鐘文娟,石盛佳,陳四維,戢沛城,龔一耘,牟方生
(四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院經(jīng)濟(jì)作物育種栽培研究所,四川 成都 610300)
菜用大豆(Glycine max(L.)Merr.)亦稱鮮食大豆、毛豆,鼓粒后期籽粒尚未完全飽滿,以幼嫩莢果和鮮籽粒作為蔬菜食用的一類專用大豆[1],富含蛋白質(zhì)、碳水化合物、膳食纖維、維生素和多種礦物元素,口味獨(dú)特,深受消費(fèi)者青睞,是一種具有營養(yǎng)和保健功能的優(yōu)質(zhì)食品[2]。
維生素C(VC)又名抗壞血酸,廣泛存在于新鮮果蔬中,是維持人體正常生理代謝的一種重要化合物[3],但人體自身不能合成VC,需要從食物中攝取。菜用大豆含有豐富的VC,是其重要的營養(yǎng)品質(zhì)之一[2]。已知VC 含量測定的主要方法有熒光法[1]、紫外-可見分光光度法[4]、2,6-二氯靛酚鈉鹽滴定法[5-7]、2,4-二硝基苯肼比較法[8-9]、高效液相色譜法(High performance liquid chromatography,HPLC)4 種[10-11]。陳華濤等[1]采用GB/T 5009.86—2003《蔬菜、水果及其制品中總抗壞血酸的測定(熒光法)》測定出9個菜用大豆品種籽粒中VC平均含量為16.60~27.67 mg/100 mg。徐兆生等[7]采用2,6-二氯靛酚鈉鹽滴定法測定了55份菜用大豆VC含量,發(fā)現(xiàn)鮮籽粒中VC含量為14.70~40.80 mg/100 g,平均值為27.56 mg/100 g,變異系數(shù)為21.03%。
目前尚未見用其他方法測定菜用大豆VC 含量的研究報道。同時,菜用大豆鮮籽粒中蛋白質(zhì)和淀粉含量高[7],采用2,4-二硝基苯肼比較法和熒光法測定時干擾因素較其他果蔬多。高效液相色譜法相對于其他方法具有高效、簡單、準(zhǔn)確性好、靈敏度高等特點(diǎn),且不受樣品顏色的影響,廣泛用于果蔬中VC含量的測定[12-15],但是目前尚未見用高效液相色譜法檢測菜用大豆鮮籽粒VC含量的報道。因此,本研究采用HPLC 對菜用大豆鮮籽粒VC 含量進(jìn)行檢測,同時優(yōu)化VC提取條件和方法,建立了菜用大豆鮮籽粒VC提取的前處理方法。采用HPLC測定菜用大豆鮮籽粒VC 方法具有簡便、穩(wěn)定和高效的特點(diǎn),為測定菜用大豆鮮籽粒中VC含量提供理論參考,并為高VC菜用大豆品種的選育提供技術(shù)支撐。
1.1.1 材料與試劑
菜用大豆樣品于2021 年6 月采摘于四川省成都市青白江區(qū)試驗基地,采摘后于-20 ℃條件下保存,其他信息詳見表1。L(+)抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)品(純度為99.23%),德國Dr.Ehrenstorfer GmbH 公司;甲醇(色譜純),美國Fisher 公司;偏磷酸(分析純),天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;超純水,實(shí)驗室自制。
表1 供試菜用大豆信息Table 1 Test vegetable soybean information
1.1.2 儀器與設(shè)備
Agilent-1200 型高效液相色譜儀(帶紫外檢測器和自動進(jìn)樣器),美國安捷倫公司;AUW220D 型電子分析天平(精確度0.000 01 g),日本島津公司;T-203型電子分析天平(精確度0.001 g),美國丹佛儀器公司;AvantiJ-E型大容量高速冷凍離心機(jī),貝克曼庫爾特有限公司;JYL-C022E 型料理機(jī),九陽股份有限公司;ECO-Q15 型純水機(jī),上海和泰儀器有限公司;SCIENTZ-IIF型超聲萃取儀,寧波新芝生物科技股份有限公司;GM-0.33Ⅱ型真空泵,天津市津騰實(shí)驗設(shè)備有限公司。
1.2.1 VC標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
準(zhǔn)確稱取0.025 00 g L(+)抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)品,采用30 g/L偏磷酸溶液將其溶解并定容至25 mL,得到質(zhì)量濃度為1 000μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液。分別吸取標(biāo)準(zhǔn)儲備液0.05、0.10、0.20、0.40、0.70、1.00 mL 于棕色容量瓶中,用30 g/L偏磷酸溶液定容至25 mL,得到質(zhì)量濃度分別為2.0、4.0、8.0、16.0、28.0、40.0μg/mL 的VC標(biāo)準(zhǔn)溶液。
1.2.2 樣品前處理與制備
取菜用大豆鮮莢若干,剝殼后將鮮籽粒置于冰上。稱取鮮籽粒20.000 g(精確至0.001 g),置于制漿杯中,加入30 g/L 偏磷酸溶液40 mL,用料理機(jī)處理90 s 將其制成勻漿,用置于冰上的100 mL 燒杯收集勻漿。稱取15.000~20.000 g(精確至0.001 g)勻漿,置于離心管中,再向離心管中加入30 g/L 偏磷酸溶液20 mL。
將裝有勻漿的離心管放入超聲萃取儀低溫(4 ℃)提取20 min,完成后將其置于離心機(jī)中以8 000 r/min的轉(zhuǎn)速在4 ℃下離心10 min。隨后將上清液轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶中,用30 g/L偏磷酸溶液定容并搖勻,獲得樣液。用針式注射器吸取部分樣液,通過0.45μm濾膜過濾注入樣品瓶中,4 ℃保存待上機(jī)分析。
1.2.3 色譜條件
色譜柱為Agilent Eclipse XDB-C18柱(4.6 mm×250 mm×5μm),流動相為1 g/L偏磷酸溶液∶甲醇=96∶4(V/V),流速0.8 mL/min,檢測波長243 nm,柱溫25 ℃,進(jìn)樣量20.0μL。
1.2.4 提取溶劑種類和濃度的選擇
VC具有較強(qiáng)的還原性,易受空氣、熱、光等因素影響,但在酸性溶液中有良好的穩(wěn)定性。菜用大豆籽粒中蛋白質(zhì)和淀粉含量多,為防止樣品VC的氧化分解,以及將VC與其他物質(zhì)有效分離,在李國秀等[12]研究的基礎(chǔ)上,并參考GB 5009.86—2016[16]中還原性抗壞血酸的浸取劑,選用偏磷酸溶液作為提取劑。分別用10、20、30、40、50 g/L偏磷酸溶液提取同一菜用大豆樣品VC,同時溶解標(biāo)準(zhǔn)樣品,測定出不同質(zhì)量濃度溶劑制備的標(biāo)準(zhǔn)樣品及樣品所對應(yīng)的保留時間和峰面積,依照外標(biāo)對照法計算VC含量和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。
1.2.5 流動相的選擇
流動相需考慮使VC 穩(wěn)定所需的酸性環(huán)境以及色譜柱的pH適用范圍,選擇1 g/L偏磷酸溶液作為流動相的主體,再配以適當(dāng)比例的甲醇作為流動相。
1.2.6 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
將VC 標(biāo)準(zhǔn)溶液用0.45 μm 濾膜過濾到樣品瓶中,按“1.2.3”中的色譜條件進(jìn)行分析,測定其峰面積,以VC標(biāo)準(zhǔn)溶液質(zhì)量濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),峰面積(mAU·s)為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.7 精密度試驗設(shè)計
將菜用大豆樣品‘川鮮豆2 號’按“1.2.2”所述方法制得樣品溶液后,按照“1.2.3”中的色譜條件連續(xù)進(jìn)樣測定6次,計算樣品中VC含量和RSD值。
1.2.8 穩(wěn)定性試驗設(shè)計
將菜用大豆樣品‘81-5’按照“1.2.2”所述方法制得樣品溶液后,于4 ℃條件下靜置8 h,按照“1.2.3”中的色譜條件分別于0、1、2、3、4、5、6、7、8 h進(jìn)樣分析,計算樣品中VC含量和RSD值。
1.2.9 重復(fù)性試驗設(shè)計
將菜用大豆樣品‘川鮮豆1 號’按“1.2.2”所述方法平行制備6份供試樣品溶液,按照“1.2.3”中的色譜條件分別進(jìn)樣分析,計算樣品中VC含量和RSD值。
1.2.10 回收率試驗設(shè)計
精密稱取已知VC 含量的菜用大豆樣品‘81-5’,加入VC標(biāo)準(zhǔn)溶液適量,按照“1.2.2”所述方法制備6份供試樣品溶液和“1.2.3”中的色譜條件分別進(jìn)樣分析。
1.2.11 數(shù)據(jù)處理
所有試驗數(shù)據(jù)均用Excel 2007軟件計算處理。
由表2可見,以質(zhì)量濃度為30、40、50 g/L 的偏磷酸溶液作為提取溶劑,檢測到的VC含量平均值無顯著性差異,因此選擇30 g/L偏磷酸溶液作為浸取劑提取菜用大豆鮮籽粒中VC。
表2 提取劑質(zhì)量濃度選擇試驗結(jié)果Table 2 Selection test results of extractant concentration
以1 g/L 偏磷酸∶甲醇=96∶4(V/V)為流動相時,VC 與鄰近雜質(zhì)峰能夠達(dá)到基線分離,液相色譜峰尖銳且樣品分析時間短,因此,本研究以1 g/L 偏磷酸∶甲醇=96∶4(V/V)為流動相。圖1 為VC 標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖,圖2 為菜用大豆樣品溶液色譜圖。由圖1 和圖2可見,VC標(biāo)準(zhǔn)樣品和菜用大豆樣品中VC的保留時間分別為4.327 min和4.329 min。
圖1 VC標(biāo)準(zhǔn)溶液高效液相色譜圖Fig.1 Chromatogram of vitamin C standard solution by HPLC
圖2 菜用大豆樣品溶液高效液相色譜圖Fig.2 Chromatogram of vegetable soybean sample solution by HPLC
如圖3 所示,VC 標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為y=80.751x-6.409 4,R2=1.000,表明VC 質(zhì)量濃度范圍為2~40μg/mL時,其峰面積與質(zhì)量濃度的線性關(guān)系良好。
圖3 VC標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.3 Standard curve of VC
由表3可見:RSD值為0.13%,說明本試驗方法測定菜用大豆鮮籽粒VC含量的精密度良好。
表3 精密度試驗結(jié)果Table 3 Precision test results
表4 顯示:8 h 時樣品VC 含量為23.34 mg/100 g,RSD 值為0.30%,說明供試樣品溶液在4 ℃低溫下可保持8 h穩(wěn)定。
表4 穩(wěn)定性試驗結(jié)果Table 4 Stability test results
由表5可見:RSD值為1.03%,說明本試驗方法測定菜用大豆鮮籽粒VC含量的重復(fù)性良好。
表5 重復(fù)性試驗結(jié)果Table 5 Repeatability test results
由表6可見:平均加標(biāo)回收率為108.14%,6次測定結(jié)果的RSD 值為1.70%,表明本試驗方法準(zhǔn)確度良好。
表6 回收率試驗結(jié)果Table 6 Recovery rate test results
將12 個菜用大豆樣品按照“1.2.2”所述方法和“1.2.3”中的色譜條件,分別制備3份供試溶液進(jìn)樣分析,依照外標(biāo)對照法計算VC含量,結(jié)果見表7。由表7 可見,12 個菜用大豆品種鮮籽粒中VC 平均含量范圍為19.63~27.59 mg/100 g。與陳華濤等[1]采用熒光法測定9 個菜用大豆品種籽粒中VC 的平均含量(16.60~27.67 mg/100 g)范圍較一致。表明此方法能有效檢測出菜用大豆鮮籽粒中的VC含量。
表7 不同菜用大豆品種中VC含量測定結(jié)果Table 7 Determination results of VC content in different vegetable soybean varieties 單位:mg/100 g
菜用大豆鮮籽粒質(zhì)地較硬且含有豐富的蛋白質(zhì)和淀粉[10],將樣品進(jìn)行勻漿處理比較困難,不易得到較高質(zhì)量的勻漿樣品。本研究優(yōu)化的菜用大豆鮮籽粒前處理方法能有效地將鮮籽粒進(jìn)行勻漿處理,得到品質(zhì)較好的鮮籽粒勻漿,提高了樣品中VC 萃取率,并配合低溫提取減少鮮籽粒中VC 的氧化,盡量減少測定樣品中VC 含量的損耗,降低試驗誤差,是一種有效的前處理方法。同時,該樣品前處理方法也可為菜用大豆鮮籽粒中其他營養(yǎng)成分檢測提供參考。
菜用大豆鮮籽粒中的VC 含量沒有獼猴桃樣品中的含量高[12],采用提取試劑10 g/L偏磷酸濃度試驗效果不理想,同時采用GB 5009.86—2016[16]中提供的參考質(zhì)量濃度20 g/L 檢測時VC 也沒有目標(biāo)峰,因此對菜用大豆鮮籽粒VC 提取的最適偏磷酸質(zhì)量濃度進(jìn)行了探究。試驗結(jié)果表明:不同提取劑質(zhì)量濃度對檢測結(jié)果影響較大,30 g/L偏磷酸適宜用于菜用大豆鮮籽粒VC 的提取,因此建議在檢測不同作物VC含量時需要對相應(yīng)的提取試劑質(zhì)量濃度進(jìn)行篩選,以獲得更加精準(zhǔn)的試驗數(shù)據(jù)。
本研究采用高效液相色譜法測定菜用大豆鮮籽粒中VC含量,以30 g/L偏磷酸溶液作為提取溶劑,低溫提取菜用大豆鮮籽粒中VC,操作簡便,可避免樣品中VC 被氧化和其他基質(zhì)成分的干擾。從穩(wěn)定性試驗數(shù)據(jù)可以看出,8 h 內(nèi)VC 含量變化不顯著,能夠保證樣品和對照品溶液在測定的時間內(nèi)穩(wěn)定。供試樣品色譜峰對稱性良好,既能達(dá)到基線分離的要求,又有適宜的保留時間,測定結(jié)果穩(wěn)定準(zhǔn)確,且靈敏度高。綜上所述,該方法適用于測定菜用大豆鮮籽粒中VC含量。