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    QuEChERS-GC-MS/MS 法快速測(cè)定地黃中12 種多環(huán)芳烴

    2023-11-23 10:58:40何成軍鐘慈平楊超林余曉琴吳平谷
    中成藥 2023年11期
    關(guān)鍵詞:中多環(huán)小柱正己烷

    何成軍,王 穎,鐘慈平,付 苓,楊超林,余曉琴*,吳平谷

    (1.四川省食品檢驗(yàn)研究院,四川 成都 611731; 2.四川省藥品檢驗(yàn)研究院,四川 成都 611731; 3.浙江省疾病預(yù)防控制中心,浙江 杭州 310051)

    多環(huán)芳烴(PAHs) 是指分子中含有2 個(gè)或2 個(gè)以上苯環(huán)以稠環(huán)形式排列的碳?xì)浠衔?,主要來源于礦物燃料及其他有機(jī)物的不完全燃燒和對(duì)廢棄物的不妥當(dāng)處置,是最早發(fā)現(xiàn)的具有致癌、致畸、致突變的環(huán)境污染物之一[1-3]。按照結(jié)構(gòu)和理化性質(zhì)可以分為有2~3 個(gè)苯環(huán)的低分子量多環(huán)芳烴和有4~7 個(gè)苯環(huán)的高分子量多環(huán)芳烴2 類。隨著人類對(duì)化石產(chǎn)品開采和使用量的增加,大量的多環(huán)芳烴被排入環(huán)境中。多環(huán)芳烴污染問題也日益受到關(guān)注,已經(jīng)被世界許多國(guó)家列為有機(jī)污染物的研究重點(diǎn)[4]。目前多環(huán)芳烴的檢測(cè)方法主要有液相色譜法(HPLC)[5-6]、氣相色譜法(GC)[7-8]、超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法 (UPLC-MS/MS)[9-10]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)[11-13]等。

    生地黃為玄參科植物地黃RehmanniaglutinosaLibosch.的干燥塊根,始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,是著名的“四大懷藥” 之一,至今已有千年的應(yīng)用歷史。將生地黃酒制后再干燥即得熟地黃。生地黃和熟地黃均具有滋陰補(bǔ)腎的功效,凡陰虛血虛腎虛者食之,頗有益處,被大量應(yīng)用于臨床[14-16]。關(guān)于多環(huán)芳烴污染的研究大多集中在環(huán)境和食品等方面。近年來,對(duì)于中藥中多環(huán)芳烴的污染也開始受到關(guān)注。但是目前關(guān)于地黃中多環(huán)芳烴檢測(cè)的研究很少,特別是能夠快速、準(zhǔn)確的同時(shí)測(cè)定藥材中多種多環(huán)芳烴的檢測(cè)技術(shù)更是鮮見報(bào)道。

    QuEChERS 技術(shù)是一種適用于復(fù)雜基質(zhì)樣品中多種污染物分析的樣品制備和凈化技術(shù),由于具有回收率高、測(cè)定結(jié)果準(zhǔn)確、高通量以及低溶劑使用量等優(yōu)點(diǎn),使得該方法自發(fā)布以來,獲得了美國(guó)分析化學(xué)家協(xié)會(huì)、歐盟等多個(gè)國(guó)際機(jī)構(gòu)認(rèn)可,廣泛應(yīng)用于食品及藥品中各種污染物的分析研究[17]。

    為研究地黃中多環(huán)芳烴的風(fēng)險(xiǎn)暴露情況,本文以地黃為基質(zhì),采用QuEChERS 前處理,聯(lián)合氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS) 對(duì)地黃中12 種多環(huán)芳烴殘留量進(jìn)行了含量測(cè)定研究,以期為地黃的用藥安全風(fēng)險(xiǎn)提供一定的借鑒與參考。

    1 材料

    1.1 儀器 TQ 8050 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(日本Shimadzu公司); DB-5 MS 石英毛細(xì)管柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm) (美國(guó)Agilent 公司); Heraeus Multifuge X3R 高速冷凍臺(tái)式離心機(jī)、Barnstead Gen Pure 超純水機(jī)(美國(guó)Thermo Fisher Scientific 公司); XSE 105 分析天平 (瑞士Mettler Toledo 公司); T25 Digital 渦旋振蕩儀(德國(guó)IKA 公司);KQ-500DE 超聲儀(江蘇昆山超聲儀器公司); N1 全自動(dòng)氮吹濃縮儀(上海屹堯儀器科技發(fā)展有限公司)。

    1.2 試劑與藥物 12 種多環(huán)芳烴(PAHs) 混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液(單個(gè)化合物質(zhì)量濃度均為100 μg/mL,批號(hào)S059017),包括菲(Phe)、蒽(Ant)、熒蒽(Flua)、芘(Pyr)、苯并[a] 蒽(BaA)、艸屈 (Chr)、苯并[b] 熒蒽(BbF)、苯并[k] 熒蒽(BkF)、苯并[a] 芘(BaP)、茚并[1,2,3-c,d] 芘(IcdP)、二苯并[a,h] 蒽(DahA)、苯并[g,h,i] 芘(BghiP)、苯并 [a] 芘-d12(BaP-d12)內(nèi)標(biāo)溶液(100 μg/mL,批號(hào)S043605),均購(gòu)于天津阿爾塔科技有限公司;N-丙基乙二胺(PSA) 吸附劑、十八烷基鍵合硅膠吸附劑(C18粉末)、C18小柱、中性氧化鋁小柱(天津博納艾杰爾科技公司); MIPs、Florisil 小柱(上海安譜試驗(yàn)科技股份有限公司); HLB 小柱(美國(guó)Waters 公司)。二氯甲烷、丙酮、乙腈、正己烷均為色譜純(美國(guó)Thermo Fisher Scientific 公司); 水為超純水。

    地黃(16 批生地黃、7 批熟地黃) 均購(gòu)自當(dāng)?shù)貙I(yè)藥材市場(chǎng)或飲片公司,經(jīng)四川省藥品檢驗(yàn)研究院黎躍成主任中藥師鑒定為玄參科植物地黃RehmanniaglutinosaLibosch.的干燥塊根或炮制品,具體見表1。

    表1 樣品信息

    2 方法與結(jié)果

    2.1 GC-MS/MS 分析條件

    2.1.1 色譜 DB-5MS 石英毛細(xì)管柱 (30 m×0.25 mm,0.25 μm); 進(jìn)樣口溫度300 ℃; 程序升溫 (70 ℃保持2 min,以35 ℃/min 升至160 ℃,以10 ℃/min 升至260 ℃,以6 ℃/min 升至310 ℃,保持5 min); 載氣高純氦氣; 體積流量1.5 mL/min; 進(jìn)樣量1 μL; 不分流進(jìn)樣。

    2.1.2 質(zhì)譜 電子轟擊離子源(EI 源); 電子能量70 eV;離子源溫度230 ℃; 傳輸線溫度310 ℃; 溶劑延遲時(shí)間8 min; 多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM) 模式??傠x子流圖見圖1,質(zhì)譜參數(shù)見表2。

    圖1 12 種多環(huán)芳烴總離子流圖

    表2 12 種多環(huán)芳烴質(zhì)譜參數(shù)

    2.2 溶液制備

    2.2.1 對(duì)照品溶液 精密吸取混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液1 mL,置于25 mL 量瓶中,正己烷定容至刻度,搖勻,正己烷稀釋至400 ng/mL,即得。

    2.2.2 內(nèi)標(biāo)溶液 精密吸取苯并[a] 芘-d12對(duì)照品1 mL至25 mL 量瓶中,正己烷定容至刻度,搖勻,正己烷稀釋至400 ng/mL,即得。

    2.2.3 供試品溶液

    2.2.3.1 提取 取地黃適量,在-40 ℃下冷凍12 h 后迅速粉碎,精密稱取1 g 至50 mL 離心管中,準(zhǔn)確加入內(nèi)標(biāo)溶液100 μL,混勻后再準(zhǔn)確加入10 mL 正己烷,超聲提取10 min,渦旋振蕩提取10 min,8 000 r/min 離心5 min,收集上清液,殘?jiān)偌尤?0 mL 正己烷重復(fù)提取1 次,合并2次上清液,混勻,即得。

    2.2.3.2 凈化 精密吸取“2.2.3.1” 項(xiàng)下提取液5 mL 至10 mL 離心管中,加入C18、PSA 粉末各100 mg,渦旋60 s后8 000 r/min 離心5 min,吸取所有上清液,40 ℃氮吹至近干,準(zhǔn)確加入正己烷1.0 mL,渦旋混勻,0.22 μm 微孔濾膜過濾,進(jìn)樣分析。另外,多環(huán)芳烴屬于環(huán)境污染物,故在實(shí)驗(yàn)過程中應(yīng)隨樣品前處理過程制備全試劑空白溶液,以判斷實(shí)驗(yàn)環(huán)境是否對(duì)檢測(cè)造成影響。

    2.3 方法學(xué)考察

    2.3.1 提取方式選擇 以加入25 μg/kg 多環(huán)芳烴的地黃樣品為研究對(duì)象,分別考察了10 mL 二氯甲烷、正己烷、乙腈、丙酮提取2 次對(duì)提取效率的影響。結(jié)果表二氯甲烷、正己烷、乙腈、丙酮提取效率依次降低。但二氯甲烷提取溶液中色素等雜質(zhì)較多,容易對(duì)儀器造成污染并影響檢測(cè)結(jié)果; 乙腈、丙酮的極性相對(duì)較大,不利于多環(huán)芳烴的溶出,綜合對(duì)比了提取溶液顏色、對(duì)目標(biāo)物的提取效率,本實(shí)驗(yàn)選擇正己烷。另外,還考察了美國(guó)環(huán)境保護(hù)署推薦的PAHs 提取方法——超聲提取對(duì)樣品中多環(huán)芳烴提取效率的影響,發(fā)現(xiàn)超聲提取能夠加快多環(huán)芳烴的溶出,提高了提取效率,最終確定提取方式為10 mL 正己烷超聲提取2 次。

    2.3.2 凈化方式選擇 本實(shí)驗(yàn)以5 mL 離心后的25 μg/kg加標(biāo)樣品提取液為對(duì)象,考察了中性氧化鋁小柱、HLB 小柱、C18小柱、高分子印跡多環(huán)芳烴專用萃取柱(MIPs)、Florisil 小柱、QuEChERS 粉末的凈化效果,結(jié)果見圖2。由此可知,C18小柱、中性氧化鋁小柱對(duì)多環(huán)芳烴類化合物基本沒有保留能力; HLB 小柱、MIPs 小柱、Florisil 小柱、QuEChERS 粉末凈化均具有較高的回收率,但HLB、MIPs小柱對(duì)樣品溶液中色素的凈化效果不理想,溶液顏色仍較深,不利于儀器進(jìn)樣分析,而Florisil 小柱、QuEChERS 粉末回收率均較高,尤其是除去色素能力強(qiáng),可滿足實(shí)驗(yàn)要求。考慮到前處理操作方便性和實(shí)驗(yàn)成本,最終確定凈化方式為QuEChERS 粉末。

    圖2 不同凈化方式對(duì)多環(huán)芳烴凈化效果的影響

    2.3.3 QuEChERS 粉末填料量?jī)?yōu)化 目前,常用的QuEChERS 凈化劑有N-丙基乙二胺(PSA)、十八烷基鍵合硅膠吸附劑 (C18)、石墨化碳黑 (GCB)、無水硫酸鎂等[18],其中GCB 表面具有正六元環(huán)結(jié)構(gòu),對(duì)平面分子有極強(qiáng)的親和力,能有效除去樣品溶液中的色素和甾醇類干擾物,但由于多環(huán)芳烴結(jié)構(gòu)中含有平面芳香環(huán),會(huì)被GCB 不同程度的吸附,導(dǎo)致各目標(biāo)化合物的加樣回收率較低; PSA能夠吸附樣品溶液中的糖類、脂肪酸、有機(jī)酸、脂類以及某些色素等; C18的主要作用是除去長(zhǎng)鏈脂類化合物、甾醇及其他非極性雜質(zhì)等; 無水硫酸鎂能吸附樣品溶液中多余的水分。由于地黃含水量較小,本實(shí)驗(yàn)比較了不同用量PSA、C18粉末對(duì)樣品溶液的凈化效果,發(fā)現(xiàn)兩者對(duì)色素均有明顯的凈化效果,隨著其用量增加溶液顏色逐漸變淺,但進(jìn)一步增加后會(huì)引入菲的二次污染,考慮到進(jìn)化和二次污染之間的平衡,最終確定QuEChERS 凈化劑為PSA、C18粉末各100 mg。另外,對(duì)于含水量較大的藥材,可以考慮加入硫酸鎂來驗(yàn)證其除水、凈化效果。

    2.3.4 線性關(guān)系考察及精密度、加樣回收率試驗(yàn) 考慮到基質(zhì)效應(yīng)對(duì)目標(biāo)化合物準(zhǔn)確定量的影響,本實(shí)驗(yàn)采用基質(zhì)匹配系列校正曲線,內(nèi)標(biāo)法定量??瞻讟悠钒础?.2.3” 項(xiàng)下方法處理,得到空白供試品,加入25 μL 內(nèi)標(biāo)溶液和適量多環(huán)芳烴標(biāo)準(zhǔn)工作液,依次稀釋至1、2、4、8、16、32 ng/mL,在“2.1” 項(xiàng)條件下進(jìn)樣測(cè)定。以多環(huán)芳烴質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X),峰面積為縱坐標(biāo)(Y) 進(jìn)行回歸,并以信噪比為3 時(shí)的濃度為檢測(cè)限,為10 時(shí)的濃度為定量限,結(jié)果見表3,可知各多環(huán)芳烴在各自范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    表3 各多環(huán)芳烴線性關(guān)系及精密度、加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果(n=6)

    2.3.5 加樣回收率、精密度試驗(yàn) 在空白樣品中加入不同體積的對(duì)照品溶液,分別得到低、中、高3 個(gè)水平的加標(biāo)樣品,每個(gè)水平6 份,按“2.2.3” 項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在“2.1” 項(xiàng)條件下進(jìn)樣測(cè)定,結(jié)果見表3。

    2.3.6 樣品含量測(cè)定 取16 批生地黃(DH01~DH16)、7批熟地黃(DH17 ~DH23),按“2.2.3” 項(xiàng)下方法制備供試品溶液,在“2.1” 項(xiàng)條件下進(jìn)樣測(cè)定,計(jì)算含量,結(jié)果見表4。由此可知,所有批次樣品中均檢出多環(huán)芳烴,含量范圍32.7~3 628.9 μg/kg; 10 批樣品(2 批熟地黃、8 批生地黃) 檢出全部多環(huán)芳烴,占總數(shù)的43.5%,最高達(dá)3 628.9 μg/kg (DH04); 菲、苯并 [a] 蒽、艸屈及苯并[b] 熒蒽在所有批次樣品中的檢出率為100%,最高達(dá)1 119.5 μg/kg,值得引起重視; 苯并[a] 芘在多環(huán)芳烴中毒性最大,也是備受關(guān)注的典型代表[19],該成分在所有批次樣品中的檢出率為61.5%,含量為12.8~85.2 μg/kg。

    表4 各多環(huán)芳烴含量測(cè)定結(jié)果(μg/kg)

    3 討論

    目前,對(duì)中藥外源性污染物的關(guān)注重點(diǎn)主要集中在重金屬[20-21]、二氧化硫殘留[22]、真菌毒素污染[23-25]和農(nóng)藥殘留[26-28]等方面。雖然現(xiàn)在關(guān)于中藥材中多環(huán)芳烴的報(bào)道較少,但是從上述結(jié)果和部分報(bào)道[12-13,29-30]中可以看出,部分中藥材中多環(huán)芳烴污染的情況值得引起重視。尤其是這類化合物又具有典型的致癌、致畸、致突變的特性,這可能會(huì)成為影響中藥材用藥安全性的另一風(fēng)險(xiǎn)問題。

    中藥材中多環(huán)芳烴的污染可能來源于多種因素、多個(gè)環(huán)節(jié),產(chǎn)業(yè)鏈中的相關(guān)環(huán)節(jié)都應(yīng)該樹立防止多環(huán)芳烴污染的意識(shí)。在種植環(huán)節(jié),植物可能會(huì)吸收土壤和環(huán)境中的PAHs,并在生長(zhǎng)過程中富集,種植基地可以選擇建立在遠(yuǎn)離污染的地方。藥材在干燥、加工和運(yùn)輸?shù)倪^程中也應(yīng)該注重環(huán)境衛(wèi)生,盡量避免藥材被廢氣或廢煙污染。藥材在烘烤、高溫炮制等過程中,脂肪、蛋白質(zhì)和碳水化合物可能會(huì)發(fā)生熱裂解反應(yīng),再經(jīng)過環(huán)化和聚合反應(yīng)形成PAHs,應(yīng)該通過科學(xué)合理的方法優(yōu)化炮制工藝。同時(shí),相關(guān)部門應(yīng)該引起重視,加大對(duì)這方面的投入,利用現(xiàn)代科學(xué)技術(shù)和方法找出這類化合物的污染途徑或代謝途徑。

    目前我國(guó)尚無相關(guān)法律和標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定中藥材中多環(huán)芳烴的殘留限量,相關(guān)監(jiān)管部門應(yīng)該關(guān)注此類物質(zhì)在中藥材中的污染情況,在科學(xué)的方法指導(dǎo)下制定合理的防范措施,以保證中藥的安全用藥。

    4 結(jié)論

    本研究通過對(duì)提取試劑、提取方式和凈化方式進(jìn)行選擇和優(yōu)化,建立了能夠快速、準(zhǔn)確地測(cè)定地黃中12 種多環(huán)芳烴的方法。采用正己烷超聲提取2 次,使用QuEChERS(含PSA、C18各100 mg) 粉末凈化,氮吹濃縮后,結(jié)合基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線,內(nèi)標(biāo)法定量。與文獻(xiàn)[12-13,29-30] 中采用固相萃取、皂化后液液萃取等前處理方法相比,本方法具有前處理操作簡(jiǎn)單、對(duì)色素凈化效果好、成本低廉、定量準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn),適合在短時(shí)間內(nèi)完成大批量的樣品分析,能夠滿足實(shí)驗(yàn)室中大批量檢測(cè)的需要??梢钥紤]在此方法的基礎(chǔ)上,開展其他藥材樣品的普查,掌握基礎(chǔ)本底數(shù)據(jù),明確污染程度,為進(jìn)一步制定相應(yīng)的限量標(biāo)準(zhǔn)提供實(shí)質(zhì)性的數(shù)據(jù)支撐。

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