失片段的啟動子活性均有明顯下降,推測100 μmol·L-1MeJA 在‘黑花魁’牡丹花青素苷的合成中可能起負(fù)調(diào)控作用。

    4 結(jié)論

    DFR 是植物花青素苷生物合成下游階段的關(guān)鍵酶。本研究通過染色體步移法分離了牡丹PsDFR基因長1 687 bp 的啟動子序列。順式作用元件分析結(jié)果表明PsDFR的表達(dá)可能受光信號、激素和脅迫等多種信號的共同調(diào)節(jié)。通過對瞬時轉(zhuǎn)化煙草葉片的GUS 組織化學(xué)染色和酶活性進(jìn)行分析,明確了PsDFR啟動子活性受光的正調(diào)控以及MeJA 的負(fù)調(diào)控;-1 623 至-916 bp 間的區(qū)域?qū)τ趩幼踊钚跃哂兄匾饔茫?443 至-76 bp 是響應(yīng)ABA 處理的核心區(qū)域。上述結(jié)果為進(jìn)一步揭示PsDFR響應(yīng)不同環(huán)境信號參與牡丹花色形成的調(diào)控機(jī)制提供參考。

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