于沿澤 劉長樂
摘要:? 保護(hù)生理學(xué)是一門新興的多學(xué)科交叉學(xué)科,幫助了解瀕危物種因環(huán)境變化而產(chǎn)生的生理反應(yīng),從而尋找可能的干預(yù)方案,使其免于滅絕。本文綜述了瀕危動物保護(hù)中涉及的各種非侵入性激素監(jiān)測方法和內(nèi)分泌研究。非侵入性激素監(jiān)測方法已成功地用于了解基本生殖生物學(xué),妊娠診斷和廣泛的圈養(yǎng)動物和野生動物的福利,這項技術(shù)將直接或間接地有助于保護(hù)瀕危動物。本文綜述了無損傷激素監(jiān)測在瀕危物種有效管理和保護(hù)中的應(yīng)用。
關(guān)鍵詞:? 無損傷監(jiān)測;? 類固醇激素;? 瀕危物種保護(hù)
中圖分類號:? ?S 567. 19? ? ? ? ? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)識碼:? ?A? ? ? ? ? ? ? ? 文章編號:1001 - 9499(2023)06 - 0052 - 02
類固醇激素是一類脂溶性激素,它們在結(jié)構(gòu)上都是環(huán)戊烷多氫菲衍生物。脊椎動物的類固醇激素可分為腎上腺皮質(zhì)激素和性激素兩類。保護(hù)生理學(xué)是一門新興的學(xué)科,研究動物因環(huán)境變化而產(chǎn)生的生理反應(yīng)。它是瀕危物種保護(hù)的一個重要領(lǐng)域,因為它有助于了解內(nèi)分泌對環(huán)境變化、營養(yǎng)、代謝等生理反應(yīng)。近幾十年來,內(nèi)分泌監(jiān)測已成為瀕危物種保護(hù)的重要手段。野生動物的類固醇激素主要通過糞便、尿液、羽毛和毛發(fā)等生物樣本測量,這些生物樣本主要來源于大型貓科動物[ 1 ]、靈長類動物[ 2 ]、有蹄類動物[ 3 ]、亞洲象[ 4 ]、鳥類[ 5 ]、兩棲動物[ 6 ]、龜類動物[ 7 ]、犀牛[ 8 ]和鯨魚[ 9 ]。本文綜述了野生動物內(nèi)分泌研究中圈養(yǎng)及自由放養(yǎng)的動物生殖生理和應(yīng)激生理的非侵入性評價方法。為了解圈養(yǎng)動物和野生動物的生殖生物學(xué)和應(yīng)激生理學(xué)提供有價值的信息,直接或間接地為保護(hù)瀕危動物做出貢獻(xiàn)。
1 無損傷取樣
了解內(nèi)分泌反應(yīng)對于圈養(yǎng)和野生動物種群制定成功的繁殖計劃和管理至關(guān)重要。傳統(tǒng)上,類固醇激素是從血液中提取并定量[ 10 ],但在野生動物中,反復(fù)取樣血液被認(rèn)為具有侵入性和挑戰(zhàn)性。主要利用糞便、尿液、唾液、毛發(fā)等其他生物樣本中評估內(nèi)分泌狀況。非侵入性激素評估方法可在樣品采集時極少與動物接觸,在盡可能不傷害動物的情況下進(jìn)行長期監(jiān)測。
2 類固醇代謝物—糞便的收集、儲存
新鮮的糞便樣本在排便后立即收集并立即冷凍,這樣可以避免或最大限度的減少樣本中類固醇和其他生化過程的細(xì)菌降解。
3 免疫分析和驗證
3. 1 高效液相色譜法(HPLC)
高效液相色譜法(HPLC)已被用于鑒定、分離和定量非侵入性樣品中的類固醇代謝物[ 11 ]。
3. 2 酶免疫分析法
免疫測定法的選擇和發(fā)展主要取決于存在于糞便或尿液,并建議使用群體特異性抗體來測量類固醇激素[ 12 ]。放射免疫測定(RIAs)和酶免疫測定(EIA)是常用的免疫測定法,用于準(zhǔn)確和精確地測量類固醇激素。RIA因其準(zhǔn)確度高而成為測定類固醇激素代謝物的首選方法。然而,由于RIA需要危險的放射性物質(zhì)、昂貴的設(shè)備、較短的保質(zhì)期和放射性廢物處理設(shè)施,因此,EIA越來越受歡迎。另一方面,由于其成本效益,環(huán)境影響評估更具優(yōu)勢,并且由于不含放射性同位素而成為首選。在過去的二十年中,已經(jīng)開發(fā)了廣泛的環(huán)境影響評價,用于評估和監(jiān)測各種動物的生殖和應(yīng)激生理,使用糞便類固醇代謝物。然而,EIA必須驗證其抗體的交叉反應(yīng)性和敏感性、平行性、精密度/準(zhǔn)確度、回收率、測定間和測定內(nèi)變異系數(shù)[ 13 ]。
4 圈養(yǎng)動物和野生動物的應(yīng)激評估
生理應(yīng)激的非侵入性測量在評估哺乳動物生理應(yīng)激源、人為干擾等神經(jīng)內(nèi)分泌反應(yīng)方面具有巨大的潛力。Bhattacharjee等人報道[ 13 ],放牧、人類和車輛交通等人為干擾顯著增加了沙里斯卡老虎保護(hù)區(qū)重新引入老虎的糞便糖皮質(zhì)激素代謝物濃度。這項研究進(jìn)一步揭示了人為干擾直接影響了重新引入老虎繁殖潛力。最近對圈養(yǎng)亞洲象的類似研究表明,縱向監(jiān)測糞便激素有助于更好地管理和飼養(yǎng)動物。此外,該研究還表明,大象參與公共游行或節(jié)日會顯著提高壓力水平,直接影響到雌性的正常發(fā)情周期[ 4 ]。糞便糖皮質(zhì)激素被用作生物下丘腦-垂體激活指示器,改變內(nèi)分泌反應(yīng)腎上腺軸。包括心理在內(nèi)的多種因素的反應(yīng)壓力源(人為干擾,旅游,環(huán)境影響,社會生態(tài)壓力等。
5 小 結(jié)
非侵入式激素監(jiān)測方法可用于解決圈養(yǎng)和散養(yǎng)瀕危動物保護(hù)中存在的一系列問題。該技術(shù)已廣泛應(yīng)用于從魚類到哺乳動物的多物種保護(hù)工作中。非侵入式內(nèi)分泌監(jiān)測不可避免地成為動物保護(hù)福利評估的潛在保護(hù)工具。無創(chuàng)內(nèi)分泌學(xué)是保護(hù)生物學(xué)中一門新興的前沿學(xué)科,它主要為了解圈養(yǎng)動物和野生動物的生殖生物學(xué)和應(yīng)激生理學(xué)提供有價值的信息,可以直接或間接地為保護(hù)瀕危動物做出貢獻(xiàn)。
致謝:感謝穆棱林業(yè)局和平林場工作人員在采樣期間對本研究的支持和幫助。感謝黑龍江省生態(tài)所劉延坤、刁云飛研究員對本研究的支持,特此致謝。
參考文獻(xiàn)
[1] Dehnhard M, Kumar V, Chandrasekhar M, et al. Non-invasive pregnancy diagnosis in big cats using the PGFM (13, 14-dihydro- 15-keto-PGF 2α) Assay. PLoS ONE,2015,10(12):201-220.
[2] Hidayatik N, Agil M, Heistermann M, et al.? ?Assessing female reproductive status of spectral tarsier (Tarsius tarsier) using fecalsteroid hormone metabolite analysis. AMERICAN JOURNAL OFPRIMATOLOGY,2018, 80 (11):22917.
[3] Creel S, Winnie JA & Christianson D. Glucocorticoid stresshormones and the effect of predation risk on elk reproduction. Proc Natl Acad Sci, 2009,106(30): 12388-12393.
[4] Kumar V, Reddy VP, Kokkiligadda A, et al.? Non-invasive? assessment of reproductive status and stress in captive Asian elephants in three south Indian zoos. Gen Comp Endocrinol,2014, 201:37-40.
[5] Goymann W. Noninvasive monitoring of hormones in bird droppings: physiological validation, sampling, extraction, sex differences, and the influence of diet on hormone metabolite levels. Ann N Y Acad Sci,2005,1046:? 35-53.
[6] Narayan EJ.Non-invasive reproductive and stress endocrinology in amphibian conservation physiology. Conserv Physiol, 2013,1(1):593-621.
[7] Umapathy G, Deepak V, Kumar V, et al.? Endocrine profiling of endangered tropical chelonians using noninvasive fecal steroid analyses. Chelonian Conserv Biol, 2015,14 (1): 108-115.
[8] Schwarzenberger F, Mostl E, Palme R,et al. Faecal steroid analysis for non-invasive monitoring of reproductive status in farm, wild and zoo animals. Anim Reprod Sci,1996, 42: 515-526.
[9] Valenzuela-Molina M, Atkinson S, Mashburn K,et al.? Fecal steroid hormones reveal reproductive state in female blue whales sampled in the Gulf of California, Mexico. Gen Comp Endocrinol,2018, 261:127-135.
[10] Rasmussen LE, Buss IO, Hess DL, et al. Testosterone and dihyd-? rotestosterone concentrations in elephant serum and temporal gland secretions. Biol Reprod,1984, 30(2):352-362.
[11] Budithi NRB, Kumar V, Yalla SK, et al. Non-invasive moni-? ?toring of reproductive and stress hormones in the endangered red panda (Ailurus fulgens fulgens). Anim Reprod Sci,2016,172:173-181.
[12] Palme R, Rettenbacher S, Touma C, et al. Stress hormones in mammals and birds: comparative aspects regarding metabolism, excretion, and noninvasive measurement in fecal samples. Ann N Y Acad Sci,2005, 1040:162-171.
[13] Brown J, Walker S, Steinman K. Endocrine manual for the reproductive assessment of domestic and non-domestic species. Endocrine Research Laboratory, Department of Reproductive Sciences, Conservation and Research Center, National Zoological Park, Smithsonian Institution, Handbook, 2004,20(1)197-212.
[14] Bhattacharjee S, Kumar V, Chandrasekhar M, et al. Glucocorticoid stress responses of reintroduced tigers in relation to anthropo-? ? ? genic disturbance in Sariska Tiger Reserve in India. PLoS ONE, 2015,10 (6):293-320.
[15] Creel S, Christianson D, Schuette P.Glucocorticoid stress responses of lions in relationship to group composition, human land use, and proximity to people. Conserv Physiol,2013,1(1):456-480.