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    苦蕎麥殼不溶性膳食纖維的理化性能及其結(jié)合酚提取工藝優(yōu)化

    2023-08-02 06:05:52丁一鳴李向榮亢柳璇張艷艷王晶晶
    保鮮與加工 2023年7期
    關(guān)鍵詞:酶法溶性膳食

    潘 宇,丁一鳴,李向榮,亢柳璇,張艷艷,王晶晶,*

    (1.錦州醫(yī)科大學(xué)食品與健康學(xué)院,遼寧 錦州 121000;2.遼寧智慧安鮮物聯(lián)網(wǎng)科技有限公司,遼寧 沈陽 110000;3.遼寧通正檢測有限公司,遼寧 沈陽 110000)

    苦蕎麥(Fagopyrum tataricum(L.)Gaertn)為蓼科蕎麥屬雙子葉植物,又名花角麥、三角麥等,是一種“假谷物”[1]??嗍w麥在我國分布廣泛,其加工副產(chǎn)物蕎麥殼因富含多種營養(yǎng)素、膳食纖維及黃酮類、酚酸類化合物等生物活性物質(zhì),而備受研究者關(guān)注[2-4]。研究表明,蕎麥殼具有潤腸通便、抗氧化、預(yù)防高血壓和糖尿病等保健功效[5-6]。近年來,國內(nèi)外學(xué)者對苦蕎麥中的膳食纖維和游離態(tài)多酚進(jìn)行了大量的研究,但對膳食纖維中的結(jié)合酚鮮有報道[7-10]。膳食纖維和多酚類物質(zhì)可以采用物理、化學(xué)反應(yīng)通過氫鍵、范德華力和疏水作用等非共價形式結(jié)合[11]。Dong等[12]研究表明,胡蘿卜膳食纖維結(jié)合酚具有很好的抗氧化能力。Zheng 等[13]發(fā)現(xiàn),綠豆皮膳食纖維結(jié)合酚對α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶有抑制作用。值得關(guān)注的是,Guo 等[14]發(fā)現(xiàn),全麥谷物中不溶性膳食纖維結(jié)合酚的抗氧化能力強于可溶性膳食纖維結(jié)合酚。Zhu 等[15]研究了微粉化技術(shù)對蕎麥殼膳食纖維理化性質(zhì)的影響,結(jié)果表明,微粉化可以改善膳食纖維理化性質(zhì)。結(jié)合酚的提取方法主要有化學(xué)法和酶法,化學(xué)法涉及強酸、強堿、高溫,會造成結(jié)合酚的損失,而溫和且有效的酶法較好地避免了這個問題。張金宏等[16]對比了3種水解方法對蘋果渣結(jié)合酚單體酚含量的影響,結(jié)果表明,酶法提取12 種單體酚效果最佳。綜上可知,結(jié)合酚具有潛在的功能特性,而且不同處理方法會影響其理化性質(zhì)和功能性。本文以苦蕎麥殼為原料,以不溶性膳食纖維得率和結(jié)合酚含量為指標(biāo),對結(jié)合酚的提取工藝進(jìn)行了優(yōu)化,并評價了其理化性質(zhì),以期為苦蕎麥殼的綜合利用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與設(shè)備

    1.1.1 材料與試劑

    苦蕎麥殼,市售;纖維素酶(2 000 U/g)、木瓜蛋白酶(20 000 U/g),北京鴻潤寶順科技有限公司;α-淀粉酶(40 000 U/g)、沒食子酸(純度≥98%),索萊寶生物科技有限公司;碳酸鈉、氫氧化鈉、鹽酸、福林酚等均為分析純。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    GL20M 高速冷凍離心機,湖南赫西儀器裝備有限公司;SHA-B水浴恒溫振蕩器,金壇市科技儀器有限公司;XD-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器,上海賢德實驗室儀器有限公司;UV-5100B 紫外可見分光光度計,上海分析儀器有限公司;Mira 3 掃描電鏡,泰思肯貿(mào)易(上海)有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 苦蕎麥殼不溶性膳食纖維結(jié)合酚(F-DFPP)提取工藝流程

    苦蕎麥殼→預(yù)處理→不同方法提取不溶性膳食纖維(IDF)→苦蕎麥不溶性膳食纖維(F-IDF)→纖維素酶酶解→鹽酸中和→萃取→F-DFPP

    1.2.2 苦蕎麥殼粉的制備

    將苦蕎麥殼在60 ℃下烘干至恒重,粉碎,過60目篩,備用。

    1.2.3 苦蕎麥殼不溶性膳食纖維的提取

    1.2.3.1 酸法提取

    參考武陽等[17]的方法,稱取5 g苦蕎麥殼粉,按照1∶15(g/mL)的料液比加入0.1 mol/L 的HCl 溶液,在50 ℃的恒溫水浴中振蕩酸解2 h。離心分離,濾渣用蒸餾水洗滌至中性,50 ℃干燥至恒重,檢測F-IDF得率和結(jié)合酚含量。

    1.2.3.2 堿法提取

    參考林偉達(dá)等[18]的方法,稱取5 g樣品,按照1∶15(g/mL)的料液比加入1%的NaOH 溶液,在50 ℃的恒溫水浴中振蕩堿解2 h。離心分離,濾渣用蒸餾水洗滌至中性,50 ℃干燥至恒重,檢測F-IDF得率和結(jié)合酚含量。

    1.2.3.3α-淀粉酶-木瓜蛋白酶復(fù)合酶法提取

    參考丁政宇等[19]的方法,稱取5 g樣品,按照1∶15(g/mL)的料液比加入pH 為6 的水溶液,加入1%的α-淀粉酶,在80 ℃的恒溫水浴中振蕩酶解50 min,冷卻至50 ℃,再加入1%的木瓜蛋白酶,于50 ℃條件下酶解50 min。85 ℃水浴滅酶10 min 后離心分離,濾渣用蒸餾水洗滌至中性,50 ℃干燥至恒重,檢測FIDF得率和結(jié)合酚含量。

    1.2.4 F-IDF理化性質(zhì)測定

    1.2.4.1 持水性

    參考Zhang等[20]的方法稍作修改。準(zhǔn)確稱取1.0 g F-IDF 于50 mL 的離心管中,向其中加入25 mL 的蒸餾水充分混勻,室溫反應(yīng)2 h后離心測定其質(zhì)量。持水性計算公式如下:

    1.2.4.2 持油性

    參考Zhang等[20]的方法稍作修改。準(zhǔn)確稱取1.0 g F-IDF 于50 mL 的離心管中,向其中加入25 mL 豆油充分混勻,室溫反應(yīng)2 h后離心測定其質(zhì)量。計算公式如下:

    1.2.4.3 膨脹力

    參考郭婭[21]的方法稍作修改。準(zhǔn)確稱取F-IDF 0.5 g,放入10 mL的刻度試管中,加入10 mL蒸餾水,充分混勻,室溫反應(yīng)24 h后離心稱重。計算公式如下:

    1.2.5 F-DFPP提取工藝的優(yōu)化

    參考Peng 等[22]的方法,稍作修改。分別稱取上述3 種方法獲得的苦蕎麥殼不溶性膳食纖維5 g,在60 ℃條件下,用超聲波輔助纖維素酶法對F-DFPP提取,3 500 r/min 離心10 min,上清液用6 mol/L 鹽酸溶液調(diào)節(jié)pH至中性,乙酸乙酯萃取3次收集萃取液,45 ℃下真空濃縮到一定體積,檢測結(jié)合酚含量。

    1.2.5.1 單因素試驗設(shè)計

    固定料液比為1∶20(g/mL),纖維素酶添加量8%(質(zhì)量分?jǐn)?shù)),超聲功率180 W,提取時間2 h,水溶液pH為7。考察不同料液比(1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25(g/mL))、纖維素酶添加量(2%、4%、6%、8%、10%)、超聲功率(90、120、150、180、210 W)和提取時間(0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h)對結(jié)合酚含量的影響。

    1.2.5.2 響應(yīng)面優(yōu)化試驗設(shè)計

    在單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以結(jié)合酚含量為考察指標(biāo)進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化試驗,試驗因素水平見表1。

    表1 響應(yīng)面試驗因素水平表Table 1 Factor and level design of response surface test

    1.2.6 結(jié)合酚含量的測定

    采用Folin-Ciocalteu 法[23]測定F-IDF 中結(jié)合酚的含量,結(jié)合酚含量以每克IDF中所含沒食子酸的量表示(mg/g)。

    1.2.7 掃描電鏡(SEM)分析

    使用SEM對樣品微觀結(jié)構(gòu)進(jìn)行觀察。

    1.2.8 數(shù)據(jù)處理

    采用Excel 2010 和SPSS 25.0 進(jìn)行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)均以±s表示,采用Design-Expert 8.0.6進(jìn)行響應(yīng)面試驗設(shè)計,試驗重復(fù)3次。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同提取方法對F-IDF得率和F-DFPP含量的影響

    由表2可見,酶法處理F-IDF的得率和結(jié)合酚含量均顯著高于酸法和堿法(P<0.05)。唐玉妹[24]比較了不同提取方法對竹筍膳食纖維結(jié)合酚含量的影響,發(fā)現(xiàn)酶法顯著高于化學(xué)法(P<0.05)。

    表2 F-IDF得率及結(jié)合酚含量Table 2 Extraction yields of F-DFPP and contents of F-IDF

    2.2 不同提取方法對F-IDF理化性質(zhì)的影響

    2.2.1 不同提取方法對F-IDF持水性的影響

    膳食纖維的持水性與其親水基團(tuán)具有密切相關(guān)性。膳食纖維的持水性越好,越有利于泌尿系統(tǒng)減輕壓力,促進(jìn)體內(nèi)毒素的排出[25]。因此,膳食纖維的持水性是重要的理化評價指標(biāo)。由圖1可知,采用堿法提取F-IDF 的持水性顯著高于酶法和酸法(P<0.05),這可能是由于堿法對F-IDF結(jié)構(gòu)破壞性更強,導(dǎo)致大量親水基團(tuán)被釋放,從而使其具有更好的持水性。

    圖1 不同提取方法對F-IDF持水性的影響Fig.1 Effects of different extraction methods on water holding capacity of F-IDF

    2.2.2 不同提取方法對F-IDF持油性的影響

    膳食纖維的持油性是評價其物理吸附功能的重要指標(biāo),與其攝入后的減肥功效密切相關(guān)[26],持油性的大小與表面積和空隙有關(guān)。如圖2所示,酸法和酶法提取F-IDF 的持油性分別為(1.24±0.05)g/g 和(1.26±0.05)g/g,顯著高于堿法(P<0.05)。這可能由于酸法和酶法提取的F-IDF結(jié)構(gòu)更加稀疏多孔,從而利于油脂的吸附[27]。

    圖2 不同提取方法對F-IDF持油性的影響Fig.2 Effects of different extraction methods on oil retention of F-IDF

    2.2.3 不同提取方法對F-IDF膨脹力的影響

    膳食纖維的膨脹力與其致密的多孔網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)有著密切的關(guān)系,多孔狀結(jié)構(gòu)可以吸水膨脹,產(chǎn)生飽腹感,還可以加速腸道蠕動,因此膳食纖維具有通便和減肥功效[28]。如圖3 所示,堿法提取F-IDF 的膨脹力達(dá)(1.12±0.02)mL/g,顯著高于酸法和酶法(P<0.05),這可能是由于堿液的破壞性較大,使其孔隙率提高,縫隙被水填充后使其膨脹[29]。

    圖3 不同提取方法對F-IDF膨脹力的影響Fig.3 Effects of different extraction methods on dilatancy of F-IDF

    綜合各因素考慮,酶法提取的IDF結(jié)構(gòu)更加完整,理化性質(zhì)相對良好,在提取時間、能耗、活性成分等方面的優(yōu)勢明顯高于其他兩種方法,可為利用苦蕎麥殼開發(fā)膳食纖維功能性產(chǎn)品提供依據(jù)。因此,下文將對酶法提取F-IDF中結(jié)合酚的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化。

    2.3 單因素試驗結(jié)果

    如圖4~圖7所示,不同料液比、纖維素酶添加量、超聲功率和提取時間對苦蕎麥殼中不溶性膳食纖維結(jié)合酚的含量具有顯著影響,均呈現(xiàn)先上升后下降的變化趨勢。

    圖4 料液比對結(jié)合酚含量的影響Fig.4 Effects of solid-liquid ratios on the contents of F-DFPP

    由圖4可知,在料液比1∶5(g/mL)到1∶20(g/mL)范圍內(nèi),隨溶劑量的增加,結(jié)合酚釋放量上升,但料液比1∶25(g/mL)時結(jié)合酚釋放量反而降低,這可能是由于過多的溶劑增大了其他物質(zhì)的溶出,使其含量減少[30],因此選擇適宜的料液比為1∶20(g/mL)。

    由圖5 可見,隨著纖維素酶添加量的增加,細(xì)胞壁的水解程度增加,結(jié)合酚大量釋放,但過多添加纖維素酶會降低結(jié)合酚含量,這是由于蛋白質(zhì)等其他物質(zhì)被釋放,黏度增大降低了結(jié)合酚釋放量[31],因此選擇適宜的纖維素酶添加量為8%。

    圖5 纖維素酶添加量對結(jié)合酚含量的影響Fig.5 Effects of cellulase additions on the contents of F-DFPP

    如圖6 所示,超聲功率在90~180 W 范圍內(nèi)與結(jié)合酚釋放量呈正相關(guān),當(dāng)超聲功率達(dá)210 W 時,結(jié)合酚受熱分解,其含量反而降低,因此選擇適宜的超聲功率為180 W。

    圖6 超聲功率對結(jié)合酚含量的影響Fig.6 Effects of ultrasonic power on the contents of combined phenol

    由圖7 可見,在0.5~2.0 h 范圍內(nèi),隨著提取時間的不斷增加,結(jié)合酚不斷溶出。但提取時間繼續(xù)增加,結(jié)合酚受溫度的影響發(fā)生了氧化分解,其含量減少,因此選擇適宜的提取時間為2.0 h。

    圖7 提取時間對結(jié)合酚含量的影響Fig.7 Effects of extraction time on the contents of combined phenol

    2.4 響應(yīng)面試驗結(jié)果

    2.4.1 響應(yīng)面模型的建立及方差分析

    響應(yīng)面試驗結(jié)果見表3,方差分析見表4。

    表3 響應(yīng)面試驗結(jié)果Table 3 Response surface test results

    表4 方差分析表Table 4 Variance analysis table

    對表3中的數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸分析,得到結(jié)合酚含量的回歸方程為:Y=7.35+0.11A+0.072B+0.20C+5.833×10-3D-0.037AB+0.12AC-0.19AD+0.080BC-0.085BD-2.500×10-3CD-0.79A2-0.63B2-0.46C2-0.3D2。

    由表4可知,該模型達(dá)極顯著水平(P<0.01),失擬項不顯著,決定系數(shù)R2=0.973 3,說明回歸方程具有良好的擬合性,可應(yīng)用于結(jié)合酚提取試驗的預(yù)測。由表4方差分析結(jié)果可知,因素B對結(jié)合酚含量影響顯著(P<0.05),A、C、AD、A2、B2、C2、D2對結(jié)合酚含量的影響極顯著(P<0.01)。各因素對結(jié)合酚含量影響的主次順序依次為:C>A>B>D。

    2.4.2 各因素交互作用響應(yīng)面分析

    由圖8可知,AD的曲面圖變化陡峭,等高線趨近于橢圓形,說明AD間的交互作用對結(jié)合酚含量有著顯著影響,AB、AC、BC、BD、CD曲面圖變化不陡峭,等高線趨近于圓形,說明他們之間的交互作用對結(jié)合酚含量的影響不顯著,這與表4方差分析結(jié)果一致。

    圖8 各因素交互作用對結(jié)合酚含量影響的響應(yīng)曲面及等高線圖Fig.8 Response surface and contour plots of various factors interaction on bound phenol contents

    2.4.3 最優(yōu)提取條件的確定

    通過響應(yīng)面優(yōu)化后得到的最佳工藝參數(shù)為:料液比1∶20.44(g/mL),酶添加量8.14%,超聲功率186.94 W,提取時間1.99 h,模型預(yù)測結(jié)合酚含量為7.37 mg/g。調(diào)整后的參數(shù)為:料液比1∶20(g/mL),酶添加量8%,超聲功率180 W,提取時間2 h。按調(diào)整后的工藝進(jìn)行3 次驗證試驗,得到結(jié)合酚含量為(7.45±0.05)mg/g,實際結(jié)果與預(yù)測值相差較小,說明本模型具有較高的可信度。

    2.5 水解前后F-IDF在電鏡下的組織狀態(tài)

    酶解是影響結(jié)合酚釋放的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。如圖9 所示,酶解前后F-IDF 的微觀結(jié)構(gòu)發(fā)生了明顯變化,酶解前F-IDF結(jié)構(gòu)緊密,而酶解后F-IDF結(jié)構(gòu)變得疏松多孔。這是由于結(jié)合酚從F-IDF中釋放出來,導(dǎo)致結(jié)構(gòu)變得疏松多孔,這說明纖維素酶解法是一種適合蕎麥殼膳食纖維結(jié)合酚提取的方法。

    圖9 水解前后F-IDF的電鏡圖Fig.9 Electron microscopic images of F-IDF before and after hydrolysis

    3 結(jié)論

    本文對苦蕎麥殼不溶性膳食纖維的理化性質(zhì)及其結(jié)合酚的提取方法進(jìn)行了優(yōu)化,結(jié)果表明:采用α-淀粉酶-木瓜蛋白酶復(fù)合酶法制備F-IDF,F(xiàn)-IDF得率可達(dá)到59.45%±0.87%;不同方法獲得的F-IDF理化性質(zhì)差異顯著,酶法和酸法提取的F-IDF具有較高的持油性;堿法提取的F-IDF持水性和膨脹性最佳;F-DFPP的提取最佳工藝參數(shù)為:料液比1∶20(g/mL),纖維素酶添加量8%,超聲功率180 W,提取時間2 h,按該工藝提取的結(jié)合酚含量為(7.45±0.05)mg/g;纖維素酶可使膳食纖維結(jié)構(gòu)變得疏松多孔,從而利于結(jié)合酚的提取和制備。

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